エピジェネティック機構 エピジェネティクスは、 DNA 配列を変化させることなく起こる遺伝子発現 の変化を研究する学問である。[ 1 ] エピジェネティクス のギリシャ語の接頭辞epi- (ἐπι-「上、外側、周囲」)は、従来のDNA配列に基づく遺伝メカニズムの「上」または「追加」の特徴を意味する。[ 2 ] エピジェネティクスは通常、細胞分裂を通して持続し、遺伝子発現の調節に影響を与える変化を伴う。[ 3 ] 細胞および生理学的特性に対するこのような影響は、環境要因に起因する場合もあれば、正常な発達の一部である場合もある。
この用語は、これらの変化の背後にあるメカニズムも指します。それは、ヌクレオチド配列 の変異を伴わない、 ゲノム に対する機能的に関連する変化です。このような変化を生み出すメカニズムの例としては、 DNAメチル化 とヒストン修飾が あり、それぞれが、基となるDNA 配列を変更することなく、遺伝子の発現方法を変化させます。[ 4 ] さらに、非コードRNA配列が遺伝子発現の調節において重要な役割を果たすことが示されています。[ 5 ] 遺伝子発現は、DNAのサイレンサー 領域に結合する抑制タンパク質 の作用によって制御されることがあります。これらのエピジェネティックな変化は、細胞の寿命の間、細胞分裂 を通して持続する可能性があり、生物の基となるDNA配列の変化を伴わない場合でも、複数世代にわたって持続する可能性もあります。[ 6 ] その代わりに、非遺伝的要因が生物の遺伝子の挙動(または「発現」)を異なってさせます。[ 7 ]
真核生物の 生物学におけるエピジェネティックな変化の一例は、細胞分化 の過程である。形態形成 の過程で、全能性 幹細胞は 胚 の様々な多能性 細胞系列 となり、それがさらに完全に分化した細胞となる。言い換えれば、単一の受精卵細胞 (接合子)が 分裂 を続けるにつれて、生じた娘細胞は、一部の遺伝子の発現を活性化し、他の遺伝子の発現を抑制することによって、神経細胞、筋細胞、上皮、血管内皮など、生物の様々な 細胞型 へと 発達する 。 [ 8 ]
定義 エピジェネシスという 用語は、「余分な成長」という一般的な意味を持ち、17 世紀以来英語で使われてきました。[ 9 ] 科学出版物では、エピジェネティクス という用語は1930 年代に登場し始めました (右の図を参照)。しかし、その現代的な意味は 1990 年代になって初めて現れました。[ 10 ]
公開年別の「エピジェネティクス*」という用語を含む特許ファミリーおよび非特許文献の数 エピジェネティック形質 の概念は、「DNA配列の変化を伴わずに染色体の変化から生じる安定的に遺伝する表現型」として定義され、2008年にコールド・スプリング・ハーバー会議で策定された [ 11 ] が、遺伝しない形質を含む別の定義も依然として広く使用されている[ 12 ] 。
コンテンポラリー 1990年、ロビン・ホリデーは エピジェネティクスを「複雑な生物の発生過程における遺伝子活性の時間的および空間的制御のメカニズムの研究」と定義した。[ 20 ]
生物学におけるこの言葉の最近の用法は、より厳密な定義に従っている。アーサー・リッグスらが定義したように、それは「DNA配列の変化では説明できない、 有糸分裂 および/または減数分裂 によって遺伝する遺伝子機能の変化の研究」である。 [ 21 ]
しかし、この用語は、ヒストン修飾の一部など、遺伝性が証明されていないプロセスを説明するためにも使用されてきました。そのため、遺伝性を 要求する制約を回避するために、「エピジェネティクス」をより広い意味で再定義しようとする試みがあります。たとえば、エイドリアン・バードは 、エピジェネティクスを「変化した活動状態を記録、シグナル伝達、または永続させるための染色体領域の構造的適応」と定義しました。[ 6 ] この定義には、 DNA修復 や細胞周期 段階に関連する一時的な修飾や、複数の細胞世代にわたって維持される安定した変化が含まれますが、染色体機能に影響を与えない限り、膜構造の鋳型形成やプリオン などの他のものは除外されます。しかし、このような再定義は普遍的に受け入れられているわけではなく、依然として議論の対象となっています。[ 22 ] 2008年から2017年にかけて実施されたNIHの「ロードマップ・エピゲノミクス・プロジェクト」では、次の定義が用いられています。「このプログラムの目的上、エピジェネティクスとは、遺伝子活性と発現の遺伝可能な変化(細胞 または 個体の子孫において)と、必ずしも遺伝可能ではない細胞の転写能力の安定した長期的な変化の両方を指します。」[ 23 ] 2008年にコールド・スプリング・ハーバー 会議で、「DNA配列の変化を伴わない染色体の変化から生じる、安定的に遺伝可能な表現型」というエピジェネティック形質の合意定義がなされました。[ 11 ]
この言葉が「遺伝学」と似ていることから、多くの類似した用法が生まれています。「エピゲノム」は「 ゲノム 」という言葉と類似しており、細胞の全体的なエピジェネティック状態を指し、エピゲノミクスは ゲノム全体にわたるエピジェネティック変化のグローバルな解析を指します。[ 12 ] 「遺伝暗号 」というフレーズも適応しており、「エピジェネティックコード 」は、同じ基礎となるDNA配列から異なる細胞で異なる表現型を生み出す一連のエピジェネティック特徴を説明するために使用されています。極端な場合、「エピジェネティックコード」は細胞の全体的な状態を表すことができ、各分子の位置は、特定のゲノム領域の遺伝子発現、DNAメチル化、およびヒストン修飾状態を図式的に表したエピゲノムマップで説明されます。より一般的には、この用語は、 ヒストンコード やDNAメチル化 パターンなどの特定の関連するエピジェネティック情報を体系的に測定する取り組みに関連して使用されます。
メカニズム DNA(例えばシトシンメチル化やヒドロキシメチル化)またはヒストンタンパク質(例えばリジンアセチル化、リジンおよびアルギニンメチル化、セリンおよびトレオニンリン酸化、リジンユビキチン化およびSUMO化)の共有結合 修飾は、多くの種類のエピジェネティック遺伝において中心的な役割を果たします。そのため、「エピジェネティクス」という言葉は、これらのプロセスの同義語として使われることがあります。しかし、これは誤解を招く可能性があります。クロマチンリモデリングは必ずしも遺伝するわけではなく、すべてのエピジェネティック遺伝がクロマチンリモデリングを伴うわけでもありません。[ 24 ] 2019年には、エピジェネティック修飾と細胞代謝、すなわち乳化を結びつける新たなリジン修飾が科学文献に登場しました。[ 25 ]
DNAはヒストンタンパク質と結合してクロマチンを形成する。 細胞や個体の表現型は 、どの遺伝子が転写されるかによって影響を受けるため、遺伝可能な転写状態は エピジェネティックな影響を引き起こす可能性があります。遺伝子発現の調節にはいくつかの階層があります。遺伝子が調節される方法の1つは、クロマチンのリモデリングによるものです。クロマチンは、DNAとそれに結合した ヒストンタンパク 質の複合体です。DNAがヒストンに巻き付く方法が変わると、遺伝子発現も変化する可能性があります。クロマチンのリモデリングは、主に2つのメカニズムによって行われます。
第一の方法は、ヒストンタンパク質を構成するアミノ酸の翻訳後修飾 です。ヒストンタンパク質は、アミノ酸の長い鎖からできています。鎖を構成するアミノ酸が変化すると、ヒストンの形状が変化する可能性があります。DNAは複製時に完全にほどけるわけではありません。そのため、修飾されたヒストンがDNAの各複製に持ち込まれる可能性があります。そこで、これらのヒストンは鋳型として働き、周囲の新しいヒストンが新しい形状になるように誘導します。周囲のヒストンの形状を変化させることで、これらの修飾されたヒストンは、細胞分裂後も系統特異的な転写プログラムが維持されることを保証するのです。 2つ目の方法は、主にCpG部位 でDNAにメチル基を付加してシトシンを 5-メチルシトシン に変換することです。5-メチルシトシンは通常のシトシンとよく似た働きをし、二本鎖DNAでグアニンと対合します。しかし、遺伝子のプロモーター 領域とエンハンサー 領域のCpG部位にメチル化シトシンが存在すると、遺伝子はしばしば抑制されます。[ 26 ] [ 27 ] 遺伝子本体(転写開始部位を除くコード領域 )のCpG部位にメチル化シトシンが存在すると、遺伝子の発現はしばしば促進されます。遺伝子の転写は通常、エンハンサーにある(10塩基以下の)認識配列に結合する転写因子に依存し、その 認識配列 は遺伝子のプロモーター領域と相互作用します(遺伝子発現#哺乳類の転写におけるエンハンサー、転写因子、メディエーター複合体、DNAループ )。[ 28 ] 転写因子の約 22% は、認識配列にメチル化シトシンが存在すると結合が阻害されます。さらに、プロモーター領域にメチル化シトシンが存在すると、メチル CpG 結合ドメイン (MBD) タンパク質を引き寄せることができます。すべての MBD はヌクレオソーム リ モデリングおよびヒストン脱アセチル化 酵素複合体と相互作用し、遺伝子サイレンシングにつながります。さらに、メチル化シトシンが関与する別の共有結合修飾は、TET 酵素 による脱メチル化 です。このような脱メチル化は、たとえばニューロンでの 学習および記憶 形成イベント中に数百回発生します。[ 29 ] [ 30 ] DNAメチル化とヒストンリジンメチル化の間には、しばしば相互関係が存在する。[ 31 ] 例えば、DNA CpG部位のメチル化シトシン に引き寄せられて結合するメチル結合ドメインタンパク質MBD1は、H3K9 メチルトランスフェラーゼ 活性とも結合して、ヒストン3のリジン9をメチル化することができる。一方、DNMT1 によるDNA維持メチル化は、 DNA部位に存在するヌクレオソーム上のヒストンメチル化の認識に部分的に依存して、新たに合成されたDNA上のシトシンメチル化を実行するようである。[ 31 ] DNMT3A およびDNMT3B によって実行されるDNAメチル化とヒストンメチル化の間には、さらにクロストークがあり、ゲノム全体のDNAメチル化とヒストンメチル化の分布の間には相関関係がある。[ 32 ]
ヒストン状態の遺伝メカニズムはよく理解されていませんが、細胞分裂と分化中のDNAメチル化状態の遺伝メカニズムについては多くのことが知られています。メチル化状態の遺伝は、シトシンよりも5-メチルシトシンに対する親和性が高い特定の酵素(DNMT1 など)に依存します。この酵素がDNAの「ヘミメチル化」部分(5-メチルシトシンが2本のDNA鎖のうち1本にのみ存在する部分)に到達すると、酵素は残りの半分をメチル化します。しかし、DNMT1がタンパク質UHRF1 と物理的に相互作用することが現在では知られています。UHRF1は、DNMT1を介したDNAメチル化の維持に不可欠であることが最近認識されました。UHRF1は、ヘミメチル化DNAを特異的に認識するタンパク質であり、そのためDNMT1を基質に引き寄せてDNAメチル化を維持します。[ 32 ]
ヒストンの修飾は配列全体で起こりますが、ヒストンの構造化されていないN末端(ヒストンテールと呼ばれる)は特に高度に修飾されています。これらの修飾には、アセチル化 、メチル化 、ユビキチン化 、リン酸化 、SUMO化 、リボシル化、シトルリン化が含まれます。アセチル化はこれらの修飾の中で最もよく研究されています。たとえば、ヒストンアセチルトランスフェラーゼ酵素(HAT)によるヒストンH3テールのK14およびK9リジンのアセチル化は、一般的に転写能力に関連しています [ 34 ] (図を参照)。
一つの考え方として、アセチル化が「活性」転写と関連する傾向は生物物理学的性質によるものだというものがあります。リジンは通常、末端に正電荷を持つ窒素原子を持つため、DNA骨格の負電荷を持つリン酸基と結合することができます。アセチル化によって、側鎖の正電荷を持つアミン基が中性のアミド結合に変換されます。これにより正電荷が除去され、DNAがヒストンから緩みます。このとき、SWI/SNFなどの複合体や他の転写因子がDNAに結合し、転写が起こります。これがエピジェネティック機能の「シス」モデルです。言い換えれば、ヒストン尾部の変化はDNA自体に直接的な影響を与えます。[ 35 ]
エピジェネティック機能のもう一つのモデルは「トランス」モデルです。このモデルでは、ヒストン尾部の変化がDNAに間接的に作用します。例えば、リジンのアセチル化は、クロマチン修飾酵素(あるいは転写機構)の結合部位を作り出す可能性があります。このクロマチンリモデリング因子は、クロマチンの状態変化を引き起こす可能性があります。実際、アセチルリジンに特異的に結合するタンパク質ドメインであるブロモドメインは、SWI/SNF複合体を含む、転写活性化を助ける多くの酵素に見られます。アセチル化は、この方法と前述の方法の両方で転写活性化を促進するために作用している可能性があります。
修飾が関連因子のドッキングモジュールとして機能するという考えは、ヒストンメチル化 によっても裏付けられています。ヒストンH3のリジン9のメチル化は、長らく構成的に転写が不活性なクロマチン(構成的ヘテロクロマチン)と関連付けられてきました(下図参照)。転写抑制タンパク質 HP1 のクロモドメイン(メチルリジンに特異的に結合するドメイン)が、HP1をK9メチル化領域にリクルートすることが確認されています。メチル化に関するこの生物物理学的モデルを否定すると思われる例の1つは、ヒストンH3のリジン4のトリメチル化が転写活性化と強く関連しており(完全な転写活性化に必要である)ことです(上図参照)。この場合、トリメチル化は尾部に固定された正電荷を導入することになります。
ヒストンリジンメチルトランスフェラーゼ(KMT)がヒストンH3およびH4のメチル化活性に関与していることが示されています。この酵素は、SETドメイン(Suppressor of variegation, Enhancer of Zeste, Trithorax)と呼ばれる触媒活性部位を利用します。SETドメインは、遺伝子活性の調節に関与する130アミノ酸配列です。このドメインはヒストン尾部に結合し、ヒストンのメチル化を引き起こすことが実証されています。[ 36 ]
ヒストンの修飾が異なると、機能も異なる可能性が高い。ある位置でのアセチル化は、別の位置でのアセチル化とは異なる機能を持つ可能性が高い。また、複数の修飾が同時に起こる場合もあり、これらの修飾が連携してヌクレオソーム の挙動を変化させる可能性がある。複数の動的な修飾が体系的かつ再現性のある方法で遺伝子転写を制御するという考え方はヒストンコード と呼ばれているが、ヒストンの状態がデジタル情報キャリアとして直線的に読み取れるという考え方は、ほぼ否定されている。クロマチンベースのサイレンシングを統制する最もよく理解されているシステムの1つは、酵母の隠れた接合型遺伝子座HMLとHMRのSIRタンパク質によるサイレンシングである。
ヒストン修飾 ヒストンH3とH4は、ヒストンリジン脱メチル化酵素 (KDM)を用いた脱メチル化によっても操作できます。最近発見されたこの酵素は、Jumonjiドメイン(JmjC)と呼ばれる触媒活性部位を持っています。脱メチル化は、JmjCが複数の補因子を利用してメチル基を水酸化し、それによってメチル基を除去するときに起こります。JmjCは、モノメチル化、ジメチル化、およびトリメチル化された基質を脱メチル化することができます。[ 49 ]
染色体領域は、DNA配列の変化なしに、安定で遺伝可能な代替状態をとることができ、その結果、二安定遺伝子発現が生じる。エピジェネティック制御は、ヒストンの代替共有結合修飾と関連付けられることが多い。 [ 50 ] より大きな染色体領域の状態の安定性と遺伝性は、修飾されたヌクレオソーム が、近くのヌクレオソームを同様に修飾する酵素をリクルートする正のフィードバックに関係していると考えられている。[ 51 ] この種のエピジェネティクスの単純化された確率モデルはここにある。[ 52 ] [ 53 ]
クロマチンに基づく転写調節は、低分子RNAの効果によって媒介される可能性があることが示唆されている。低分子干渉RNAは、標的 プロモーター のエピジェネティック修飾を介して転写遺伝子発現を調節することができる。[ 54 ]
RNA転写産物 遺伝子は、活性化されると、直接的または間接的に自身の活性を維持する産物を転写することがあります。たとえば、Hnf4 とMyoDは、それぞれがコードする タンパク質の 転写因子 活性を介して、自身の遺伝子を含む、多くの肝臓特異的遺伝子と筋肉特異的遺伝子の転写を促進します。RNAシグナル伝達には、分化と発生の過程でRNAによって特定の遺伝子座に階層的な汎用クロマチン修飾複合体とDNAメチルトランスフェラーゼが選択的にリクルートされることが含まれます。[ 55 ] 他のエピジェネティックな変化は、 RNA の異なるスプライスフォーム の産生、または二本鎖RNA(RNAi )の形成によって媒介されます。遺伝子がオンになった細胞の子孫は、遺伝子活性化の元の刺激がもはや存在しない場合でも、この活性を継承します。これらの遺伝子は、シグナル伝達によってオンまたはオフになることが多いですが、 合胞体 またはギャップ結合 が重要なシステムでは、RNAが拡散 によって他の細胞または核に直接広がる場合があります。大量のRNAとタンパク質は、卵形成 中または栄養細胞 を介して母親から接合子に提供され、 母性効果 表現型をもたらします。少量の精子RNAは父親から伝達されますが、このエピジェネティック情報が数世代の子孫に目に見える変化をもたらす可能性があるという最近の証拠があります。[ 56 ]
マイクロRNA マイクロRNA (miRNA)は、17~25ヌクレオチドのサイズの非コードRNA の一種です。miRNAは、植物や動物のさまざまな生物学的機能を調節します。 [ 57 ] 2013年現在、ヒトでは約2000種類のmiRNAが発見されており、これらはオンラインのmiRNAデータベースで確認できます。[ 58 ] 細胞内で発現する各miRNAは、約100~200種類のメッセンジャーRNA(mRNA)を標的として、その発現を抑制します。[ 59 ] mRNAの発現抑制のほとんどは、標的mRNAの分解を引き起こすことによって起こりますが、タンパク質への翻訳レベルで発現抑制が起こる場合もあります。[ 60 ]
ヒトのタンパク質コード遺伝子の約60%はmiRNAによって制御されているようです。[ 61 ] 多くのmiRNAはエピジェネティックに制御されています。miRNA遺伝子の約50%はCpGアイランドと関連しており、[ 57 ] エピジェネティックメチル化によって抑制される可能性があります。メチル化されたCpGアイランドからの転写は強く遺伝的に抑制されます。[ 62 ] 他のmiRNAは、ヒストン修飾またはDNAメチル化とヒストン修飾の組み合わせによってエピジェネティックに制御されています。[ 57 ]
長鎖非コードRNA 数多くの研究により、長鎖ノンコーディングRNA(lncRNA)が遺伝子発現と染色体修飾の調節に極めて重要な役割を果たし、細胞分化を大きく制御していることが実証されている。これらの長鎖ノンコーディングRNAは、ゲノムインプリンティングとX染色体の不活性化にも寄与している。[ 66 ] ミツバチなどの社会性昆虫といった無脊椎動物では、相互交配による攻撃性の根底にある対立遺伝子特異的遺伝子を介して、長鎖ノンコーディングRNAがエピジェネティック機構として検出されている。[ 67 ]
分子基盤 エピジェネティック変化は、特定の遺伝子の活性化を変化させますが、DNAの遺伝暗号配列は変化させません。[ 77 ] DNA自体の微細構造(暗号ではなく)または関連するクロマチン タンパク質が変化することで、活性化またはサイレンシングが引き起こされます。このメカニズムにより、多細胞生物の分化した細胞は、自身の活動に必要な遺伝子のみを発現することができます。エピジェネティック変化は、細胞分裂時にも保持されます。ほとんどのエピジェネティック変化は、個体の生涯を通じてのみ発生しますが、これらのエピジェネティック変化は、世代を超えたエピジェネティック遺伝 と呼ばれるプロセスを通じて、その生物の子孫に伝達される可能性があります。さらに、受精につながる精子または卵細胞で遺伝子不活性化が発生した場合、このエピジェネティック修飾も次世代に伝達される可能性があります。[ 78 ]
特定のエピジェネティックプロセスには、パラミュー テーション 、ブックマーキング 、インプリンティング、遺伝子サイレンシング 、X染色体不活性化 、位置効果 、DNAメチル化リプログラミング 、トランスベクション 、母性効果、 発癌 の進行、催奇形物質 の多くの効果、ヒストン 修飾とヘテロクロマチン の調節、単為発生 とクローニング に影響を与える技術的制限が含まれます。[ 79 ] [ 80 ] [ 81 ]
DNA修復 DNA損傷は非常に一般的であり、常に修復されています。酸化損傷や二本鎖切断のDNA修復に伴って、エピジェネティックな変化が生じることがあります。ヒト細胞では、酸化DNA損傷は1日に約1万回、DNA二本鎖切断は体細胞複製細胞において細胞周期ごとに約10~50回発生します(「DNA損傷(自然発生) 」を参照)。DNA修復の選択的利点は、細胞がDNA損傷に直面しても生存できるようにすることです。DNA修復に伴って生じるエピジェネティックな変化の選択的利点は明らかではありません。
酸化DNA損傷の修復はエピジェネティックマーカーを変化させる可能性がある 定常状態(内因性の損傷が発生し、修復されている状態)では、平均的な哺乳類細胞のDNAには、8-オキソ-2'-デオキシグアノシン(8-OHdG)を形成する約2,400個の酸化損傷グアニンが存在する。 [ 95 ] 8-OHdGは、DNAに一般的に存在する酸化損傷の約5%を占める。[ 96 ] 酸化グアニンは、DNA中のすべてのグアニンの中でランダムに発生するわけではない。メチル化CpG部位( 5'→3'方向 に沿ってシトシンの後にグアニンが続き、シトシンがメチル化されている(5-mCpG))のグアニンには配列上の優先性がある。[ 97 ] 5-mCpG部位は、グアニン酸化のイオン化ポテンシャルが最も低い。
CpG部位 でのDNA脱メチル化 の開始。成体体細胞では、DNAメチル化は通常CpGジヌクレオチド( CpG部位 )のコンテキストで起こり、5-メチルシトシン -pG、または5mCpGを形成します。活性酸素種(ROS)はジヌクレオチド部位のグアニンを攻撃し、8-ヒドロキシ-2'-デオキシグアノシン (8-OHdG)を形成し、5mCp-8-OHdGジヌクレオチド部位をもたらします。塩基除去修復 酵素OGG1は 8-OHdGを標的とし、直ちに除去することなく損傷部位に結合します。5mCp-8-OHdG部位に存在するOGG1はTET1を リクルートし、TET1は8-OHdGに隣接する5mCを酸化します。これにより、5mCの脱メチル化が開始されます。[ 98 ] 酸化グアニンはミスペアリングを起こしやすく、変異原性がある。[ 99 ] オキソグアニングリコシラーゼ (OGG1)は、DNA修復中に酸化グアニンを除去する主要な酵素である。OGG1は数秒以内に8-OHdGを見つけて結合する。[ 100 ] しかし、OGG1は8-OHdGをすぐに除去するわけではない。HeLa細胞では、8-OHdGの最大除去量の半分が30分で起こり、[ 101 ] 放射線照射されたマウスでは、マウス肝臓で誘導された8-OHdGは半減期11分で除去される。[ 96 ]
OGG1がメチル化CpG部位内の酸化グアニンに存在すると、TET1を 8-OHdG病変にリクルートします(図参照)。これにより、TET1は隣接するメチル化シトシンを脱メチル化することができます。シトシンの脱メチル化はエピジェネティックな変化です。
例えば、ヒト乳腺上皮細胞を6時間H₂O₂で処理すると、 DNA 中の8-OHdGが約3.5倍に増加し、ゲノム中の5-メチルシトシンの約80%が脱メチル化されました。[ 98 ] TET酵素 活性による遺伝子プロモーターのCpGの脱メチル化は、遺伝子のメッセンジャーRNAへの転写を増加させます。[ 102 ] H₂O₂ で処理した細胞では、特定の遺伝子であるBACE1 が調べられました。[ 98 ] BACE1 CpGアイランドのメチル化レベルが低下し(エピジェネティックな変化)、これにより BACE1 メッセンジャーRNAの発現が約6.5倍増加しました。
H₂O₂ で 6 時間培養すると5-mCpG 部位の脱メチル化が かなり起こるが、H₂O₂ での培養時間が短いと他 のエピジェネティックな変化が促進されるようだ。細胞を H₂O₂ で 30 分間処理すると、ミスマッチ 修復タンパク質ヘテロ二量体 MSH2-MSH6 が DNA メチルトランスフェラーゼ 1 (DNMT1) をある種の酸化 DNA 損傷部位にリクルートする。[ 103 ] これ により 、 これらの部位でシトシンのメチル化 (エピジェネティックな変化) が増加する可能性がある。
Jiang ら[ 104 ] は、 HEK 293 細胞を 酸化 DNA 損傷を引き起こす薬剤 (臭素酸カリウム (KBrO 3 ) またはクロム酸カリウム (K 2 CrO 4 ))で処理した。酸化損傷の塩基除去修復 (BER) は、酸化グアニンに局在する DNA 修復酵素ポリメラーゼ β によって行われた。ポリメラーゼ β は、酸化 DNA 損傷のショートパッチ BER における主要なヒト ポリメラーゼである。Jiang ら[ 104 ] はまた、ポリメラーゼ β がDNA メチルトランスフェラーゼタンパク質 DNMT3b を BER 修復部位にリクルートすることも発見した。次に、 BRCA1遺伝子の プロモーター 領域と初期転写領域を含む DNA の小さな領域で、単一ヌクレオチドレベルでのメチル化パターンを評価した。臭素酸塩による酸化 DNA 損傷は、研究対象の DNA 領域内の CpG 部位で DNA メチル化パターンを調節した (エピジェネティックな変化を引き起こした)。未処理細胞では、BRCA1遺伝子の-189、-134、-29、-19、+16、および+19に位置するCpGにメチル化シトシンが存在していた(番号はメッセンジャーRNA 転写開始部位から、負の数は上流プロモーター領域のヌクレオチドを示す)。臭素酸塩処理による酸化の結果、-189、-134、+16、および+19のシトシンメチル化が消失し、DNA修復後には-80、-55、-21、および+8に位置するCpGに新たなメチル化が生じた。
相同組換え修復はエピジェネティックマーカーを変化させる いくつかの論文では、DNAメチルトランスフェラーゼ1(DNMT1) がDNA二本鎖切断部位にリクルートされることが報告されている。[ 105 ] [ 106 ] [ 107 ] 二本鎖切断の相同組換え修復(HR) 中、DNMT1の関与により、修復された2本のDNA鎖のメチル化シトシンのレベルが異なってくる。一方の鎖は、修復された二本鎖切断の下流にある約21個のCpG部位で頻繁にメチル化される。もう一方のDNA鎖は、二本鎖切断の下流で以前にメチル化されていた約6個のCpG部位でメチル化を失い、二本鎖切断の上流で以前にメチル化されていた約5個のCpG部位でもメチル化を失う。染色体が複製されると、これにより、以前の切断部位の下流で高度にメチル化された娘染色体と、以前の切断部位の上流と下流の両方の領域でメチル化されていない娘染色体が生じる。二本鎖切断によって切断された遺伝子に関して、子孫細胞の半分はその遺伝子を高レベルで発現し、残りの半分の子孫細胞ではその遺伝子の発現が抑制されている。これらの細胞のクローンを3年間維持したところ、新しいメチル化パターンはその期間にわたって維持された。[ 108 ]
CRISPRを介した相同組換え挿入がゲノムに生じたマウスでは、二本鎖切断関連挿入内のCpG部位のメチル化が多数増加していた。[ 109 ]
非相同末端結合は、一部のエピジェネティックマーカーの変化を引き起こす可能性がある。 細胞内のDNA二本鎖切断の非相同末端結合 (NHEJ)により、最初の二本鎖切断を含む遺伝子の発現が抑制された子孫細胞と、NHEJ修復に関連するエピジェネティックな変化によりその遺伝子の発現が亢進した子孫細胞が生じる可能性がある。その遺伝子のDNA二本鎖切断のNHEJ修復後に遺伝子の抑制を引き起こすエピジェネティックな変化の頻度は約0.9%である可能性がある。[ 106 ]
構造的継承 テトラヒメナ やゾウリムシ などの繊毛虫 では、遺伝的に同一の細胞でも、細胞表面の繊毛列のパターンに遺伝的な違いが見られる。実験的に変化させたパターンは娘細胞に伝達される。既存の構造が新しい構造のテンプレートとして機能しているようだ。このような遺伝のメカニズムは不明だが、多細胞生物も既存の細胞構造を利用して新しい構造を構築していると考える根拠がある。[ 110 ] [ 111 ] [ 112 ]
ヌクレオソームの位置決め 真核生物のゲノムには多数のヌクレオソームが 存在する。ヌクレオソームの位置はランダムではなく、調節タンパク質によるDNAへのアクセス性を決定する。異なる組織で活性を示すプロモーターは、異なるヌクレオソーム配置特性を持つことが示されている。[ 113 ] これは遺伝子発現と細胞分化の違いを決定する。精子細胞では、少なくとも一部のヌクレオソームが保持されていることが示されている(精子細胞では、ほとんどのヒストンがプロタミン に置き換えられているが、すべてではない)。したがって、ヌクレオソームの配置はある程度遺伝する。最近の研究では、ヌクレオソームの配置と、DNAメチル化やヒドロキシメチル化などの他のエピジェネティック因子との関連性が明らかになっている。[ 114 ]
ゲノム構造 ゲノムの三次元構造(3Dゲノム)は複雑で動的であり、ゲノム機能やDNA複製、転写、DNA損傷修復などの核内プロセスを制御する上で極めて重要である。[ 117 ]
機能と結果
脳内
メモリ 記憶の形成と維持は、ニューロンにおける記憶の生成と更新に必要な 遺伝子転写 の動的な変化を引き起こすエピジェネティックな変化によるものである。[ 30 ]
ある出来事が、ニューロン内の多数の遺伝子のメチル化の変化をもたらす一連の反応を引き起こし、その出来事の表現、つまり記憶を与えることがある。[ 30 ]
内側前頭前野(mPFC)を含む 記憶の形成に重要な脳領域には、海馬、内側前頭前野(mPFC)、前帯状皮質、扁桃体などがあり、このセクションの人間の脳の図に示されています。[ 118 ]
文脈恐怖条件付け (CFC)を受けたラットのように強い記憶が形成されると、最初に起こる出来事の1つは、海馬と内側前頭前皮質(mPFC)のニューロンでトポイソメラーゼIIBによって100以上のDNA二本鎖切断が形成されることです。 [ 119 ] これらの二本鎖切断は、記憶形成に重要な即時初期遺伝子 (IEG)の転写を活性化できる特定の場所にあり、 mRNA での発現が可能になり、CFC後7~10分でmRNA転写がピークに達します。[ 119 ] [ 120 ]
記憶形成における重要なIEGはEGR1 [ 121 ] とDNMT3A の代替プロモーターバリアントであるDNMT3A2 [ 122 ] である。EGR1タンパク質は、結合モチーフである5′-GCGTGGGCG-3′または5′-GCGGGGGCGG-3′でDNAに結合し、EGR1タンパク質が結合できるゲノム上の位置は約12,000箇所ある。[ 123 ] EGR1タンパク質は、遺伝子プロモーター 領域とエンハンサー 領域のDNAに結合する。EGR1は脱メチル化酵素TET1を結合にリクルートし、TET1をゲノム上の約600箇所に運び、そこでTET1は関連する遺伝子 を 脱メチル化して活性化することができる。[ 123 ]
シトシンおよび5-メチルシトシン DNAメチルトランスフェラーゼDNMT3A1、DNMT3A2、およびDNMT3Bはすべて、遺伝子のプロモーター内またはその近傍のCpG部位のシトシンをメチル化することができます(このセクションの画像を参照)。Manzoら[ 124 ] が示したように、これら3つのDNAメチルトランスフェラーゼは、ゲノム上の結合位置と、異なる調節部位でのDNAメチル化活性が異なります。Manzoらは、DNMT3A1に特異的に濃縮されたゲノム領域を3,970箇所、DNMT3A2に特異的に濃縮された領域を3,838箇所、DNMT3Bに特異的に濃縮された領域を3,432箇所特定しました。DNMT3A2がIEGとして新たに誘導されると(ニューロンが活性化されると)、DNMT3A2の標的領域と思われる領域で、多くの新しいシトシンメチル化が起こります。Olivieraら[ 122 ] は、海馬における神経活動誘導性IEGであるDnmt3a2のレベルが長期記憶形成能力を決定することを発見した。
ラットは文脈恐怖条件付け後に長期連合記憶を形成する。[ 125 ] Duke ら[ 29 ] は、ラットの CFC 後 24 時間で、海馬ニューロンにおいて 2,097 個の遺伝子 (ラットゲノムの遺伝子の 9.17%) のメチル化が変化していることを発見した。遺伝子のプロモーター領域の CpG 部位に新たにメチル化されたシトシンが存在すると、遺伝子は抑制されることが多く、新たに脱メチル化されたシトシンが存在すると、遺伝子は活性化される可能性がある。[ 126 ] CFC 後には、mRNA 発現が減少した遺伝子が 1,048 個、mRNA 発現が増加した遺伝子が 564 個あった。同様に、マウスが CFC を受けると、1 時間後にマウス脳の海馬領域で、脱メチル化された遺伝子が 675 個、過メチル化された遺伝子が 613 個あった。[ 127 ] しかし、記憶は海馬には残らず、4~5週間後には前帯状皮質に保存される。[ 128 ] CFC後のマウスの研究では、Halderら[ 127 ] は、CFC後4週間で前帯状皮質に少なくとも1,000個の差次的メチル化遺伝子と1,000個以上の差次的発現遺伝子が存在する一方で、海馬のメチル化の変化は元に戻っていることを示した。
新しい記憶が確立された後のメチル化のエピジェネティックな変化により、核内mRNAの異なるプールが作られます。Bernstein [ 30 ] のレビューによると、エピジェネティックに決定された新しい核内mRNA の混合物は、mRNA、大小のリボソームサブユニット 、翻訳開始因子、およびmRNA機能を調節するRNA結合タンパク質からなる神経顆粒、またはメッセンジャーRNP にパッケージ化されることがよくあります。これらの神経顆粒は神経核から輸送され、顆粒内のmRNAの3'非翻訳領域(それらの「郵便番号」)に従って、神経樹状突起 に向けられます。約2,500個のmRNAが海馬錐体ニューロンの樹状突起に局在し、おそらく450個の転写産物が興奮性シナプス前神経終末(樹状突起スパイン)にあります。 (神経細胞核におけるエピジェネティックな変化に依存する)転写産物の組成の変化は、信号に対する感受性の違いをもたらし、これがシナプス可塑性の変化の基盤となる。シナプス可塑性の変化は、学習と記憶の神経化学的基盤としてしばしば考えられている。
発達 発生エピジェネティクスは、決定論的エピジェネシスと確率論的エピジェネシスに分けられます。決定論的エピジェネシスは、DNAの構造的発達からタンパク質の機能的成熟への一方向的な動きです。ここで「決定論的」とは、発達が脚本化されていて予測可能であることを意味します。一方、確率論的エピジェネシスは、経験と外部からの成形発達を伴う双方向的な構造-機能発達です。[ 144 ]
体細胞のエピジェネティックな遺伝、特にDNAとヒストンの共有結合修飾とヌクレオソームの 再配置は、多細胞真核生物の発生において非常に重要である。[ 114 ] ゲノム配列は静的である(いくつかの注目すべき例外を除く)が、細胞はさまざまなタイプに分化し、それぞれ異なる機能を果たし、環境や細胞間シグナル伝達に対して異なる反応を示す。したがって、個体が発生するにつれて、モルフォゲンは エピジェネティックに遺伝可能な方法で遺伝子を活性化またはサイレンシングし、細胞に記憶を与える。哺乳類では、ほとんどの細胞が最終的に分化し、幹細胞 のみが複数の細胞タイプに分化する能力(「全能性」と「多能性」)を保持している。哺乳類では、 神経発生 のように、一部の幹細胞は生涯を通じて新たに分化した細胞を生成し続けるが、哺乳類は、他の動物が可能な四肢の再生能力など、一部の組織の喪失に対応することができない。エピジェネティック修飾は、神経幹細胞からグリア前駆細胞への移行を制御します(例えば、オリゴデンドロサイトへの分化はヒストンの脱アセチル化とメチル化によって制御されます)。[ 145 ] 動物とは異なり、植物細胞は最終分化せず、全能性を維持し、新しい個体植物を生み出す能力を持ちます。植物はクロマチンリモデリング など、動物と同じエピジェネティック機構の多くを利用しますが、一部の植物細胞は「細胞記憶」を使用または必要とせず、環境や周囲の細胞からの位置情報を使用して遺伝子発現パターンをリセットして運命を決定するという仮説が立てられています。[ 146 ]
エピジェネティック変化は環境曝露に応じて発生する可能性があります。たとえば、母動物の食事にゲニステイン (250 mg/kg)を補給すると、アグーチ遺伝子 の発現に影響を与えるエピジェネティック変化が生じ、毛色、体重、癌の発症傾向に影響します。[ 147 ] [ 148 ] [ 149 ] 現在進行中の研究は、糖尿病性胎児症 などの他の既知の催奇形物質が メチル化 シグネチャーに与える影響の調査に焦点を当てています。[ 150 ]
ある研究の議論を呼ぶ結果では、トラウマ体験が将来の世代に受け継がれる可能性のあるエピジェネティックなシグナルを生み出す可能性があることが示唆された。マウスは足に電気ショックを与えて桜の香りを怖がるように訓練された。研究者らは、マウスの子孫がこの特定の香りに対する嫌悪感を増したと報告した。[ 151 ] [ 152 ] 彼らは、鼻の中のこの桜の香りに特異的に反応する嗅覚受容体の機能を制御する遺伝子M71のDNA自体ではなく、遺伝子発現を増加させるエピジェネティックな変化を示唆した。訓練されたマウスとその子孫の脳には、嗅覚機能と相関する物理的変化があった。この研究の統計的検出力が低いことなど、結果の報告における偏りなどの何らかの不規則性の証拠として、いくつかの批判が報告された。[ 153 ] サンプルサイズの制限により、効果が存在しても統計的に有意な範囲内で効果が実証されない可能性がある。批判では、主張されている効果が存在すると仮定した場合、同一の手順に従えば報告されたすべての実験で肯定的な結果が得られる確率はわずか0.4%であると指摘された。また、著者らはどのマウスが兄弟であるかを明示せず、すべてのマウスを統計的に独立したものとして扱った。[ 154 ] 元の研究者らは、批判が計算で省略した論文の付録にある否定的な結果を指摘し、今後どのマウスが兄弟であるかを追跡することを約束した。[ 155 ]
薬 エピジェネティクスには、多種多様な医療応用の可能性がある。[ 180 ]
双子 一卵性双生児の直接比較は、環境エピジェネティクスを 調査するための最適なモデルを構成する。異なる環境曝露を受けたヒトの場合、一卵性(同一)双生児は幼少期にはエピジェネティックに区別がつかなかったが、年長の双生児では5-メチルシトシンDNAとヒストンアセチル化の全体的な含有量とゲノム分布に顕著な違いが見られた。[ 10 ] 生涯を共に過ごした期間が短い、または病歴に大きな違いがある双生児ペアは、5-メチルシトシン DNAとヒストン H3およびH4のアセチル化のレベルに最も大きな違いを示した。[ 181 ]
二卵性双生児と一卵性双生児は、ヒトにおけるエピジェネティックな影響の証拠を示している。[ 181 ] [ 182 ] [ 183 ] 単胎児を対象とした研究では多く見られるDNA配列の違いは、分析を妨げない。環境の違いは長期的なエピジェネティックな影響を生み出す可能性があり、発達段階の異なる一卵性双生児のサブタイプは、エピジェネティックな観点から不一致となる感受性に関して異なる可能性がある。[ 184 ]
広範な遺伝子マーカーを調べる技術であるハイスループット研究では、一卵性双生児間のエピジェネティックな違いに焦点を当て、40組の一卵性双生児のサンプルで、DNAメチル化とヒストン修飾の全体的および遺伝子座特異的な変化を比較しました。[ 181 ] この 場合、 健康な双生児のみが研究されましたが、3歳から74歳までの幅広い年齢が対象となりました。この研究の主な結論の1つは、双生児の2人の兄弟姉妹間でエピジェネティックな違いが年齢依存的に蓄積されるということです。この蓄積は、エピジェネティックな「ドリフト」の存在を示唆しています。エピジェネティックなドリフト とは、エピジェネティックな修飾が年齢と直接的に連動して起こることを指す用語です。年齢は多くの疾患の既知のリスク因子ですが、年齢に関連したメチル化は、ゲノム上の特定の部位で異なって起こることがわかっています。時間の経過とともに、これは生物学的年齢と暦年齢の間に測定可能な違いをもたらす可能性があります。エピジェネティックな変化は生活習慣 を反映しており、臨床的閾値 に達する前に疾患の機能的バイオマーカー として機能する可能性があることが判明している。 [ 185 ]
114組の一卵性双生児と80組の二卵性双生児を対象に、約6000の固有のゲノム領域のDNAメチル化状態を分析した最近の研究では、胚盤胞分裂時のエピジェネティックな類似性が、一卵性双生児の表現型の類似性にも寄与する可能性があると結論付けられました。これは、胚発生の初期段階における微小環境が エピジェネティックマークの確立に非常に重要であるという考えを裏付けています。[ 182 ] 先天性遺伝性疾患はよく理解されており、例えばアンジェルマン症候群 やプラダー・ウィリー症候群 の場合、エピジェネティクスが役割を果たす可能性があることは明らかです。これらは遺伝子欠失または遺伝子不活性化によって引き起こされる通常の遺伝性疾患ですが、ゲノムインプリンティング のために個人が本質的にヘミ接合体 であるため、非常に一般的です。したがって、単一の遺伝子ノックアウトで疾患を引き起こすのに十分であり、ほとんどの場合は両方のコピーをノックアウトする必要があります。[ 186 ]
エピジェネティックな事象から遺伝子発現を変化させる薬剤の例 β-ラクタム系抗生物質 の使用は、グルタミン酸受容体活性やシクロスポリンの複数の転写因子に対する作用を変化させる可能性がある。さらに、リチウムは 異常タンパク質のオートファジーに影響を与える可能性があり、オピオイド 薬は慢性的に使用することで、依存性表現型に関連する遺伝子の発現を増加させる可能性がある。[ 192 ]
親の栄養 、子宮内でのストレスや内分泌かく乱化学物質 への曝露、[ 193 ] 異なる配偶者の質への魅力などの男性による母性効果、母体および父親の年齢、および子孫の性別はすべて、生殖細胞系列のエピ変異が最終的に子孫に発現するかどうか、および世代間の遺伝が子孫を通じて安定している程度に影響を与える可能性がある。[ 194 ] しかし、エピジェネティック効果が世代を超えて伝達されるかどうか、またどの程度伝達されるかは、特にヒトでは依然として不明である。[ 195 ] [ 196 ]
依存症 依存症は、 転写 および神経エピジェネティック機構によって生じる脳の報酬系 の障害であり、依存性刺激(モルヒネ、コカイン、性交、ギャンブルなど)への慢性的な高レベルの曝露によって時間とともに発生します。[ 197 ] [ 198 ] [ 199 ] 依存性表現型 の世代を超えたエピジェネティック遺伝は、前臨床研究で発生することが指摘されています。[ 200 ] [ 201 ] しかし、複数の世代にわたるエピジェネティック効果の持続を裏付ける確固たる証拠は、ヒトではまだ確立されていません。たとえば、喫煙に曝露されていない曾孫に見られる出生前喫煙曝露のエピジェネティック効果などです。[ 195 ]
エピジェネティクスと癌 研究によると、エピジェネティクスは癌にも関与しており、特にエピジェネティック異常と癌の発生および進行に関与している。[ 202 ] これにより、エピジェネティック治療が開発され、最近では、DNAメチルトランスフェラーゼ(DNMT)阻害剤、ヒストン脱アセチル化酵素阻害剤(HDACi)、ヒストンメチルトランスフェラーゼ阻害剤(HMTi)などのFDA承認薬が、既存の他の癌治療と併用されるようになった。[ 203 ] 癌は遺伝的疾患とエピジェネティック疾患の両方であると考えられている。[ 204 ] これには、DNAメチル化、ヒストン修飾、マイクロRNA発現などの要素が含まれ、これらは悪性細胞の増殖につながる可能性がある。[ 204 ]
研究 遺伝情報とエピジェネティック情報の2つの形態は、まとめて二重遺伝と呼ばれます。APOBEC/AIDファミリーのシトシンデアミナーゼ は、類似の分子メカニズムを使用して遺伝的およびエピジェネティックな遺伝に同時に影響を与える可能性があり、概念的に区分されたこれらのプロセス間のクロストークのポイントである可能性があります。[ 205 ]
フルオロキノロン系 抗生物質は、鉄キレート化を介して 哺乳類 細胞にエピジェネティックな変化を誘導する。これは、鉄を 補因子として必要とするα-ケトグルタル酸依存性ジオキシゲナーゼの阻害を介してエピジェネティックな効果をもたらす。 [ 206 ]
様々な薬理学的薬剤が、誘導多能性幹細胞(iPSC)の産生や、エピジェネティックなアプローチによる胚性幹細胞(ESC)の表現型の維持に用いられている。骨髄幹細胞などの成体幹細胞も、G9aヒストンメチルトランスフェラーゼ阻害剤BIX01294で処理すると、心臓分化能を有する細胞に分化する可能性を示している。[ 207 ] [ 208 ]
細胞の可塑性、すなわち遺伝子コードの変化を伴わずに刺激に適応する能力には、エピジェネティックな変化が必要である。これらの変化は、上皮間葉転換中の癌細胞の細胞可塑性[ 209 ] や、マクロファージなどの免疫細胞[ 210 ] でも観察されている。興味深いことに、これらの適応には代謝変化が関わっており、様々な代謝物がエピジェネティックマークの化学において重要な役割を果たしている。例えば、ヒストン脱メチル化に必要なα-ケトグルタル酸や、ヒストンアセチル化に必要なアセチルCoAなどが挙げられる。
CpGサイト、SNP、および生物学的特性メチル化は、生物学的特性を決定づける遺伝子制御の広く知られたメカニズムです。しかし、強力な実験的証拠は、SNPにおけるメチル化パターンが、古典的な活性化/抑制エピジェネティックドグマの重要な追加機能として相関していることを示しています。共局在解析によって裏付けられた分子相互作用データは、配列変異とDNAメチル化の障害、分子および表現型の変異を結びつける複数の核制御経路を特定しています。[ 214 ]
UBASH3B 遺伝子座UBASH3Bは 、チロシンホスファターゼ活性を持つタンパク質をコードしており、これは以前から進行性腫瘍形成と関連付けられてきました。[ 215 ] SNP rs7115089は、この遺伝子座のDNAメチル化と発現、および体格指数(BMI)に影響を与えることが確認されています。[ 214 ] 実際、SNP rs7115089はBMI [ 216 ] およびGWASで他の心血管および代謝特性に関連する遺伝子変異と強く関連しています。[ 217 ] [ 218 ] [ 219 ] UBASH3Bが 肥満および心血管代謝疾患の潜在的なメディエーターであることを示唆する新しい研究。[ 214 ] さらに、動物モデルでは、UBASH3Bの 発現は、肥満に対するプログラムされた感受性を引き起こす可能性のあるカロリー制限の指標であり、ヒト末梢血中の脂肪量の他の指標と関連していることが実証されている。[ 220 ]
NFKBIE 遺伝子座SNP rs730775 はNFKBIE の最初のイントロンに位置し、全血中のNFKBIEの シス eQTLです。 [ 214 ] 核因子 (NF)-κB 阻害因子 ε (NFKBIE) は NF-κB1 活性を直接阻害し、NF-κB1 と有意に共発現しており、関節リウマチとも関連しています。[ 221 ] 共局在解析は、SNP rs730775 の CpG 部位の大部分の変異がNFKBIE遺伝子座の遺伝的変異を引き起こし、NF-κB による DNA メチル化の トランス 作用制御を介して関節リウマチと関連している可能性を示唆しています。[ 214 ]
FADS1 遺伝子座脂肪酸デサチュラーゼ1(FADS1)は、脂肪酸代謝における重要な酵素です。[ 222 ] さらに、FADS1 遺伝子のrs174548は、CD8+ T細胞が豊富な人ではDNAメチル化との相関が高まっています。[ 214 ] SNP rs174548は、脂肪酸代謝におけるアラキドン酸やその他の代謝物の濃度[ 223 ] [ 224 ] 、血液好酸球数[ 225 ] 、喘息などの炎症性疾患[ 226 ] と強く関連しています。相互作用の結果は、rs174548と喘息との相関を示し、免疫表現型を持つCD8+ T細胞における脂肪酸代謝に関する新たな知見をもたらしました。[ 214 ]
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