セイヨウミツバチ(Apis mellifera )は、世界中に生息する7~12種のミツバチの中で最も一般的な種です。[ 2 ] [ 3 ] [ 4 ]属名のApisはラテン語で「蜂」を意味し、melliferaはラテン語で「蜂蜜を運ぶ」または「蜂蜜を運ぶ」を意味し、この種が蜂蜜を生産することに由来しています。[ 5 ]
他のミツバチ類と同様に、セイヨウミツバチも真社会性で、1匹の繁殖能力のある雌(「女王蜂」)、多数の通常は繁殖能力のない雌(「働き蜂」)、そして少数の繁殖能力のある雄(「ドローン」)からなるコロニーを形成します。個々のコロニーには数万匹のミツバチが生息しています。コロニーの活動は、フェロモンと尻振りダンスの両方による個体間の複雑なコミュニケーションによって組織されています。
セイヨウミツバチは最初に家畜化された昆虫の1つであり、蜂蜜の生産と受粉活動の両方において、今日でも養蜂家によって飼育されている主要な種です。人間の助けにより、セイヨウミツバチは現在、南極大陸を除くすべての大陸に生息しています。セイヨウミツバチは、特にミツバチヘギイタダニとコロニー崩壊症候群などの害虫や病気によって脅かされています。2025年現在、セイヨウミツバチはIUCNレッドリストで「データ不足」と評価されています。[ 1 ]
セイヨウミツバチは、特に社会進化、学習、記憶の分野における科学研究において重要なモデル生物であり、また、市販の農薬の非標的生物への影響を評価するために、特に花粉を介した農薬毒性の研究にも利用されている。

セイヨウミツバチは南極大陸を除くすべての大陸で見られます。[ 7 ]この種はアフリカ[ 8 ]またはアジア[ 9 ]で起源したと考えられており、アフリカ、中東、ヨーロッパに自然に広がりました。[ 7 ]人間は、ヨーロッパの亜種を北アメリカ(1600年代初頭)[ 10 ] 、南アメリカ、オーストラリア、ニュージーランド、東アジア[ 11 ]に導入したことにより、その生息域を大幅に拡大しました。

セイヨウミツバチは地理的に分布を広げるにつれて、現地の環境に適応していった。[ 8 ]これらの適応には、コロニーの周期を現地の花の資源のタイミングに同期させること、寒冷な気候で冬季集団を形成すること、アフリカでの移動分蜂、砂漠地帯での採餌行動の強化などが含まれる。これらの変異が合わさって、31の亜種が認識されるに至った。[ 2 ]
以前は、さまざまな亜種はすべて交配可能であると考えられていましたが、2013年に、 A. m. mellifera の女王蜂はA. m. mellifera以外の雄蜂とは交尾しないことが判明しました。[ 12 ]
亜種は、ルトナーの研究に基づき、ミトコンドリアDNA分析によって確認された4つの主要な系統に分けられる。アフリカの亜種は系統Aに、北西ヨーロッパの亜種は系統Mに、南西ヨーロッパの亜種は系統Cに、中東の亜種は系統Oに属する。

他のほとんどのミツバチ種とは異なり、セイヨウミツバチは毎年存続する多年生コロニーを持っています。この高い社会性と永続性のため、セイヨウミツバチのコロニーは超個体とみなすことができます。これは、個々のミツバチではなく、コロニーの繁殖が生物学的に重要な単位であることを意味します。セイヨウミツバチのコロニーは「分蜂」と呼ばれるプロセスで繁殖します。[ 13 ]
ほとんどの気候では、セイヨウミツバチは春から初夏にかけて、蜜や花粉を集めるのに適した花がたくさん咲く時期に分蜂します。このような好ましい条件に応えて、巣は10~20匹の新しい女王蜂を育てます。これらの「娘女王蜂」の蛹期がほぼ完了すると、古い女王蜂と働き蜂の約3分の2が分蜂してコロニーを離れ、巣を作るのに適した新しい場所(例えば、木の幹の空洞)を見つけるためにある程度の距離を移動します。古いコロニーでは、娘女王蜂は成虫になる直前に「パイピング」を始めることが多く、[ 14 ]娘女王蜂が最終的に羽化すると、1匹だけが残るまで互いに争い、生き残ったものが新しい女王蜂になります。姉妹のうちの1匹が他の姉妹より先に羽化した場合、成虫になる前に蛹の段階で兄弟姉妹を殺してしまうことがあります。
ライバルをすべて排除すると、新しい女王蜂(唯一の繁殖可能な雌)は、母親が残した古いコロニーのためにすべての卵を産みます。未受精の雌は卵を産むことができ、その卵は雄に発達します(これは、半倍数性のため、ミツバチ、スズメバチ、アリに見られる特徴です)。しかし、雌の子孫を産むには交尾相手が必要であり、雌はコロニー内のミツバチの90%以上を占めています。そのため、新しい女王蜂は1回または複数回の結婚飛行を行い、毎回1~17匹の雄と交尾します。[ 15 ]交尾を終えると、通常は羽化後2週間以内に巣にとどまり、卵を産むという主要な役割を果たします。
生育期の残りの期間、コロニーは多くの働き蜂を生産し、働き蜂は寒い季節の食料として花粉と蜜を集めます。真夏の健康な巣の平均個体数は、40,000 匹から 80,000 匹にも達することがあります。花の蜜は働き蜂によって処理され、水分含有量がカビの発生を防ぐのに十分低くなるまで蒸発し、蜂蜜に変化します。その後、蜜蜜は蜜蝋で蓋をされ、無期限に保存できます。西部のミツバチが適応している温帯気候では、ミツバチは巣に集まり、寒い季節が過ぎるのを待ちます。この間、女王蜂は産卵を停止することがあります。この間、活動は遅く、コロニーは寒い季節の代謝熱産生に使用された蜂蜜の貯蔵を消費します。冬の中頃から終わりにかけて、女王蜂は再び産卵を始めます。これはおそらく日の長さによって引き起こされます。亜種によっては、新しい女王蜂(および分蜂群)が毎年生まれる場合もあれば、地域の環境条件や巣の中の様々な特性によって、それよりも頻度が低い場合もある。

完全変態をする他の昆虫と同様に、セイヨウミツバチには卵、幼虫、蛹、成虫の 4 つの明確な生活段階があります。セイヨウミツバチの巣の複雑な社会構造により、これらの生活段階は年間を通してほぼ同時に起こります。女王蜂は、働き蜂が準備した巣房の各セルに1 つの卵を産み付けます。卵から孵化した幼虫は、脚も目もなく、「世話蜂」(コロニーの内部を維持する働き蜂)によって育てられます。約 1 週間後、幼虫は世話蜂によってセルに封じられ、蛹の段階に入ります。さらに 1 週間後、成虫の蜂として羽化します。巣房の特定の領域が若い蜂(「幼虫」とも呼ばれる)で満たされ、他の領域が花粉と蜂蜜の貯蔵で満たされているのが一般的です。
働きバチは巣を作るための蜜蝋を分泌し、巣を掃除、維持、守り、幼虫を育て、蜜や花粉を集めます。働きバチの役割は年齢によって異なります。生後最初の10日間は、働きバチは巣を掃除し、幼虫に餌を与えます。その後、巣房を作り始めます。16日目から20日目までは、働きバチは年長の働きバチから蜜や花粉を受け取り、それを貯蔵します。20日目以降、働きバチは巣を離れ、残りの生涯を採餌バチとして過ごします。働きバチは通常不妊の雌ですが、一部の亜種はストレスを受けると受精卵を産むことがあります。働きバチは性的に完全に発達していないため、雄バチと交尾せず、半数体(雄)の子孫しか産むことができません。
女王蜂と働き蜂は、巣を守るために針と呼ばれる変形した産卵管を持っています。他の属の蜂やその種の女王蜂とは異なり、セイヨウミツバチの働き蜂の針には返しがあります。一般的に信じられていることとは異なり、蜂は刺した直後に必ずしも死ぬわけではありません。この誤解は、蜂が人間や他の哺乳類を刺した後にたいてい死ぬという事実に基づいています。針とその毒嚢は、筋肉と神経節を備えており、切り離された後も毒を注入し続けることができ、刺さったときに体から抜け落ちるように設計されています。この装置(針の返しを含む)は、脊椎動物による捕食に対応して進化したと考えられています。なぜなら、針が弾力性のある物質に埋め込まれていない限り、返しは機能せず(そして針装置が切り離されない)からです。棘は必ずしも「引っかかる」とは限らないため、ミツバチは時折針を引き抜いて無傷で飛び去ったり(あるいは再び刺したり)することがある。[ 13 ]
ほとんどの亜種の女王蜂の平均寿命は3~5年ですが、養蜂に以前使用されていたドイツミツバチ亜種(A. m. mellifera )の報告によると、女王蜂は最長8年生きることができます。 [ 16 ]女王蜂の精子の貯蔵量は寿命の終わりに近づくと枯渇するため、受精していない卵をより多く産み始めます。このため、養蜂家は1~2年ごとに女王蜂を交換することがよくあります。
冬が長い地域では、働き蜂の寿命は年間を通して大きく変動する。春と夏に生まれた働き蜂は懸命に働き、数週間しか生きないが、秋に生まれた働き蜂はコロニーが集まるため数ヶ月間コロニー内に留まる。年間平均では、コロニーの働き蜂の約1%が1日に自然死する。[ 17 ]女王蜂を除いて、コロニーの働き蜂はすべて約4ヶ月ごとに入れ替わる。

カーストとサブカースト間の行動的および生理学的差異は、遺伝可能な遺伝子型の違いではなく遺伝子発現に依存する表現型の可塑性から生じる。 [ 18 ] [ 19 ]
女王蜂は繁殖能力のある雌で、働き蜂(これも雌)とは異なり、生殖器系が完全に発達しています。女王蜂は働き蜂よりも大きく、特徴的な丸みを帯びた長い腹部を持っています。雌の卵は女王蜂にも働き蜂にもなります。働き蜂と女王蜂の幼虫は、最初の3日間は高タンパク質でフラボノイドが少ないローヤルゼリーを与えられます。その後、将来の働き蜂の幼虫は花粉と蜜の混合食(しばしば「ビーブレッド」と呼ばれる)に切り替えられますが、将来の女王蜂は引き続きローヤルゼリーを与えられます。フラボノイドがなく高タンパク質の食事がある中で、雌蜂は数万匹の娘働き蜂のコロニーを維持するために必要な強力な生殖器系を発達させることで女王蜂に成長します[ 20 ] 。
コロニーは定期的に新しい女王蜂が必要だと判断します。その主な原因は3つあります。
緊急の女王蜂交代は、新しい女王蜂房が巣枠の下部からぶら下がるのではなく、巣房から作られることから一般的に認識できます。どのようなきっかけであれ、働き蜂は既存の幼虫にビーブレッドではなくローヤルゼリーを与え続け、選ばれた幼虫の巣房を拡張して、成長中のより大きな女王蜂を収容することで、既存の幼虫を女王蜂に育てます。
女王蜂は、ハチの巣の一般的な水平方向の育児房では育てられません。女王房はより大きく、垂直方向に配置されています。働き蜂は、老いた女王蜂が弱っていることを察知すると、卵や幼虫の入った房から緊急用の巣房(交代房と呼ばれる)を作り、巣から突き出します。女王蜂は幼虫の摂食を終えて蛹になると、頭を下にした姿勢になり、その後、巣房からかじって出てきます。蛹になると、働き蜂は巣房に蓋をします。女王蜂は、女王の匂いと呼ばれる複雑なフェロモンの集合体を放出することで、働き蜂を支配します。
巣の中や周辺で数日間慣れた後、若い女王蜂は雄蜂の集合場所へと飛び立ちます。雄蜂の集合場所は、開けた場所の近くで、通常は地上約9.1メートル(30フィート)の高さにあり、様々な巣から雄蜂が集まります。雄蜂は、集合場所に女王蜂がいることを匂いで察知し、目視で女王蜂を見つけて空中で交尾します。女王蜂のフェロモンを使って、雄蜂に「ダミー」の女王蜂と交尾させることもできます。女王蜂は複数回交尾し、受精嚢がいっぱいになるまで(天候が許せば)数日間連続で交尾のために巣を離れることもあります。
女王蜂は健康なコロニーのすべての卵を産みます。産卵数と産卵ペースは、天候、資源の利用可能性、および特定の種族特性によって左右されます。女王蜂は一般的に初秋に産卵ペースを落とし始め、冬の間は産卵を止めることもあります。産卵は一般的に日が長くなる晩冬に再開し、春にピークを迎えます。最盛期には、女王蜂は1日に2,500個以上の卵を産むことがあります(これは女王蜂の体重を上回ります)。
女王蜂は、働き蜂サイズの巣房に産み落とされた卵を、貯精嚢に蓄えられた精子で受精させる。雄蜂サイズの(より大きな)巣房に産み落とされた卵は受精されずに残され、女王蜂や働き蜂の卵の半分の遺伝子しか持たないこれらの未受精卵は、雄蜂へと成長する。

働きアリは、女王アリが受精した二倍体卵から発生する雌アリです。働きアリは社会構造とコロニーの適切な機能にとって不可欠です。女王アリは繁殖に専念しているため、働きアリがコロニーの主要な役割を担います。働きアリは姉妹の働きアリや将来の女王アリを育て、女王アリはやがて巣を離れて自身のコロニーを築きます。また、働きアリは蜜や花粉を採集して巣に持ち帰り、幼虫に与えたり、コロニーを守ったりします。


ドローンはコロニーの雄蜂です。産卵管を持たないため、毒針もありません。ドローンは蜜や花粉を集めません。ドローンの主な役割は、新しい女王蜂を受精させることです。多くのドローンが飛行中に女王蜂と交尾します。受精には致命的な痙攣を伴うため、交尾後すぐに死んでしまいます。ドローンは遺伝的に半数体(単一の非対合染色体)であり、母親(女王蜂)からのみ子孫を残します。温帯地域では、ドローンは一般的に冬が来る前に巣から追い出され、採餌や蜂蜜の生産、自己管理ができないため、寒さと飢餓で死んでしまいます。ドローンは働き蜂の1.5倍の大きさであるため、巣の中で体温調節に重要な役割を果たしていると考えられています。理由は不明ですが、ドローンは通常、巣の集団の中心付近に位置しています。低温では精子の生存能力が損なわれる可能性があるため、その生存能力を維持するためであると推測されている。別の可能性のある説明としては、より中心的な場所にいることで雄バチが暖かさに貢献できるということである。25 °C (77 ° F)未満の温度では、雄バチの貢献能力が低下するからである。[ 21 ]
繁殖能力のある雌の働き蜂が雄蜂を産むと、その働き蜂の利益と女王蜂の利益との間で対立が生じる。働き蜂は雄蜂と遺伝子の半分を共有し、兄弟と遺伝子の4分の1を共有するため、女王蜂の子孫よりも自分の子孫を優先する。女王蜂は自分の息子と遺伝子の半分を共有し、繁殖能力のある雌の働き蜂の息子と遺伝子の4分の1を共有する。[ 22 ]これにより、働き蜂は女王蜂や他の働き蜂と対立し、他の働き蜂は自分と最も血縁関係のある子孫を育てることで繁殖能力を最大化しようとする。この関係は「働き蜂による監視」と呼ばれる現象につながる。このようなまれな状況では、巣内の他の働き蜂(繁殖能力のある働き蜂の息子よりも女王蜂の息子と遺伝的に血縁関係にある)が巣内を巡回し、働き蜂が産んだ卵を取り除く。
働きアリによる監視のもう 1 つの形態は、繁殖可能な雌アリに対する攻撃です。[ 23 ]いくつかの研究では、働きアリが働きアリが産んだ卵と女王アリが産んだ卵を区別するのに役立つ女王フェロモンを示唆していますが、他の研究では、卵の生存能力が行動を引き起こす主要な要因であると指摘しています。[ 24 ] [ 25 ]
働きアリによる監視は、強制的な利他主義の一例であり、働きアリの繁殖による利益が最小限に抑えられ、女王アリの子孫を育てることによる利益が最大限に高められる。
ごくまれに、働きバチが巣の監視メカニズムを覆し、他の働きバチが卵を取り除くよりも速く産卵することがあります。これは無秩序症候群として知られています。無秩序な働きバチは卵巣をより活発に活動させ、巣により多くの雄バチを提供することができます。雄バチの数が増えると巣全体の生産性は低下しますが、雄バチの母親の繁殖能力は向上します。無秩序症候群は、巣の安定性のために個体レベルと集団レベルで逆方向に働く選択の一例です。[ 26 ]
通常の状況では、女王蜂が死んだり取り除かれたりすると、働き蜂の卵巣が活性化した働き蜂の割合がかなり高くなるため、働き蜂の繁殖が増加する。働き蜂は巣が崩壊する前に最後の雄蜂を産む。この期間中、働き蜂による監視は通常行われないが、特定のミツバチのグループではそれが継続される。[ 27 ]
血縁選択の戦略によれば、女王が一度しか交尾しない場合、働きアリによる監視は有利にならない。その場合、働きアリは遺伝子の4分の3で血縁関係にあり、働きアリの息子は通常よりも女王の息子と血縁関係にある。そうなると、監視の利点は相殺される。この仮説を裏付ける実験では、多くの社会性膜翅目昆虫において、交尾率の上昇と働きアリによる監視率の上昇との間に相関関係があることが示されている。[ 28 ]

セイヨウミツバチは飛行するために体温が35 ℃(95 °F)必要です。この温度は巣の中で維持され、幼虫の発育に役立ち、蜜蝋の生成にも最適な温度です。巣の周辺部の温度は外気温によって変化し、冬の巣の内部温度は20~22 ℃(68~72 °F)まで低下することがあります。
セイヨウミツバチは、飛翔筋の温度を調節する行動的および生理学的メカニズムにより、 30 °C (86 °F)を超える気温範囲で採餌することができます。低温から高温までのメカニズムは、飛行前に震え、さらに震えるために飛行を停止すること、作業に基づく受動的な体温調節、および吐き戻した蜜嚢の内容物からの蒸発冷却です。体温は、階級と期待される採餌報酬によって異なります。 [ 29 ]
採餌に最適な気温は22~25 °C (72~77 °F)です。飛行中、ミツバチの比較的大きな飛行筋は熱を発生させ、それを放散する必要があります。ミツバチは蒸発冷却を利用して口から熱を放出します。高温条件下では、胸部の熱は頭部を通して放散されます。ミツバチは温かい体液の滴(「蜜の塊滴」)を吐き戻し、頭部の温度を10 °C (18 °F)下げます。[ 30 ]
7~10 ℃(45~50 °F)以下ではミツバチは動かなくなり、38 ℃(100 °F)以上では活動が鈍くなる。セイヨウミツバチは短時間であれば50 ℃(122 °F)までの温度に耐えることができる。
Apis ceranaが示すような熱防御能力は欠如しているが、少なくとも 1 つの亜種Apis mellifera cypria は、致死温度に達することはできないものの、侵入してきたスズメバチを窒息死させることができる。[ 31 ]
飛行経験が豊富なミツバチ(Apis mellifera)は、飛行経験の少ないミツバチと比較して、飛行筋におけるDNA損傷が増加していることが、 8-オキソ-2'-デオキシグアノシンの増加によって測定されている。 [ 32 ]このDNA損傷の増加は、飛行に伴う酸化ストレス 中の酸化促進物質と抗酸化物質の不均衡によるものと考えられる。飛行によって誘発される酸化DNA損傷は、ミツバチ(A. mellifera)の老化を早め、寿命を制限するようである。[ 32 ]

セイヨウミツバチの行動は広範囲にわたって研究されてきた。ミツバチのコミュニケーションの研究で1973年にノーベル生理学・医学賞を受賞したカール・フォン・フリッシュは、ミツバチがダンスでコミュニケーションをとることに気づいた。ミツバチは、巣の垂直の巣板に戻ってくる働きバチのダンスを通して、食料源までの距離、状況、方向に関する情報を伝達する。[ 33 ]ミツバチは、ラウンドダンスとワグルダンスで他のミツバチを食料源に導く。ラウンドダンスは、食料が巣から50メートル(160フィート)以内にあることを他の採餌蜂に伝えるが、方向に関する情報は不十分である。垂直または水平に行われるワグルダンスは、食料源までの距離と方向についてより詳細な情報を提供する。採餌蜂は、ダンスによって導かれた後、食料源を見つけるために嗅覚にも頼っていると考えられている。
セイヨウミツバチは、新しい目標として設定された場所の種類を示すために、尻振りダンスの精度も変化させます。近縁種のドワーフミツバチはそうしません。[ 34 ]したがって、セイヨウミツバチは、ドワーフミツバチとの共通祖先よりも優れた情報伝達手段を進化させてきたようです。[ 35 ]
もう一つのコミュニケーション手段は、震え信号、別名ジャーキングダンス、振動ダンス、または振動信号です。震え信号は働き蜂のコミュニケーションで最も一般的ですが、繁殖期の分蜂でも見られます。働き蜂は前脚で別の蜂をつかみながら、背腹方向に体を震わせます。採餌蜂の生活における震え信号とその実行につながる条件を調査したヤコブス・ビースマイヤーは、観察された震え信号の92%は経験豊富な採餌蜂によって実行され、これらの信号の64%は食料源の発見後に行われたことを発見しました。震え信号の約71%は、その日の最初の5回の採餌飛行が成功する前に発生しました。尻振りダンスなどの他のコミュニケーション信号は、最初の5回の成功後に多く行われました。ビースマイヤーは、震え信号を行う蜂のほとんどが採餌蜂であり、震え信号は採餌前の蜂に対して採餌中の蜂によって最も頻繁に実行されることを示し、これは複数の活動(または活動レベル)の伝達メッセージであると結論付けました。活動的なミツバチが活動的でないミツバチを揺さぶる場合のように、信号が活動を促進することもあります。また、一日の終わりなど、信号が抑制的な役割を果たす場合もあります。ただし、揺さぶる信号は、活動的でないミツバチに優先的に向けられます。ミツバチ間のこれら3つのコミュニケーション方法は、採餌や作業管理においていずれも効果的です。
フェロモン(化学的コミュニケーションに関わる物質)はミツバチの生存に不可欠です。セイヨウミツバチは、交尾、警報、防御、方向付け、血縁者やコロニーの認識、食料生産、コロニー活動の統合など、ほぼすべての行動にフェロモンを利用しています。[ 36 ] [ 37 ]
警報フェロモンはミツバチ小甲虫を引き付けることがわかっています。そのため、侵入者から身を守るために警備蜂を動員することと、より多くの甲虫を引き付けることにはトレードオフがあります。ミツバチ小甲虫はミツバチフェロモンに対する感知閾値が低いため、ミツバチの巣への被害が悪化します。[ 38 ]
個々のミツバチは、社会行動においてかなりのばらつきを示します。[ 39 ]例えば、ミツバチ間の液体交換(栄養交換)の持続時間は、個体内で一貫した長期的なパターンを示し、[ 40 ]人間で観察される安定した社会的傾向に似ています。
社会性の多様性の一部は、進化的に保存された分子的なルーツを持っている。[ 41 ]


人類は何千年もの間、セイヨウミツバチから蜂蜜を採取しており、その証拠はフランスやスペインで発見された岩絵に見られ、紀元前7000年頃に遡る。[ 42 ] [ 43 ]セイヨウミツバチは、家畜化された数少ない無脊椎動物の1つである。蜂は紀元前2600年以前の古代エジプトで最初に家畜化されたと考えられており、墓の壁画には養蜂の様子が描かれている。[ 44 ]ヨーロッパ人は1622年に北アメリカに蜂を持ち込んだ。 [ 45 ] [ 46 ]
養蜂家は、いくつかの望ましい特徴を持つ西洋ミツバチを選抜してきました。[ 45 ]
これらの改良と人工的な生息地の変更により、養蜂家の視点から見ると西洋ミツバチは改良され、同時に生存のために養蜂家への依存度が高まった。ヨーロッパでは、寒冷地での生存が意識的か無意識的かにかかわらず選択された可能性が高いが、アフリカでは、暑さ、干ばつ、豪雨に耐える能力が選択された可能性が高い。[ 45 ]
この程度の人為選択が真の家畜化を構成するかどうかについては、著者の間で意見が一致していません。1603年にジョン・ギリムは「ミツバチは飼育者の利益のために非常に従順であるため、家畜昆虫とみなすことができる」と書いています。[ 47 ]最近では、受粉を研究している多くの生物学者が、西洋ミツバチの家畜化された状態を当然のこととしています。[ 48 ] [ 49 ]例えば、レイチェル・ウィンフリーらは「私たちは作物の受粉をモデルシステムとして使用し、家畜化された受粉媒介者(ミツバチ)の喪失が在来の野生のミツバチ種によって補われるかどうかを調査しました」と書いています。[ 50 ]同様に、ブライアン・デニスとウィリアム・ケンプは次のように書いています。「ミツバチの家畜化は世界中の多くの文化における食料ベースの社会経済システムの進化と密接に関連していますが、現在の経済的な観点から、そして米国だけでも、2013年の蜂蜜の卸売価格の推定額は3億1700万ドルを超えていますが、受粉サービスの年間推定総額(110億~150億ドルと様々に評価されている)と比べると見劣りします。」[ 51 ]
一方、PR オクスリーと BP オールドロイド (2010) は、西洋ミツバチの家畜化はせいぜい部分的であると考えている。[ 52 ]オールドロイドは、人々が少なくとも 7,000 年もミツバチを飼育してきたことを考えると、完全な家畜化が起こっていないのはやや意外だと指摘している。その代わりに、養蜂家は巣箱を使ってミツバチを管理する方法を見つけており、ミツバチは「野生の近縁種とほとんど変わっていない」ままである。[ 53 ]
レスリー・ベイリーとBV・ボールは、著書『ミツバチ病理学』の中で、セイヨウミツバチを「野生の昆虫」と呼び、家畜化された唯一の昆虫であるカイコ(Bombyx mori)とは対照的であると述べている。また、「多くの生物学者や養蜂家の間で、ミツバチは家畜化されているという通説」にも言及している。彼らは、セイヨウミツバチは人間の助けがなくても生き延びることができ、実際には生き延びるためには「自由に放っておかれる」必要があると主張している。さらに、たとえミツバチを野生から離れた場所で飼育できたとしても、蜜を集めて植物を受粉させるためには、やはり自由に飛び回らなければならないと述べている。したがって、養蜂は「野生昆虫のコロニーの搾取」であり、巣を作るための耐候性のある空洞を提供する以上のことはほとんどない、と彼らは主張する。[ 54 ]同様に、ピラール・デ・ラ・ルアらは、西洋ミツバチは完全に家畜化されていないと主張し、「ヨーロッパとアフリカでは、固有の亜種特有の遺伝的痕跡がまだ確認できる」ため、野生ミツバチの多様性の保全が重要であると述べている。さらに、交尾のために雄バチを制御することの難しさは深刻な障害であり、家畜化が完了していない兆候であると主張している。特に、「野生/野生化したミツバチと管理されたミツバチの集団間では、通常、広範な遺伝子流動が起こる」ためである。[ 55 ]

セイヨウミツバチはコロニーを形成する昆虫で、養蜂家によって飼育、輸送、そして時には餌やりも行われます。ミツバチは単独では生存・繁殖せず、コロニー(超個体)の一部として生存・繁殖します。
セイヨウミツバチは花の蜜を集め、それを蜂蜜に変えて巣に貯蔵します。蜜はミツバチの胃で運ばれ、消化酵素を加えて蜂蜜に変え、蜂蜜室に貯蔵して部分的に脱水します。蜜と蜂蜜は、ミツバチの飛翔筋のエネルギー源となり、冬の間は巣を暖めるためにも使われます。セイヨウミツバチは花粉も集め、それを加工して蜂蜜パンにすることで、幼虫の成長に必要なタンパク質と脂肪を供給します。何世紀にもわたる人間の選択的育種によって、コロニーが必要とする量よりもはるかに多くの蜂蜜を生産するセイヨウミツバチが作られ、養蜂家(養蜂家とも呼ばれる)は余剰の蜂蜜を収穫します。
養蜂家は、ミツバチのコロニーが生活し、蜂蜜を貯蔵する場所を提供します。ミツバチの巣箱には、スケップ、ラングストロス巣箱、トップバー巣箱、ボックス巣箱、ログガム巣箱、DE巣箱、ミラー巣箱の7つの基本的なタイプがあります。[ 13 ]米国のすべての州では、養蜂家が移動可能なフレームを使用することを義務付けており、これにより、養蜂家は、博物館での使用などの目的で許可された特別な許可なしに、ラングストロス巣箱、トップバー巣箱、DE巣箱を所有することができます。現代の巣箱は、作物の受粉が必要な場合に、養蜂家がミツバチを畑から畑へと移動させることも可能にします(これは養蜂家の収入源となります)。
寒冷地では、養蜂家の中には、冬の間、ミツバチのコロニーを屋内に移すことで(成功の度合いは様々だが)コロニーを生かしておくことに成功している者もいる。この方法は、コロニーを極端な温度変化から守り、養蜂家にとって冬の世話や給餌をより容易にする一方で、赤痢のリスクを高め、ミツバチの呼吸によって二酸化炭素が過剰に蓄積されるという問題も引き起こす。屋内越冬は、カナダの養蜂家によって改良されており、彼らはミツバチの越冬専用の大きな納屋を使用し、自動換気システムによって二酸化炭素の拡散を促進している。

ミツバチは、養蜂場の産物の一つです。交尾済みの女王蜂、女王蜂と2~5ポンド(0.91~2.27 kg)のミツバチが入った春のパッケージ、核群(幼虫の入った巣枠を含む)、または完全な群として購入できます。西洋ミツバチの商業は、最初のミツバチの群がイギリスからバージニアに出荷された1622年まで遡ります。女王蜂の生産と群の分割による増殖の現代的な方法は、1800年代後半に遡ります。蜂蜜は巣を殺して採取され、ミツバチと蜂製品は主に地域貿易の対象でした。米国で最初の商業養蜂家は、ニューヨークのモーゼス・クインビーと考えられており、彼は巣を殺さずに採取できる移動式箱型巣箱を実験しました。第一次世界大戦後の道路と自動車の改良により、商業養蜂家は事業規模を拡大することができました。[ 56 ]

セイヨウミツバチは作物の重要な花粉媒介者であり、この役割がセイヨウミツバチの商業的価値の大部分を占めています。2005年には、セイヨウミツバチの商業的価値は世界中で2,000億ドル弱と推定されました。 [ 57 ]世界中で栽培されている多くの作物種がセイヨウミツバチに依存しています。[ 58 ]果樹園や畑の規模は拡大していますが、野生の花粉媒介者は減少しています。多くの地域では、移動養蜂家が作物の開花期に巣箱を供給し、開花期が終わると移動させることで、花粉媒介者の不足に対処しています。商業養蜂家は、予想される花粉媒介サービスに応じて移動と越冬場所を計画します。高緯度では、十分な数のミツバチを越冬させることや、早咲きの植物のためにミツバチを準備することは困難(または不可能)です。移動の多くは季節的なもので、巣箱は温暖な気候で越冬し、高緯度で開花を追って移動します。
カリフォルニアでは、アーモンドの受粉は、地元の巣箱が個体数を増やす前の生育期の早い時期である2月に行われます。アーモンドの果樹園では、最大収量を得るために1エーカーあたり2つの巣箱、つまり1つの巣箱あたり2,000平方メートル(22,000平方フィート)が必要であり、受粉は温暖な気候からの巣箱の輸入に依存しています。アーモンドの受粉(米国では2月と3月)は、世界最大の管理された受粉イベントであり、国内の管理されたミツバチ全体の3分の1以上を必要とします。ミツバチは、ニューヨーク、ミシガン、ワシントンのリンゴの受粉のためにも大量に移動されます。ミツバチはブルーベリーの受粉者としては非効率的であるにもかかわらず[ 59 ] 、この作物や他の単作作物のために簡単に移動して集中させることができる唯一の受粉者であるため、多数のミツバチがメイン州に移動されます。ミツバチや他の昆虫は、花粉を他の生物学的に特定の植物に運ぶことによって、花の恒常性を維持します。 [ 60 ]これにより、花柱が他の種の花粉で詰まるのを防ぎます。[ 61 ] 2000年、コーネル大学のロジャー・モース博士とニコラス・カルデロン博士は、セイヨウミツバチがアメリカの食用作物に与える影響を定量化しようと試みました。彼らの計算では、食用作物の価値が146億米ドルという数字が出ました。[ 62 ]
蜂蜜は、ミツバチが植物や樹木から集めた蜜や甘い沈殿物から作られる複雑な物質で、巣に集められ、加工され、貯蔵されます。[ 63 ]蜂蜜は、主にグルコースとフルクトースからなる転化糖の生物学的混合物です。抗菌作用と抗真菌作用があります。セイヨウミツバチの蜂蜜は、テトラゴニスカ・アングストゥラというミツバチの蜂蜜と同様に、感染症を引き起こす細菌である黄色ブドウ球菌に対して特異的な抗菌活性があります。 [ 64 ] [ 65 ]蜂蜜は通常の条件下で保存すると腐敗したり発酵したりしませんが、時間の経過とともに結晶化します。結晶化した蜂蜜は人間が使用しても問題ありませんが、ミツバチは液体の蜂蜜しか使用できず、巣から結晶化した蜂蜜を取り除いて捨てます。


ミツバチは、約80%が水分で、残りの糖類が複雑な液体である蜜を集めて蜂蜜を作ります。蜜を集めたミツバチは、蜜を第二胃に蓄え、巣に戻ります。巣に戻った働きバチは蜜を取り出し、消化酵素を使って複雑な糖類をより単純な糖類に分解しながら、約30分かけて生の蜜を消化します。こうしてできた生の蜂蜜は、空の巣房に広げて乾燥させ、水分含有量を20%未満に減らします。蜜を処理する際、ミツバチは羽を扇いで巣の中に風を送ります。蜂蜜が乾燥すると、保存のために巣房は蜜蝋で封じられます。
成熟した働きバチは腹部の腺から蜜蝋を分泌し、それを使って巣の壁と蓋を形成します。[ 66 ]蜂蜜が収穫されると、蜜蝋はろうそくやシールなどの製品に使用できます。
ミツバチは花粉かごに花粉を集め、巣に持ち帰ります。巣では、花粉は発酵してビーブレッドになり、幼虫の飼育のためのタンパク源となります。 [ 67 ]余剰の花粉は巣から集めることができます。ミツバチの花粉は、人間が栄養補助食品として摂取することもありますが、感受性の高い人にはアレルギー反応を引き起こす可能性があります。
ミツバチの卵、幼虫、蛹などの幼虫は食用で、栄養価が非常に高い。幼虫には牛肉や鶏肉と同量のタンパク質が含まれている。養蜂家がミツバチを余剰に抱え、これ以上増やしたくない場合に、副産物として幼虫を採取することが多い。
プロポリスは、ミツバチが木の芽、樹液、その他の植物源から集めた樹脂状の混合物で、巣の中の不要な隙間を塞ぐために使われます。[ 68 ]プロポリスには健康上の利点があるとされていますが(プロポリスのチンキは風邪やインフルエンザの治療薬として販売されています)、人によっては重度のアレルギー反応を引き起こす可能性があります。[ 69 ]プロポリスは木材の仕上げにも使われ、ストラディバリウスのバイオリンに独特の赤い色を与えています。[ 70 ]
ローヤルゼリーは、ミツバチの幼虫と女王蜂の栄養源となる分泌物です。[ 71 ]健康効果があるとされていますが、その根拠は示されていません。[ 72 ] [ 73 ]一方、人によっては重度のアレルギー反応を引き起こす可能性があります。[ 74 ]
雌のミツバチは二倍体で32本の染色体を持つ一方、雄のミツバチは一倍体で16本の染色体しか持たない。
2006年10月28日現在、ミツバチゲノムシーケンスコンソーシアムは、セイヨウミツバチ(Apis mellifera)のゲノムを完全に解読し、解析しました。2007年以降、多くの地域でセイヨウミツバチのコロニーが減少する「コロニー崩壊症候群」に注目が集まっています。
セイヨウミツバチは、ショウジョウバエと蚊に次いで、ゲノムが解読された3番目の昆虫です。遺伝子コードを解析した科学者によると、ミツバチはアフリカで生まれ、2回の古代の移動でヨーロッパに広がりました。[ 8 ]科学者は、嗅覚に関連する遺伝子が味覚に関連する遺伝子より多く、セイヨウミツバチはショウジョウバエや蚊よりも免疫を調節する遺伝子が少ないことを発見しました。 [ 75 ]ゲノム配列はまた、いくつかの遺伝子群、特に概日リズムに関連する遺伝子群が、他の昆虫よりも脊椎動物の遺伝子群に似ていることを明らかにしました。ミツバチのゲノム研究からのもう1つの重要な発見は、セイヨウミツバチが、機能的なキー酵素( DNAメチルトランスフェラーゼ-1と-3)がゲノム内で同定されたため、機能的なDNAメチル化システムを持つ最初の昆虫として発見されたことです。 DNAメチル化は、DNA配列を変えずに遺伝子発現と制御を研究するためのエピジェネティクスの重要なメカニズムの1つであり、DNA活性の修飾である。 [ 76 ] DNAメチル化は後に、遺伝子制御と遺伝子スプライシングにおいて重要な役割を果たすことが確認された。[ 77 ]ゲノムは、転移因子が少ないという点で特異であるが、それらは進化の過去に存在し(遺物や化石が発見されている)、ハエの種よりもゆっくりと進化してきた。[ 75 ]
2018年以降、ミツバチゲノムの新しいバージョンがNCBIで利用可能になりました(Amel_HAv3.1、BioProject ID: PRJNA471592)。[ 78 ]このアセンブリには、染色体長の完全なスキャフォールドが含まれています。これは、各染色体の配列データが連続しており、スキャフォールドと呼ばれる複数の断片に分割されていないことを意味します。種の高度に連続した参照ゲノムの存在により、ゲノムに影響を与える進化プロセスのより詳細な調査や、たとえば集団間の分化や集団内の多様性のより正確な推定が可能になります。
ミツバチのゲノムを形成する重要なプロセスは減数分裂組換えであり、その率はミツバチや膜翅目に属する他の社会性昆虫では、真菌や原生動物を除くほとんどの他の真核生物種と比較して著しく高い。[ 79 ]社会性膜翅目昆虫における組換え率の上昇の理由は完全には解明されていないが、社会行動に関連しているという説がある。高い組換え率によってもたらされる遺伝的多様性の増加は、働きバチが寄生虫に対して脆弱でなくなり、コロニー内のさまざまなタスクへの特化を促進する可能性がある。[ 79 ]
セイヨウミツバチの働き蜂の腸内の細菌群集構成は、ほぼすべての個体蜂とコロニーで非常に類似していることが観察されている(>90%)[ 80 ]。5つのコア細菌種は、蜂の腸内に遍在している。グラム陰性菌のうち、Snodgrassella alviとGilliamella apicolaは回腸の内壁に定着し、グラム陽性菌であるBombilactobacillusとLactobacillusは回腸の内腔(空間)内にグラム陰性菌よりも低い頻度で存在する。グラム陽性菌は、より少ないBifidobacteriumとともに直腸を支配している[ 80 ]。4つの非コア種、Frischella perrara、Bartonella apis、Apibacter adventoris、およびAcetobacteraceaeは、蜂の腸内でより低い頻度でより低い存在量で観察されている[ 80 ] [ 81 ]。これらやその他のあまり頻繁には観察されない細菌は、働きバチの巣や採餌環境を代表するものであることが多い。種レベルでは構成は高度に保存されているが、コアメンバーと非コアメンバーの両方において、個々のハチ内およびコロニー間で株の多様性が高い[ 81 ]。
ミツバチは社会的に微生物叢を獲得する[ 80 ]。幼虫期には、ミツバチは腸内微生物叢を持たないが、発育中に餌を与える働きバチからいくつかの種を獲得する可能性がある。幼虫から蛹への移行と羽化の過程で、腸壁が剥がれ落ち、羽化時には不妊または最小限の微生物しか定着していない成虫の働きバチとなる。その後、成虫になる前に、糞口感染、巣の環境と材料、個々のハチ間の経口栄養交換など、いくつかの社会的伝達経路を介して腸内微生物叢が定着する。
ミツバチの腸内微生物叢は、ミツバチが摂取する植物由来の炭水化物を分解するなど、栄養と代謝において役割を果たしていることが観察されている。ヒトの腸内微生物叢の動態で観察されているように、ミツバチの腸内微生物叢も、腸上皮細胞に必要な栄養素である酪酸などの短鎖脂肪酸に影響を与える[ 81 ] 。ミツバチの腸内微生物叢は、セラチア・マルセセンスなどの病原体に対する防御とも関連付けられている[ 81 ]。腸内微生物叢の動態に関する一般的な疑問は、宿主の行動への影響である[ 82 ]。働きバチの専門化と行動への影響も、コアメンバーの微生物叢の構成の変化と関連付けられている。例えば、育児係として働く若い成虫の働きアリは、 BombilactobacillusとLactobacillusの個体数が多いことが観察されており、Gillamella apicolaのコロニー形成の増加は、採餌係への発達の成功と関連している[ 83 ]。
セイヨウミツバチは社会行動やその他のライフサイクルダイナミクスの研究モデルとして確立されているが[ 84 ]、腸内マイクロバイオームのダイナミクスを研究および操作するための魅力的なモデルとしても登場している。ヒトとミツバチの腸内マイクロバイオームは、構成、構造、宿主との相互作用において重要な類似点を共有している。注目すべきは、どちらのマイクロバイオームも社会的に伝達され、高い株多様性を示し、両方に存在する微生物叢は同様に酸素と栄養素が乏しい遠位腸管環境に生息している点である[ 85 ]。
実際には、セイヨウミツバチの家畜化と養蜂の歴史が確立されているため、適切に管理された巣箱は、実験作業のために数百の複製を容易に提供できるだけでなく、マイクロバイオームの社会的獲得を研究するための自然環境も提供します。マウスなどのより伝統的な哺乳類モデルとは対照的に、無菌および/または無菌のミツバチは、抗生物質、複雑な手順、または複雑な飼育設備を必要とせずに、実験室ではるかに簡単に飼育および維持できます[ 85 ] 。その後、成虫のミツバチに、研究のために特定の細菌を個別にまたは集団で制御された用量で投与することができます。

セイヨウミツバチの個体群は生存の脅威に直面している。このため、一般的な東部マルハナバチなどの他の花粉媒介種への関心が高まっている。[ 86 ]北米とヨーロッパの個体群は、1990 年代初頭にミツバチヘギイタダニの蔓延により深刻な減少に見舞われ、米国の養蜂家は2006 年と 2007 年にコロニー崩壊症候群の影響をさらに受けた。[ 87 ] Apis melliferaのいくつかの亜種は、例えばApis mellifera lamarckii [ 44 ]やApis mellifera carnica [ 88 ]のように、自然にミツバチヘギイタダニに敏感な衛生状態を示す。改良された栽培方法とミツバチヘギイタダニに対する化学処理により、ほとんどの商業養蜂が救われた。新しいミツバチの品種は、養蜂家の殺ダニ剤への依存を減らし始めている。この期間中、野生のミツバチの個体群は大幅に減少した。ミツバチは、主に温暖な気候の地域で、ミツバチヘギイタダニに対する抵抗性の自然選択と抵抗性品種による再増殖により、徐々に回復している。一般的には、特にラベルの指示を超えて使用した場合、殺虫剤もミツバチの個体数を減少させていると考えられているが、ミツバチの害虫や病気(アメリカ腐蛆病や気管ダニなど)が薬剤に耐性を持つようになっているため、この点に関する研究は決定的ではない。2012年のネオニコチノイド系殺虫剤の影響に関する研究では、「野外での現実的な用量での野外調査では影響は観察されなかった」と示された。[ 89 ] 2020年の新しい研究では、ネオニコチノイド系殺虫剤がミツバチの発育安定性に影響を与え、特に半数体の雄は二倍体の雌よりもネオニコチノイドに感受性が高いことがわかった。[ 90 ] 2020年の研究では、ヘテロ接合性が殺虫剤への曝露を緩衝する上で重要な役割を果たす可能性があることもわかった。[ 90 ]これらの潜在的な直接的影響に加えて、殺虫剤(アセタミプリド)、除草剤(グリホサート)、殺ダニ剤(チモール)などの農薬の影響に関する研究では、ミツバチの自然な腸内微生物叢を破壊し、場合によっては毒素にさらされた環境で無害な微生物を有益な微生物または寄生性微生物に変えてしまう可能性があることがわかっています。[ 91 ] [ 92 ]

北米では、在来種のトウワタの花に、死んだセイヨウミツバチがくっついているのが見られることがあります。外来種のセイヨウミツバチはこれらの花に引き寄せられますが、花粉媒介の仕組みに適応していません。トウワタの花粉塊は、昆虫が花のフードから蜜を吸う際に、跗節(足)が花柱の切れ目に落ち込んだときに集まります。昆虫が跗節を切れ目から引き抜くことができない場合、捕食されるか、飢餓や疲労で死ぬ可能性が高くなります。跗節が損傷したり欠損したりして逃げられたとしても、怪我で死ぬ可能性が高くなります。跗節が無傷で逃げられたセイヨウミツバチは、花粉塊の一部が口吻に付着することで蜜を集める能力が阻害され、飢餓に陥る可能性があります。花粉塊がミツバチの跗節爪に付着すると、登攀能力と蜜集め能力が低下し、コロニーからの追放、ひいては死に至る可能性がある。在来種のチョウ、ガ、ハエ、甲虫、ミツバチ、スズメバチは、トウワタによく訪れる昆虫で、多くの場合問題なく逃げ出すことができるが、メガキレ属、ハリクタス属、アスタタ属、ルシリア属、トリキウス属、パンフィラ属、スケプシス属の一部の種は、花の上で死んでいるのが見つかっている。昆虫学者のチャールズ・ロバートソンは、 A. sullivantiiの群生地から 140 匹以上の死んだミツバチを取り除いた後、 「…花は、ミツバチの助けを借りて果実を生産するよりも、巣のミツバチを殺すことに適しているようだ」と皮肉った。[ 93 ]
セイヨウミツバチの昆虫捕食者には、アジアスズメバチ[ 94 ] 、オオスズメバチ[ 95 ] 、ヨーロッパミツバチオオカミ[ 96 ]などの他のスズメバチ、アオイトトンボ[ 97 ]などのトンボ、その他の昆虫食性(ムシヒキアブなど)または日和見的(アメンボ[ 98 ]など)な捕食者が含まれます。
セイヨウミツバチのクモ類の捕食者には、ミズグモ、オオヤマネコグモ、セイタカアワダチグモ[ 99 ]、およびセントアンドリュースクロスグモなどがいる。
セイヨウミツバチの爬虫類や両生類の捕食者には、クロトカゲ、アノール、その他のトカゲ類、そしてアメリカヒキガエル、アメリカウシガエル、アカガエルなどの様々な無尾両生類が含まれる。
セイヨウミツバチを専門に捕食する鳥類にはハチクイ類が含まれます。セイヨウミツバチを捕食する可能性のある他の鳥類には、オオクロムクドリモドキ、ハチドリ、タイランチョウ、ナツフウキンチョウなどがいます。ほとんどのハチを食べる鳥は機会主義的に捕食しますが、ナツフウキンチョウは枝にとまって巣の入り口から出てくる数十匹のハチを捕らえます。[ 100 ]
セイヨウミツバチの捕食者となる哺乳類には、オオアルマジロ[ 101 ] 、オポッサム、アライグマ、スカンク、北米コビトトガリネズミ、ミツアナグマなどがいる。
セイヨウミツバチの体液性および細胞性免疫機構は、他の昆虫のものと類似している。世代間免疫プライミング(TGIP)は、昆虫が特定の免疫をある世代から次の世代に伝えるために用いる方法である。子孫は、親が遭遇した病原体を克服する可能性が高くなる。TGIPは適応免疫応答に似ているが、根底にあるメカニズムは異なる。アメリカ腐蛆病の原因となるPaenibacillus larvaeに対するTGIPが実証されている。卵黄タンパク質であるビテロゲニン(Vg)は、女王と子孫の間で伝達される情報に関与するため、ミツバチのTGIPにおいて重要な役割を果たしている。[ 5 ]断片や微生物などの免疫誘導物質は、病原体関連分子パターン(PAMP)と考えられている。VgはPAMPに結合して子孫に届け、その後、免疫関連遺伝子の誘導につながる。[ 6 ]実験室での実験では、加熱殺菌したP.幼虫をミツバチの女王蜂に注射すると、子孫の死亡率を26%防ぐことができる。[ 9 ]このように経口ワクチン接種を受けた女王蜂から生まれた子孫は、感染を生き延びる可能性が30%~50%高かった。女王蜂の免疫プライミングにより、子孫の分化した血球が3倍になる。[ 10 ]
ミツバチが脚や大顎を使ってダニなどの寄生虫や塵のような物質を体から取り除く行動は、グルーミングと呼ばれます。グルーミングには、自己グルーミング(オートグルーミング)と巣仲間間の相互グルーミング(アログルーミング)が含まれます。[ 11 ]自己グルーミングでは、触角を引っ張ったり、前脚で頭をこすったり、中脚または後脚で胸部または腹部をこすったりします。相互グルーミングはコロニーレベルの行動であり、コロニー内の個体はこのようにして巣仲間から利益を得ます。グルーミングダンスを披露することで、他の巣仲間が引き寄せられ、触角や脚で撫でたり舐めたりして寄生虫の除去を手伝います。グルーミングはコロニー内の外部寄生虫の負荷を制限し、特にミツバチヘギイタダニの駆除に役立ちます。[ 12 ] [ 14 ]
幼虫房を対象とした衛生行動は、検出、蓋の取り外し、除去の 3 つの主要なステップから構成されます。成虫は、健康な幼虫と不健康な幼虫に関連する独特の臭いを識別し、その後、不健康な幼虫を巣から除去することができます。衛生行動は、ミツバチヘギイタダニ、チョークブルード病を引き起こす真菌Ascosphaera apis 、およびP. larvaeに対して効果的に対応します。[ 16 ]凍結殺虫幼虫アッセイは、ミツバチのコロニーの衛生行動を評価するための簡単な戦略です。[ 15 ]
一部の昆虫学者は、外来種の野生化したセイヨウミツバチが、その非在来環境において悪影響を及ぼす可能性があることを指摘している。輸入されたミツバチは在来種のミツバチを駆逐する可能性があり、また在来種の受粉媒介者が無視する侵入植物の繁殖を促進する可能性もある。[ 102 ]他の専門家は、ミツバチと環境との間に一般の人々の間で確立されている肯定的な関係が誤っている可能性があることを懸念している。[ 103 ]
ミツバチはアメリカ大陸原産ではなく、18世紀に北アメリカに入植した人々とともに持ち込まれた。トーマス・ジェファーソンはこのことを著書『バージニア州に関する覚書』の中で述べている。
ミツバチは我々の大陸の原産ではありません。マルクグレイブは確かにブラジルにミツバチの一種がいると述べていますが、このミツバチには針がなく、したがって我々が飼っているヨーロッパのミツバチとは全く異なります。インディアンも、ミツバチはヨーロッパから持ち込まれたという伝承に同意していますが、いつ、誰によって持ち込まれたのかは分かりません。ミツバチは一般的に、白人入植者よりも少し先にこの地に広がっています。そのため、インディアンはミツバチを「白人のハエ」と呼び、ミツバチの接近は白人の入植地の接近を示すものだと考えています。[ 104 ]
養蜂によって特定の地域でミツバチの数が増えると、飼育されたミツバチと在来の野生のミツバチは、限られた生息地と食料源をめぐって競争しなければならないことがよくあります。[ 105 ] 2025年にサンディエゴ郡で行われた調査では、セイヨウミツバチがミツバチのバイオマスの約98%、個体数の約90%を占めていると報告されています。[ 106 ]セイヨウミツバチは、他のコロニー、特に熱帯原産のため一年中攻撃と防御を行っている可能性のあるアフリカ化ミツバチからの競争の季節的な到来に対応して防御的になることがあります。[ 107 ]英国では、ミツバチは、同じ場所で採餌するため、 Bombus hortorumなどの在来のマルハナバチと競争することが知られています。この問題を解決し、採餌中の総消費量を最大化するために、マルハナバチは早朝に採餌し、ミツバチは午後に採餌します。[ 108 ]
2017年の系統的レビューでは、飼育されているミツバチ(ミツバチ、マルハナバチ、および一部の単独性ミツバチ)が野生のミツバチの個体群に与える影響、競争、植物群落の変化、および病原体の伝播への影響などについて調査しました。[ 109 ]このレビューでは、「ほとんどの研究は、飼育されているミツバチが競争、植物群落の変化、または病原体の伝播を通じて野生のミツバチに悪影響を与える、または悪影響を与える可能性があるという結論に達している」ことがわかりましたが、多くの研究は長期にわたるものでなかったり、直接的な影響を測定できなかったりすることがわかりました。[ 110 ]競争に関して、このレビューは「飼育されているミツバチと野生のミツバチの間に競争が存在するという証拠はあるが、この競争が野生のミツバチの個体数の減少につながるという証拠はほとんどない」と結論付け、この潜在的な影響を完全に評価するためには、「飼育されているミツバチの関数として野生のミツバチの繁殖成功または個体数」を測定する研究をさらに行う必要があると述べました。[ 111 ]植物群落に対するプラスとマイナスの影響を報告している研究は同数見つかったが、前述の方法論上の問題により、このメカニズムを介した飼育ミツバチの野生ミツバチへの影響は「推測の域を出ない」と結論付けた。[ 111 ]最後に、研究は「飼育ミツバチと野生ミツバチの間での病原体の伝播の強力な証拠を提供する」ことがわかったが、この伝播の影響はまだ十分に理解されていない。[ 111 ] [ 112 ]
米国農務省は現在、セイヨウミツバチを侵略的外来種としてリストアップしていない。[ 113 ]
ほとんどの顕花植物は、効率的に受粉するために特殊な送粉者に依存しています。たとえば、ウリ科植物は、ミツバチが活動していない日の出前に早咲きの雄花を特別に訪れ、その後、日中に雌花を受粉するために戻ってくるカボチャバチによって受粉されます。このような共生関係は、特殊な送粉者が主に宿主特有の花粉で覆われることを意味します。在来のミツバチとは異なり、カボチャバチは孔葯(先端の小さな孔からのみ花粉を放出する葯)を持つ植物から花粉を適切に抽出または移動しません。これには、ミツバチがめったに示さない行動である振動受粉が必要です。ミツバチは、孔葯を持つ植物であるメラストマ・アフィネの柱頭から以前に付着した花粉を奪うことで、結実を減少させます。[ 114 ]
ミツバチが地域の生態系に及ぼす害を軽減するための潜在的な解決策の1つは、養蜂家が特定のルートと地域のみでミツバチのコロニーを輸送できるようなゾーニング法を施行することです。[ 115 ]
Apis melliferaの他に、 Apis属には 6 つの種があります。これらはApis andreniformis、Apis cerana、Apis dorsata、Apis florea、Apis koschevnikovi、およびApis nigrocinctaです。[ 116 ]これらの種はすべて南アジアと東南アジアを起源としています。ヨーロッパ、アジア、アフリカを起源とするのはApis melliferaだけだと考えられています。[ 117 ]
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