物理的および化学的性質 ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドは、ピロリン酸 で結合した2つのヌクレオシド から構成されています。それぞれのヌクレオシドはリボース 環を含み、一方のヌクレオシドは最初の炭素原子(1'位)に アデニンが 結合しており(アデノシン二リン酸リボース )、もう一方のヌクレオシドはこの位置にニコチンアミド が結合しています。[ 2 ] [ 3 ]
ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドの酸化還元反応 この化合物は、H − と同等のイオンを受け取ったり、与えたりする。[ 4 ] このような反応(以下の式に要約)では、反応物(R)から水素化物イオン (H − )とプロトン (H + )の形で2つの水素原子が除去される。プロトンは溶液中に放出され、還元剤RH 2 は酸化され、NAD + は ニコチンアミド環への水素化物の移動によってNADHに還元される。
RH 2 + NAD + → NADH + H + + R; ヒドリドイオンの電子対から、1つの電子がNAD + のニコチンアミド環のわずかに電気陰性度の高い原子に引き寄せられ、ニコチンアミド部分の一部となる。残りの水素原子はN原子の反対側の炭素原子に移動する。NAD + /NADH酸化還元対の中点電位は-0.32 ボルト であり、NADHは中程度の強さの還元 剤となる。[ 5 ] この反応は容易に可逆であり、NADHが別の分子を還元してNAD + に再酸化される。これは、補酵素が消費されることなくNAD + とNADHの形態の間を連続的に循環できることを意味する。[ 3 ]
外観上、この補酵素のすべての形態は吸湿性 があり水溶性の高い白色の非晶質 粉末である。 [ 6 ] 固体は乾燥した暗所で保管すれば安定である。NAD +の溶液は無色で、4 °C および中性pH では約 1 週間安定であるが、酸性またはアルカリ性の溶液中では急速に分解する。分解すると、酵素阻害剤 となる生成物が生成される。[ 7 ]
NAD + とNADHのUV吸収スペクトル アデニンが存在するため、 NAD + と NADH はどちらも紫外線を 強く吸収します。例えば、NAD +の吸収ピークは 波長 259ナノメートル (nm)にあり、消光係数 は 16,900 M −1 cm −1 です。NADH もより長い波長で吸収し、339 nm に 2 番目の紫外線吸収ピークがあり、消光係数は 6,220 M −1 cm −1 です。[ 8 ] この補酵素の酸化型と還元型の紫外線吸収スペクトルの長波長側での差により、 分光光度計 を使用して 340 nmでの紫外線吸収量を測定することで、酵素アッセイ で一方から他方への変換を簡単に測定できます。[ 8 ]
NAD + と NADH は蛍光特性 も異なります。水溶液中で自由に拡散している NADH は、ニコチンアミド吸収の約 335 nm (近紫外) で励起されると、445~460 nm (紫から青)で蛍光を発し、蛍光寿命 は 0.4ナノ秒 ですが、NAD + は 蛍光を発しません。[ 9 ] [ 10 ] NADH がタンパク質 に結合すると蛍光信号の特性が変化するため、これらの変化は解離定数の 測定に使用でき、酵素反応速度論 の研究に役立ちます。[ 10 ] [ 11 ] これらの蛍光の変化は、蛍光顕微鏡法 によって生細胞の酸化還元状態の変化を測定するためにも使用されます。[ 12 ]
NADHは銅触媒反応によってNAD+に変換されるが、この反応には過酸化水素が必要である。したがって、細胞内でのNAD+の供給にはミトコンドリアの銅(II)が必要である。[ 13 ] [ 14 ]
細胞内の濃度と状態 ラットの肝臓では、NAD + と NADHの総量は湿重量 1 グラムあたり約 1 μmol であり、同じ細胞内の NADP + と NADPH の濃度の約 10 倍である 。[ 15 ] 細胞 質 内 のNAD + の実際の濃度は測定が難しく、動物細胞では最近の推定では約 0.3 mM の範囲であり、[ 16 ] [ 17 ] 酵母 では約 1.0 ~ 2.0 mMである。[ 18 ] しかし、ミトコンドリア内の NADH 蛍光の 80% 以上は結合型に由来するため、溶液中の濃度ははるかに低い。[ 19 ]
NAD + 濃度はミトコンドリアで最も高く、細胞全体の NAD + の 40% ~ 70% を占めています。[ 20 ] 補酵素は膜を拡散 できないため、細胞質内のNAD + は特定の 膜輸送タンパク質 によってミトコンドリアに運ばれます。 [ 21 ] あるレビューでは、 NAD + の細胞内半減期は 1 ~ 2 時間であると主張されていますが、 [ 22 ] 別のレビューでは、区画によって異なる推定値を示しています。細胞内 1 ~ 4時間、細胞質 2時間、ミトコンドリア 4 ~ 6時間です。[ 23 ]
ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドの酸化型と還元型のバランスは、NAD + /NADH 比と呼ばれます。この比率は、細胞の酸化還元状態と呼ばれるものの重要な構成要素であり、細胞の代謝活動と健康の両方を反映する測定値です。 [ 24 ] NAD + /NADH 比の影響は複雑で、 グリセルアルデヒド 3-リン酸デヒドロゲナーゼ やピルビン酸デヒドロゲナーゼ など、いくつかの重要な酵素の活性を制御します。健康な哺乳類の組織では、細胞質内の遊離 NAD + と NADHの比率の推定値は通常 700:1 付近にあり、この比率は酸化反応に有利です。[ 25 ] [ 26 ] 総 NAD + /NADHの比率ははるかに低く、哺乳類では 3~10 の範囲と推定されています。[ 27 ] 対照的に、NADP + /NADPH 比は通常約 0.005 なので、NADPH がこの補酵素の主要な形態です。[ 28 ] これらの異なる比率は、NADH と NADPH の異なる代謝的役割の鍵となります。
生合成 NAD + は 2 つの代謝経路で合成されます。アミノ酸からのde novo 経路、またはニコチンアミド などの既成成分をNAD + にリサイクルするサルベージ経路のいずれかで生成されます。哺乳類ではほとんどの組織がサルベージ経路で NAD + を合成しますが、肝臓ではトリプトファンから、腎臓とマクロファージでは ニコチン酸 から、 de novo 合成がはるかに多く行われます。[ 29 ]
救済経路 新規合成 経路が存在するにもかかわらず、サルベージ反応はヒトにとって必須であり、食事中のビタミンB3 の欠乏はビタミン欠乏症 ペラグラを 引き起こす。[ 35 ] このNAD + に対する高い要求は、翻訳後修飾などの反応における補酵素の絶え間ない消費によるものであり、酸化還元反応におけるNAD + の酸化型と還元型間の循環は補酵素の全体的なレベルを変化させない。[ 4 ] 哺乳類におけるNAD + の主要な供給源は、NAD +を利用する酵素によって生成された ニコチンアミド をリサイクルするサルベージ経路である。[ 36 ] サルベージ経路の最初のステップであり、律速酵素はニコチンアミドホスホリボシルトランスフェラーゼ (NAMPT)であり、ニコチンアミドモノヌクレオチド (NMN)を生成する。[ 36 ] NMNはサルベージ経路におけるNAD+の直接の前駆体である。[ 37 ]
細胞は、単純なアミノ酸前駆体からNAD +を de novo合成するだけでなく、ピリジン塩基を含む既成化合物もサルベージする。これらのサルベージ代謝経路で使用される3つのビタミン前駆体は、 ニコチン酸 (NA)、ニコチンアミド (Nam)、およびニコチンアミドリボシド (NR)である。[ 4 ] これらの化合物は食事から摂取することができ、ビタミンB3またはナイアシンと呼ばれる。 しかし、 これらの化合物は細胞内でも生成され、細胞内のNAD + の消化によっても生成される。これらのサルベージ経路に関与する酵素の一部は細胞核 に集中しているようで、この細胞小器官でNAD +を 消費する反応のレベルが高いことを補っている可能性がある。[ 38 ] 哺乳類細胞は周囲から細胞外NAD + を取り込むことができるという報告もあり、 [ 39 ] ニコチンアミドとニコチンアミドリボシドの両方が腸から吸収される可能性がある。[ 40 ]
微生物 で使用されるサルベージ経路は、哺乳類 のものとは異なります。[ 41 ] 酵母のカンジダ・グラブラタ や細菌のインフルエンザ 菌などの一部の病原体は、 NAD + 要求性であり、NAD + を合成できませんが、サルベージ経路を持っているため、NAD + またはその前駆体の外部供給源に依存しています。 [ 42 ] [ 43 ] さらに驚くべきことに、細胞内病原体の クラミジア・トラコマチス は、NAD + とNADP + の両方の生合成またはサルベージに関与する遺伝子の認識可能な候補を欠いており、これらの補酵素を宿主 から獲得する必要があります。[ 44 ]
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