クリ枯病 によって引き起こされる潰瘍。クリ枯病はクリの木 に影響を与える病気である。この図は、真菌や細菌が植物細胞に付着してから、特定の種類の免疫応答が起こるまでの過程を示しています。PTIはパターン誘導免疫、ETIはエフェクター誘導免疫 の略です。 植物の病害抵抗性は、 あらかじめ形成された構造や化学物質、そして感染によって誘発される免疫系の反応という2つの方法で、植物を病原体 から守ります。感受性の高い植物と比較して、病害抵抗性とは、植物の表面または内部における 病原体 の増殖の減少(ひいては病気の減少)を指し、病害耐性 という用語は、病原体が相当量存在するにもかかわらず、病気による被害がほとんど見られない植物を指します。病気の結果は、病原体、植物、および環境条件の3者間の相互作用(病害三角形 として知られる相互作用)によって決定されます。
防御活性化化合物は細胞間を移動し、植物の維管束系を系統的に通過することができます。しかし、植物には循環免疫細胞 がないため、ほとんどの細胞型は幅広い抗菌 防御機構を備えています。複数の標本を比較すると、病害抵抗性に明らかな質的 差異が観察されます(同様の環境で同様の接種量で同じ病原菌株に感染させた後、「抵抗性」または「感受性」に分類できます)が、病害抵抗性の量的差異の段階的な変化は、植物の系統または 遺伝子型 間でより一般的に観察されます。植物は特定の病原体に対して一貫して抵抗性を示しますが、他の病原体には屈服します。抵抗性は通常、特定の病原菌種または病原菌株に特異的です。
一般的な疾患抵抗性メカニズム
二次植物壁
免疫系 植物細胞における病原体抵抗性を誘導するPTIおよびETIの複数の研究対象経路を示す図。両経路における潜在的なクロスオーバーも示されている。[ 5 ] 植物の免疫システムは、相互接続された 2 層の受容体を備えており、1 つは細胞外の分子を最も頻繁に感知し、もう 1 つは細胞内の分子を最も頻繁に感知します。両方のシステムが侵入者を感知 し、感染した細胞と隣接する細胞で抗菌防御を活性化することで応答します。場合によっては、防御活性化シグナルが植物の残りの部分、あるいは隣接する植物にまで広がります。2 つのシステムは、異なる種類の病原体分子と植物受容体タンパク質のクラスを検出します。[ 6 ] [ 7 ]
第1層は主に、進化的に保存された病原体または微生物関連分子パターン (PAMPまたはMAMP)の認識によって活性化されるパターン認識受容体 によって制御されます。PRRの活性化は、細胞内シグナル伝達、転写再プログラミング、およびコロニー形成を制限する複雑な出力応答の生合成につながります。このシステムは、PAMP誘発性免疫またはパターン誘発性免疫(PTI)として知られています。[ 8 ] [ 7 ] [ 9 ]
第二層は、主に耐性遺伝子産物、またはR遺伝子 産物によって制御され、エフェクター誘発免疫(ETI)と呼ばれることが多い[ 5 ] 。ETIは通常、特定の病原体の「エフェクター」の存在によって活性化され、強力な抗菌反応を引き起こす(下記のR遺伝子のセクションを参照)。
PTIとETIに加えて、植物の防御は、病原菌感染中に放出される植物細胞壁の一部などの損傷関連化合物(DAMP)の感知によって活性化される可能性がある。[ 10 ]
PTIおよびETI受容体によって活性化される応答には、イオンチャネルの 開閉、酸化バースト 、細胞の酸化還元 変化、または細胞変化(細胞壁の強化や抗菌物質の産生など)を直接活性化するタンパク質キナーゼ カスケード、あるいは遺伝子発現 の変化を活性化して他の防御応答を高めるものなどがある。
植物の免疫システムは、昆虫や哺乳類の免疫システム と機構的に類似している部分があるが、植物特有の特性も多く見られる。[ 11 ] 上記の2つの階層は植物の免疫の中心であるが、植物の免疫システムを完全に説明するものではない。さらに、明らかなPTIまたはETIの多くの具体的な例は、一般的なPTI/ETIの定義に違反しており、定義やパラダイムの拡大が必要であることを示唆している。[ 12 ] 現在、外毒素誘発性免疫(TTI)という用語は、外毒素 関連の免疫応答として導入されている。これは、外毒素が植物のみで免疫応答を誘発する能力があるため、ETIまたはPTIとは別である。[ 13 ] この免疫経路は、シロイヌナズナ でのみ記述されており、 Pseudomonas syringae に関連する特定の外毒素(シリンゴマイシン 、またはSYR)でのみ記述されているため、植物の免疫における定義/役割を拡大するには、さらなる研究が必要である。他の論文では、様々な環状リポペプチド(CLP)処理後の植物の免疫応答が示されているが、特定の免疫経路(ETI、PTI、またはTTI)の下での応答については説明されていない。[ 14 ]
量的抵抗性(後述)とは、複数の遺伝子と複数の分子メカニズムによって制御される植物の病害抵抗性を指し、それぞれのメカニズムは全体的な抵抗性形質に対して小さな影響しか及ぼさない。量的抵抗性は、単一の主要な効果を持つR遺伝子によって媒介されるETI抵抗性と対比されることが多い。
パターン認識による免疫 PAMPsは、複数の病原 体属 に存在する保存された分子であり、多くの研究者によってMAMPsと呼ばれています。MAMPsの認識によって誘導される防御は、ほとんどの病原体を撃退するのに十分です。しかし、病原体のエフェクタータンパク質(下記参照)は、PTIなどの基本的な防御を抑制するように適応しています。MAMPs(およびDAMPs)の多くの受容体が発見されています。MAMPsとDAMPsは、LRR またはLysM細胞外ドメイン を持つ膜貫通型受容体キナーゼによって検出されることが多いです。[ 6 ]
PTIはETI経路の一部を制御および抑制し、植物細胞の免疫制御要素として機能することも示されている。[ 15 ]
エフェクター誘発性免疫 エフェクター誘発性免疫(ETI)は、病原体のエフェクターの存在によって活性化されます。ETI応答はR遺伝子 に依存しており、病原体によって産生されたエフェクター産物が細胞内のRタンパク質受容体に結合します。[ 5 ] PTIと比較すると、ETIはより大きな応答を示しますが、転写調節はPTIとETI経路の間でほぼ保存されています。[ 16 ] [ 17 ]
病原体は植物のPTI応答を回避する手段としてエフェクターを使用するが、植物は完全に独立した経路ではなく、病原体の侵入に対してPTI応答とETI応答の両方を誘導することができる。[ 5 ] 植物のETIはしばしばアポトーシス 過敏性反応 を引き起こす。[ 18 ]
エフェクター生物学 エフェクターは、微生物や線虫などの微小な植物コロニー形成動物の病原性または共生性の可能性の中心です。[ 20 ] [ 21 ] [ 22 ] エフェクターは通常、微生物の外側から宿主細胞に送り込まれるタンパク質です。これらのコロニー形成者由来のエフェクターは、宿主細胞の生理機能と発達を操作します。このように、エフェクターは共進化の例を提供します(例:菌類の外側で機能するが植物細胞内で機能する真菌タンパク質は、植物特有の機能を獲得するように進化しました)。病原体の宿主範囲は、とりわけ、特定の宿主へのコロニー形成を可能にする適切なエフェクターの存在によって決定されます。[ 6 ] 病原体由来のエフェクターは、病気や病気抵抗性において重要な役割を果たす植物の機能を特定するための強力なツールです。明らかに、ほとんどのエフェクターは、病気の発生を可能にするために宿主の生理機能を操作します。よく研究されている細菌性植物病原体は、通常数十個のエフェクターを発現し、多くの場合、III型分泌 装置によって宿主に送り込まれる。 [ 20 ] 真菌、卵菌、線虫の植物病原体は、明らかに数百個のエフェクターを発現する。[ 21 ] [ 22 ]
いわゆる「コア」エフェクターは、特定の病原体の集団全体に広く分布し、病原体の毒性に大きく寄与するという点で定義されます。ゲノミクスを用いてコアエフェクターを特定することで、新たなR遺伝子アレル を発見することができ、これらは植物の耐病性育種 に利用できます。
小型RNAとRNA干渉 植物のsRNA 経路は、病原体関連分子パターン(PAMP)誘発免疫(PTI)およびエフェクター誘発免疫(ETI)の重要な構成要素であることが理解されている。[ 23 ] [ 24 ] シロイヌナズナ の細菌誘導マイクロRNA (miRNA)は、オーキシン、アブシジン酸(ABA)、ジャスモン酸(JA)、サリチル酸(SA)などのホルモンシグナル伝達に影響を与えることが示されている。[ 25 ] [ 26 ] ゲノムワイド研究の進歩により、真菌病原体 Fusarium virguliforme [ 27 ] Erysiphe graminis [ 28 ] Verticillium dahliae [ 29 ] Cronartium quercuum [ 30 ] および卵菌 Phytophthora sojae [ 31 ] による感染後に宿主 miRNA 発現パターンが大幅に適応する ことが 明らか に なっ た 。 真菌 病原 体 に対する sRNA 発現 の 変化は、 この 防御 経路 に 遺伝子 サイレンシングが関与している可能性を示唆している。 しかし、トウモロコシにおける Colletotrichum spp. 感染に対する抗真菌防御応答は、 特定の miRNA 誘導によって完全に制御されているのではなく、感染時に遺伝的および代謝的要素間のバランスを微調整する働きをしている可能性があるという証拠もある。
感染中のsRNAの輸送は、細胞外小胞(EV)と多胞体(MVB)によって促進される可能性が高い。[ 32 ] 植物EVのRNAの組成は完全には評価されていないが、それらがRNAの輸送に部分的に関与している可能性が高い。植物は、ウイルスRNA、mRNA 、miRNA、および低分子干渉RNA (siRNA)を師管を通して全身的に輸送することができる。[ 33 ] このプロセスは原形質連絡を通して起こると考えられており、葉肉細胞でのRNAの局在化を助けるRNA結合タンパク質が関与している。師管内でmRNAとともに同定されているが、それらがRNAの長距離輸送を媒介するという決定的な証拠はない。[ 34 ] したがって、EVは師管へのRNAロードの代替経路に寄与するか、またはアポプラストを通してRNAを輸送する可能性がある。[ 35 ] 植物EVが宿主誘導遺伝子サイレンシング(HIGS)などのRNA干渉 によってsRNAの種間伝達を可能にするという証拠もある。 [ 36 ] [ 37 ] 植物と真菌間のRNA輸送は双方向であるようで、真菌病原体Botrytis cinerea 由来のsRNAがシロイヌナズナとトマトの宿主防御遺伝子を標的にすることが示されている。[ 38 ]
種レベルの抵抗力 ごくまれに、植物遺伝子が、宿主植物の他の遺伝子型に対して病原性を示す病原体種全体に対して有効な場合がある。例としては、オオムギ のMLO遺伝子がうどんこ病 に、コムギの Lr34遺伝子が葉さび病 に、コムギのYr36遺伝子がコムギ縞 さび病に有効である。この種の抵抗性には、特定の遺伝子と植物・病原体の組み合わせに応じて、さまざまなメカニズムが存在する可能性がある。植物の免疫が有効なその他の理由としては、共適応の 欠如(病原体および/または植物が、宿主植物内での定着と成長に必要な複数のメカニズムを欠いていること)、または、あらかじめ形成された防御機構が特に効果的であることなどが挙げられる。
シグナル伝達機構
転写因子とホルモン反応 植物の防御シグナル伝達を媒介する多数の遺伝子やタンパク質、その他の分子が特定されている。[ 39 ] [ 40 ] 細胞骨格 と小胞 輸送ダイナミクスは、植物の防御応答を病原体の攻撃地点に向けるのに役立つ。
転写因子とホルモンのメカニズム 植物の免疫系の活動は、次のようなシグナル伝達ホルモンによって部分的に制御されています。[ 41 ] [ 42 ]
これらの経路間には、かなりの相互作用が存在する可能性がある。[ 41 ]
分解による制御 多くのシグナル伝達経路と同様に、免疫応答中の植物遺伝子発現は分解によって制御されることがあります。これは、ホルモンがホルモン受容体に結合すると、特定の遺伝子の発現を阻害する抑制タンパク質のユビキチン 関連分解が刺激されるときによく起こります。その結果、ホルモン活性化遺伝子発現が起こります。例:[ 43 ]
オーキシン :受容体に結合し、オーキシン特異的遺伝子発現を刺激する転写活性化因子の抑制因子を動員して分解する。ジャスモン酸:オーキシンに似ているが、ジャスモン酸受容体を介してJAZタンパク質などのジャスモン酸応答シグナル伝達メディエーターに影響を与える点が異なる。 ジベレリン酸:ジベレリンは受容体の構造変化を引き起こし、 Dellaタンパク質 の結合と分解を引き起こします。エチレン:エチレン応答活性化因子EIN2の阻害性リン酸化は、エチレン結合によって阻害される。このリン酸化 が減少すると、EIN2タンパク質が切断され、その一部が核へ移動してエチレン応答遺伝子の発現を活性化する。
ユビキチンとE3シグナル伝達 ユビキチン化は 、タンパク質分解や免疫応答などのプロセスを制御する細胞シグナル伝達において中心的な役割を果たします。[ 44 ] ユビキチンの主な機能の1つはタンパク質を分解の標的とすることですが、シグナル伝達経路、ホルモン放出、アポトーシス、細胞全体への物質の輸送にも役立ちます。ユビキチン化は、いくつかの免疫応答の構成要素です。ユビキチンが適切に機能しないと、免疫防御が弱まるため、病原体やその他の有害分子の侵入が劇的に増加します。[ 44 ]
この図は、植物の免疫応答における経路を示しています。特に、ユビキチンがその経路の調節において果たす役割と効果を強調しています。
E3シグナル伝達 E3ユビキチンリガーゼ 酵素は、免疫シグナル伝達経路を含むタンパク質分解経路の特異性を提供する主要な構成要素である。[ 43 ] E3酵素の構成要素は、含まれるドメインによってグループ化することができ、いくつかのタイプが含まれる。[ 45 ]
これらには、リングおよびUボックス単一サブユニット、HECT、およびCRLが 含まれます。[ 46 ] [ 47 ] 免疫応答を含む植物シグナル伝達経路は、負のフィードバックを含むいくつかのフィードバック経路によって制御され、脱ユビキチン化酵素、転写因子の分解、および転写の負の調節因子の分解によって調節されることがあります。[ 43 ] [ 48 ]
定量的抵抗 植物の病害抵抗性の違いは、質的というよりは漸進的または量的であることが多い。量的抵抗性(QR)という用語は、それぞれが全体的な抵抗性形質に小さなまたはわずかな影響を与える複数の遺伝子と複数の分子メカニズムによって制御される植物の病害抵抗性を指す。[ 49 ] QRは、結果として得られる抵抗性がより持続的(より長く有効)であり、特定の病原体のほとんどまたはすべての系統に対して有効である可能性が高いため、植物育種において重要である。QRは通常、複数の病原体に対して広く有効ではなく、1つの病原体種または近縁種のグループに対して有効である。[ 49 ] QRは、原因となる遺伝子座や分子メカニズムを知らないまま植物育種によって得られることが多い。QRは、この記事で議論されている植物免疫システムの多くの構成要素、特定の植物と病原体の組み合わせに固有の形質(特定の病原体エフェクターに対する感受性など)、および葉の表面特性や根系、植物の樹冠構造などの一般的な植物の形質に依存する可能性が高い。QRという用語は、マイナー遺伝子抵抗性 と同義である。[ 50 ]
成植物抵抗性および実生抵抗性 成植物抵抗性(APR)は、苗期には効果がないが、残りの多くの植物成長段階を通して効果を発揮する量的抵抗性を指す専門用語である。[ 50 ] [ 51 ] [ 49 ] 成植物抵抗性と苗抵抗性の違いは、一年生作物 では特に重要である。[ 52 ] 苗抵抗性とは、植物の発育の苗 期 に始まり、生涯を通じて続く抵抗性である。専門家が使用するこの用語は、苗期にのみ活性な抵抗性を指すものではない。「苗抵抗性」は、主要遺伝子抵抗性または全段階抵抗性(ASR)と同義であり、「成植物抵抗性」との対比として使用される。[ 50 ] 苗抵抗性は、多くの場合単一のR遺伝子によって媒介されるが、すべてのR遺伝子が苗抵抗性をコードしているわけではない。
病害抵抗性植物育種 植物育種家は、病害抵抗性植物系統の選抜と開発を重視しています。植物病害は、殺虫剤の使用や、 輪作 、耕起、植栽密度、無病種子、機器の洗浄などの栽培方法によって部分的に制御することもできますが、一般的には、固有の(遺伝的に決定された)病害抵抗性を持つ植物品種が好まれます。 [ 2 ] 病害抵抗性のための育種は、植物が最初に家畜化されたときに始まりました。病原体の集団は選択圧 を受けて毒性が強くなるように進化し、病原体が新しい地域に移動(または移動させられ)、栽培方法や気候の変化が一部の病原体に有利になり抵抗性の効果を低下させ、他の形質のための植物育種が以前の抵抗性を破壊してしまう可能性があるため、育種努力は継続されています。[ 53 ] ある病原体に対して許容できる抵抗性を持つ植物系統は、他の病原体に対して抵抗性を持たない可能性があります。
耐性育種には通常、以下のものが含まれます。
他の点では好ましくないかもしれないが、有用な病害抵抗性形質を持つ植物を特定すること。これには、しばしば抵抗性が向上した野生植物系統も含まれる。 望ましいが病気にかかりやすい品種と、耐病性を持つ植物との交配。 病原菌接種を含む、病害発生に適した環境下での育種候補の育成。同一病原菌種内における多様性に対処するため、特定の病原菌分離株に注意を払う必要がある。 収量、品質、その他の耐病性などの望ましい特性を保持しつつ、耐病性のある個体を選抜する。[ 53 ] 耐性は、病原体の集団が進化するにつれて、複数年にわたる広範な使用においても効果が持続する場合、耐久性 があると言われます。「垂直耐性 」は、病原体種の特定の系統または株に特異的であり、多くの場合、単一のR 遺伝子によって制御され、耐久性が低い場合があります。 水平耐性または広範囲の耐性は、 病原体種全体に対して、多くの場合、効果は不完全ですが、より耐久性があり、多くの場合、育種集団で分離する多くの遺伝子によって制御されます。[ 2 ] 将来改良品種が登場すると予想される場合でも、耐性の耐久性は重要です。新しい真菌病の脅威を人間が認識してから、その病原体に対する耐性作物がリリースされるまでの平均時間は、少なくとも 12 年です。[ 54 ] [ 55 ]
ジャガイモ、リンゴ、バナナ、サトウキビなどの作物は、望ましい植物品種を維持するために栄養繁殖によって増殖されることが多い。これらの種では、他家受粉によって望ましい形質が著しく損なわれるためである。 無性繁殖も参照のこと。栄養繁殖作物は、病害抵抗性に影響を与える遺伝子を管理するための植物形質 転換の バイオテクノロジー 法による抵抗性改良の最適な対象の一つである可能性がある。[ 1 ]
病害抵抗性に関する科学的な育種は、小麦黄さび病に対する抵抗性を持つ単一の劣性遺伝子を特定したサー・ローランド・ビッフェン によって始まった。その後、ほぼすべての作物が病害抵抗性(R)遺伝子を含むように育種され、その多くは適合する野生近縁種からの導入によって行われた。[ 1 ]
遺伝子組み換えまたは遺伝子操作による病害抵抗性 GM( 「遺伝子組み換え」 )という用語は、組換えDNA技術を用いて改変された植物を指すトランスジェニック の同義語としてよく使われます。害虫に対するトランスジェニック/GM病害抵抗性を持つ植物は、特にトウモロコシや綿花において商業製品として非常に成功しており、世界20か国以上で毎年2000万ヘクタール以上に植えられています[ 56 ] (遺伝子組み換え作物 も参照)。微生物病原体に対するトランスジェニック植物の病害抵抗性は、1986年に初めて実証されました。ウイルス外 被タンパク質遺伝子配列の発現は、小さなRNA を介してウイルス抵抗性を付与しました。これは、ウイルス複製を阻害するための広く適用可能なメカニズムであることが証明されました[ 57 ]。 科学者たちは、3つの異なるウイルスの外被タンパク質遺伝子を組み合わせることで、圃場で検証された多種ウイルス抵抗性を持つカボチャの ハイブリッドを開発しました。この種類のウイルスに対する同様のレベルの抵抗性は、従来の育種では達成されていませんでした。
同様の戦略は、 1994年までにハワイ のパパイヤ 産業を壊滅させる恐れがあったパパイヤ輪点ウイルス 対策にも用いられた。圃場試験では、優れた有効性と高い果実品質が実証された。1998年には、最初の遺伝子組み換えウイルス耐性パパイヤが販売承認された。病害抵抗性は15年以上持続している。遺伝子組み換えパパイヤは、ハワイのパパイヤ生産量の約85%を占めている。この果実は、米国、カナダ、日本での販売が承認されている。
ジャガイモ葉巻ウイルスに対する抵抗性を付与するウイルス複製酵素配列を発現するジャガイモ系統は、NewLeaf YおよびNewLeaf Plusという商標名で販売され、1999年から2001年にかけて商業生産で広く受け入れられたが、マクドナルド社が遺伝子組み換えジャガイモを購入しないことを決定し、モンサント社がNatureMarkジャガイモ事業を閉鎖することを決定した。[ 58 ] NewLeaf YおよびNewLeaf Plusジャガイモは、コロラドハムシに対するBt媒介抵抗性も発現していたため、2つの遺伝子組み換え特性を持っていた。
2013年までに、微生物病原体に対する耐性を遺伝子操作によって獲得した作物は他に市場に出回っていなかったが、10種類以上が何らかの開発・試験段階にあった。
積み重ね 2つ目の戦略は、複数のNLR遺伝子を同時に導入しようとするもので、スタッキングと呼ばれる育種戦略です。DNA支援分子育種 または遺伝子導入 によって作出された品種は、病原体が複数のエフェクター遺伝子を突然変異させる必要があるため、より持続的な抵抗性を示す可能性が高いです。DNAシーケンスにより、研究者は複数の種/系統からNLR遺伝子を機能的に「マイニング」することができます。[ 1 ]
Xanthomona perforans 由来のavrBs2エフェクター遺伝子は、 ピーマンとトマトの細菌性斑点病の原因菌である。avrBs2がほとんどの病原性Xanthomonas 属菌種に存在し、病原体の適応に必要であることが発見された後、潜在的に持続性のあるR遺伝子を「エフェクター 合理化」的に探索する最初の試みが行われた。野生のトウガラシ、Capsicum chacoense 由来のBs2 NLR遺伝子をトマトに導入したところ、病原体の増殖が抑制された。野外試験では、殺菌剤を用いなくても強力な抵抗性が実証された。しかし、まれなXanthomonas株は、認識を回避するが病原性を保持する avrBs2 変異を獲得することで、ピーマンにおけるBs2 を介した抵抗性を克服した。それぞれ異なるコアエフェクターを認識するR遺伝子を積み重ねることで、適応を遅らせたり阻止したりできる可能性がある。[ 1 ]
コムギの系統には、コムギの茎さび病、葉さび病、黄条さび病の病原菌に対する抵抗性を付与する遺伝子座が50以上ある。栽培コムギの二倍体近縁種であるTriticum monococcum からクローン化された茎さび病35( Sr35 )NLR遺伝子は、コムギさび病分離株Ug99 に対する抵抗性を提供する。同様に、コムギの近縁種であるAegilops tauschii 由来のSr33は、オオムギの Mla うどんこ病抵抗性遺伝子のコムギ相同遺伝子をコードしている。これらの遺伝子はどちらもコムギとその近縁種では珍しい。少なくともSr33と相加的に作用するSr2遺伝子と組み合わせることで、 Ug99 とその派生株に対する持続的な抵抗性を提供できる可能性がある。[ 1 ]
実行遺伝子 植物の病害抵抗性遺伝子の別のクラスは、侵入した細胞を迅速に殺し、病原体の増殖を阻止する「トラップドア」を開きます。キサントモナス属およびラルストニア属の 転写活性化因子 様(TAL)エフェクターは、宿主遺伝子発現を活性化して病原体の毒性を高めるDNA結合タンパク質です。イネとトウガラシの系統はそれぞれ独立してTALエフェクター結合部位を進化させ、これらは上方制御されると過敏性宿主細胞死を誘導する実行因子として機能します。イネのXa27 、トウガラシのBs3およびBs4cは、機能が不明な非相同植物タンパク質をコードする、このような「実行因子」(または「処刑人」)遺伝子です。実行因子遺伝子は、特定のTALエフェクターが存在する場合にのみ発現します。[ 1 ]
改変されたエフェクター遺伝子は、異なる病原菌株由来のTALエフェクターの結合部位を2つ追加するようにトウガラシBs3プロモーターを再設計することに成功し、実証された。その後、改変されたエフェクター遺伝子は、 Xa27 プロモーターに5つのTALエフェクター結合部位を追加することにより、イネに導入された。合成Xa27 構築物は、Xanthomonas細菌性葉枯病および細菌性葉条斑病に対する抵抗性を付与した。[ 1 ]
宿主感受性アレル ほとんどの植物病原体は、宿主の遺伝子発現パターンを再プログラムして、病原体に直接利益をもたらします。病原体の生存と増殖に必要な再プログラムされた遺伝子は、「病害感受性遺伝子」と考えることができます。劣性抵抗性遺伝子は、病害感受性候補です。たとえば、突然変異によって、細胞壁分解に関与するペクチン酸リアーゼをコードする シロイヌナズナの 遺伝子が不活性化され、うどんこ病病原体Golovinomyces cichoracearum に対する抵抗性が付与されました。同様に、オオムギのMLO 遺伝子、およびエンドウとトマトの自然突然変異したMLO オルソログも、うどんこ病抵抗性を付与します。[ 1 ]
Lr34は 、コムギの葉さび病、黄さび病、うどんこ病に対する部分的な抵抗性を与える遺伝子です。Lr34は 、アデノシン三リン酸 (ATP)結合カセット(ABC)トランスポーターをコードしています。病害抵抗性を与える優性対立遺伝子は、最近栽培コムギ(野生系統ではない)で発見され、MLO と同様に、オオムギに広範囲の抵抗性を与えます。[ 1 ]
宿主翻訳伸長開始因子eif4e およびeif4g の自然対立遺伝子も劣性ウイルス抵抗性遺伝子である。これらの遺伝子のいくつかは、オオムギ、イネ、トマト、ピーマン、エンドウ、レタス、メロンのポティウイルスを制御するために利用されてきた。この発見により、トマトにおける化学的に誘導された eif4e 対立遺伝子の変異体スクリーニングが成功した。[ 1 ]
プロモーターの自然な変異は、劣性病害抵抗性アレルの進化につながる可能性がある。例えば、イネの劣性抵抗性遺伝子xa13は Os-8N3 のアレルである。Os -8N3 は、TALエフェクターPthXo1を発現する Xanthomonas oryzae pv. oryzae 株によって 転写的に活性化される。xa13遺伝子は、プロモーターに変異したエフェクター結合エレメントを持ち、PthXo1の結合を排除し、これらの系統を PthXo1 に依存する株に対して抵抗性にする。この発見は、Os-8N3 が感受性に必要であることも示している。[ 1 ]
Xa13/Os-8N3は花粉の発達に必要であり、このような変異アレルは、病気感受性表現型が他のプロセスにおける機能を変化させる場合に問題となる可能性があることを示している。しかし、 TALエフェクターをヌクレアーゼに融合させることにより、 Os11N3 (OsSWEET14)TALエフェクター結合エレメントに変異が生じた(TALEN )。Os11N3結合部位が改変されたゲノム編集イネ植物は、Xanthomonas oryzae pv. oryzae に対する抵抗性を維持しつつ、正常な発達機能も提供した。[ 1 ]
遺伝子サイレンシング RNAサイレンシング に基づく耐性は、耐性作物を開発するための強力なツールです。植物における真菌、ウイルス、細菌感染に対する新規遺伝子治療としてのRNAiの利点は、小さな非コードRNAを介してメッセンジャーRNA 分解、翻訳抑制、クロマチン リモデリングによって遺伝子発現を制御する点にあります。メカニズム的には、サイレンシングプロセスは、二本鎖RNA(dsRNA )トリガーの処理産物によって誘導され、これらは 低分子干渉RNA およびマイクロRNA として知られています。[ 60 ]
温度がウイルス耐性に及ぼす影響
温度は植物のウイルス抵抗性に大きく影響します。例えば、タバコのN遺伝子を持つ植物はタバコモザイクウイルス(TMV)に対する耐性を獲得しますが、28 ℃を超える温度では全身感染します。同様に、Tsw遺伝子を持つトウガラシ(Capsicum chinense)は、32 ℃でトマト黄化萎縮ウイルス(TSWV)に全身感染する可能性があります。ビート壊死黄脈ウイルス(BNYVV)の場合、BvGLYR1遺伝子を発現する植物は、30℃ と比較して22℃でより高いウイルス蓄積を示し 、温度がウイルス抵抗性におけるこの遺伝子の有効性に影響を与えることを示しています。[ 61 ]
宿主範囲 数千種に及ぶ植物病原微生物のうち、広範囲の植物種に感染する能力を持つのはごく少数である。ほとんどの病原体は、高い宿主特異性を示す。非宿主植物種は、しばしば非宿主抵抗性 を示すと言われる。宿主抵抗性 とは、病原体種が宿主種に対して病原性を示すが、その植物種の特定の系統が病原体種の特定の系統に対して抵抗性を示す場合に用いられる用語である。宿主抵抗性と非宿主抵抗性の原因は重複することがある。病原体の宿主範囲は、とりわけ、特定の宿主への定着を可能にする適切なエフェクターの存在によって決定される。[ 6 ] 例えば、遺伝子シャッフリング/突然変異、または水平遺伝子伝達 によって、病原体が宿主特異的な毒素またはエフェクターを合成する能力を獲得した場合、病原体の宿主範囲は非常に急激に変化する可能性がある。[ 62 ] [ 63 ]
伝染病と個体群生物学 在来集団は、しばしば遺伝子型の多様性が大きく、集団が分散している(他の多くの植物種と混生している)という特徴があります。また、植物と病原体の共進化 も経験しています。したがって、新たな病原体が導入されたり進化したりしない限り、このような集団では一般的に深刻な病気の流行は 発生率が低いだけです。[ 64 ]
単作農業システムは、類似または同一の遺伝子型を持つ標的個体の密度が高いため、病原体の進化に理想的な環境を提供する。[ 64 ] 現代の輸送システムに起因する移動性の向上は、病原体がより多くの潜在的な標的にアクセスできるようにする。[ 64 ] 気候変動は、病原体種の生存可能な地理的範囲を変化させ、以前は重要ではなかった地域で病気が問題となる原因となる可能性がある。[ 64 ]
これらの要因により、現代農業は病害の流行に陥りやすくなっています。一般的な対策としては、病害抵抗性を高めるための継続的な育種、農薬の使用、国境検査や植物輸入制限の実施、作物遺伝子プール内の遺伝的多様性の維持(作物の多様性 を参照)、適切な対応の開始を加速するための継続的な監視などが挙げられます。病原菌種によっては、急速に進化し広範囲に拡散する能力があるため、他の種よりも植物の病害抵抗性を克服する能力がはるかに高いものもあります。[ 64 ]
アメリカグリ胴枯病の事例研究 クリ胴枯病は、1904年に現在のブロンクス動物園で生育していたアメリカグリの木で初めて確認されました。この事件の後、病原体の正体と適切な防除方法について何年も議論が続きました。クリの問題を解決するための初期の試みは、化学的または物理的な解決策でした。殺菌剤を使用したり、感染を止めるために木の枝を切ったり、感染した木が他の木に感染しないように居住地から完全に除去したりしました。これらの戦略はすべて失敗に終わりました。植物検疫法の制定によって助けられた検疫措置さえ実施されました。クリ胴枯病は、密集したクリの木の森を急速に広がるため、依然として大きな問題であることが判明しました。1914年には、さまざまな方法と育種メカニズムによって木に胴枯病耐性を誘導するという考えが検討されました。[ 65 ]
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