菌根共生の進化 アーバスキュラー菌根菌(AM菌)の定着による好影響
アーバスキュラー菌根菌(AMF)の菌糸 ネットワークは枯渇帯(灰色)を超えて広がり、リン酸吸収のために土壌のより広い領域にアクセスします。菌根リン酸枯渇帯は、最終的にはAM菌糸(紫色)の周囲にも形成されます。AM根で同化が促進される他の栄養素には、窒素(アンモニウム)と亜鉛があります。コロニー形成による利点には、全身獲得抵抗性 の誘導による多くの非生物的 および生物的 ストレスに対する耐性が含まれます。[ 11 ]
古生物学 古生物学的 証拠と分子生物学的証拠の両方から、AMは少なくとも4億6000万年前に始まった古代の共生関係であることが示されています。AM共生は陸上植物に広く見られることから、現存する陸上植物の初期の祖先に菌根が存在していたと考えられます。植物とのこの良好な関係は、陸上植物の発達を促進した可能性があります。[ 5 ]
下部デボン紀 のライニーチャート からは、AM菌が観察された最古の陸上植物の化石が発見されている。[ 12 ] 菌根菌を含む化石化した植物はシリカ中に保存されていた。
デボン紀前期には 陸上植物が発達した。デボン紀前期(4億年前)のライニーチャートの植物には、現在のグロムス属の小胞や胞子に似た構造が含まれていることがわかった。 アグラオフィトン・マヨール やライニア では、原始的な原生中心 柱根茎を持つ維管束植物や 蘚苔類 の特徴を持つ古代植物として、コロニー化した化石根が観察されている。[ 12 ]
根の細胞間隙には根内菌糸が観察され、柵状柔 組織 に似た薄壁細胞層にはアーバスキュルが観察された。化石アーバスキュルは現存するAMFのものと非常によく似ている。[ 12 ] アーバスキュルを含む細胞は壁が厚く、これは現存するコロニー形成細胞でも観察される。
中新世 の菌根は、現在のグロメラレス によく似た小胞状の形態を示します。この保存された形態は、現代と中新世の共生関係の両方において、植物宿主によって提供される栄養素が容易に利用可能であることを反映している可能性があります。[ 13 ] しかし、シグナル伝達プロセスの有効性は中新世以降に進化してきた可能性が高く、これは化石記録では検出できないと主張することもできます。シグナル伝達プロセスの微調整は、菌類と植物共生体の両方の適応度を高めると同時に、共生体間の協調と栄養交換を改善するでしょう。
植物とアーバスキュラー菌根菌の祖先との関係性については議論の余地がある。仮説は以下の2つである。
ライニーチャートからは腐生生物と生物栄養生物の両方が発見されたが、どちらの仮説を裏付ける証拠もほとんどない。
化石の証拠から、寄生菌は侵入後すぐに宿主細胞を殺さなかったものの、宿主細胞では侵入に対する反応が観察されたことが示唆されている。この反応は、共生に必要な化学的シグナル伝達プロセスへと進化した可能性がある。[ 12 ]
どちらの場合も、植物と菌類の共生関係は、菌類が植物から栄養分を奪う関係から、植物と菌類が栄養分を交換する共生関係へと進化してきたと考えられている。
古代の植物には真の根がなかった。Strullu-DerrienとStrulluは、根茎、シュート、または葉状体に感染する菌根を「パラミコリザ」、真の根に感染する菌根を「ユーミコリザ」と命名した。[ 14 ] [ 15 ] [ 16 ] これらの構造は、初期の陸上植物の胞子体と配偶体の両方で報告されている。[ 15 ]
分子学的証拠 菌根共生への関心の高まりと高度な分子技術の開発により、遺伝学的証拠が急速に蓄積されてきた。Wangら(2010)は、 グロムス目 菌類パートナーとのコミュニケーションに関与する植物遺伝子(DMI1、DMI3、IPD3)を調査した。[ 17 ] [ 18 ] これらの3つの遺伝子は、最も基底的なグループであるゼニゴケ を含む、現代の陸上植物の主要な系統群すべてから配列決定することができ、3つの遺伝子の系統発生は、当時の陸上植物の系統発生と一致することが証明された。これは、菌根遺伝子が陸上植物の共通祖先に存在し、植物が陸上に進出して以来、垂直的に継承されてきたに違いないことを示唆している。[ 17 ]
AM菌における概日時計の進化 驚くべきことに、植物の根の地下パートナーとして長い進化を遂げてきたにもかかわらず、AMFは依然として保存された概日時計 を持ち、その菌類概日振動子(frq )は、 モデル 概日菌類Neurospora crassa と同様に青色光によって活性化される。[ 21 ] R. irregulare における概日時計と出力遺伝子の保存が証明されたことで、AM共生の菌類パートナーにおける概日時計の研究への道が開かれた。同じ研究でAMF frq 遺伝子が特徴づけられ[ 21 ] 、これはDikaryaの外群として 初めて同定されたfrq 遺伝子であり、菌類界におけるfrq 遺伝子の進化はこれまで考えられていたよりもはるかに古いことを示唆している。
生理
共生前 根への定着に先立つAM菌の発達は、前共生期として知られており、胞子発芽 、菌糸成長、宿主認識、付着器 形成の3つの段階から構成される。
胞子発芽 Gigaspora margarita の 生きた胞子のタイムラプスシリーズ。核は SytoGreen 蛍光色素で大きな緑色の点として可視化され、ミトコンドリアは MitoTracker で染色され、小さな赤い点として示されている。動画は 90 分間、5 分ごとに 1 フレームで取得され、5 フレーム/秒の速度で表示される。[ 22 ] AM菌の胞子は、厚い壁を持つ多核の休眠構造である。[ 23 ] 胞子の発芽は植物に依存しない。なぜなら、胞子は試験管内 および土壌中の植物が存在しない実験条件下で発芽しているからである。ただし、発芽率は宿主の根の分泌物 によって増加する可能性がある。[ 24 ] AM菌の胞子は、土壌マトリックス、温度、二酸化炭素 濃度、pH、リン濃度の適切な条件が満たされれば発芽する。[ 23 ]
菌糸の成長 AM菌糸 の土壌中での成長は、ストリゴラクトン として知られる宿主根分泌物と土壌リン濃度によって制御される。[ 25 ] 土壌中のリン濃度が低いと、菌糸の成長と分岐が増加するだけでなく、菌糸の分岐強度を制御する化合物の植物分泌も誘発される。[ 24 ] [ 26 ]
1 mMのリン培地で培養したAM菌の菌糸の分岐は著しく減少したが、発芽管 の長さと菌糸全体の成長には影響がなかった。10 mMのリン濃度では、菌糸の成長と分岐の両方が阻害された。このリン濃度は自然の土壌条件に存在するため、菌根菌の定着率の低下に寄与する可能性がある。[ 26 ]
ホスト認識 リンの有無にかかわらず液体培地で栽培されたAMF宿主植物の根からの分泌物は、菌糸の成長に影響を与えることが示されている。Gigaspora margarita の胞子を宿主植物の分泌物で栽培した。リン欠乏の根からの分泌物で栽培された菌類の菌糸は、十分なリンを与えられた植物からの分泌物で栽培されたものと比較して、より成長し、三次分岐を形成した。成長促進根分泌物を低濃度で添加すると、AM菌は散在する長い枝を形成した。分泌物の濃度が増加するにつれて、菌類はより密集した枝を形成した。最高濃度では、AMFのリン交換構造であるアーバスキュルが形成された。[ 26 ]
宿主植物の滲出液に対するこの化学走性菌類反応は、低リン土壌における宿主根への定着効率を高めると考えられている。[ 24 ] これは、菌類が適切な植物宿主を探して土壌を効率的に探索するための適応である。[ 26 ]
アーバスキュラー菌根菌が宿主特異的な走化性 を示し、潜在的な宿主植物の根に向かって菌糸を成長させることを示すさらなる証拠:Glomus mosseae の胞子を、菌糸のみを透過する膜で宿主植物、非宿主植物、および枯死した宿主植物の根から分離した。宿主植物を用いた処理では、菌類は膜を通過し、常に 根から 800 μm 以内に出現したが、非宿主植物および枯死植物を用いた処理では出現しなかった。[ 27 ]
分子生物学的手法は、アーバスキュラー菌根菌と植物の根の間のシグナル伝達経路を理解するために用いられてきた。2003年には、AM菌が宿主植物の根からの滲出液の存在下で生理的変化を起こし、宿主植物の根に定着する様子が示された。宿主植物の根からの滲出液は、胞子の炭素化合物の呼吸に必要なAM菌の遺伝子を活性化させる。実験では、10個の遺伝子の転写速度が曝露後30分で増加し、1時間後にはさらに増加した。4時間曝露後、AM菌は形態的成長で反応する。その時点で分離された遺伝子は、ミトコンドリア活性と酵素産生に関与している。酸素消費速度で測定した菌類の呼吸 速度は、根から の滲出液に曝露してから3時間後に30%増加し、宿主植物の根からの滲出液がAM菌胞子のミトコンドリア活性を刺激することを示している。これは、潜在的な宿主植物からのシグナルを受け取った際に、効率的な成長と菌糸の分岐のために胞子のエネルギーを節約する真菌の調節機構の一部である可能性がある。[ 28 ]
付着器 アーバスキュラー菌根菌の菌糸が宿主植物の根に接触すると、根の表皮に付着器または「感染構造」が形成される。この構造から菌糸は宿主の 柔組織 皮層に侵入することができる。[ 29 ] AM菌は付着器を形成するために植物からの化学信号を必要としない。AM菌は、菌と植物宿主間のシグナル 伝達を排除するために原形質が除去された「ゴースト」細胞の細胞壁に付着器を形成することができた。しかし、菌糸は細胞にさらに侵入して根の皮層に向かって成長することはなかった。これは、付着器が形成された後、さらなる成長には共生体間のシグナル伝達が必要であることを示している。[ 24 ]
共生 柔組織内に入ると、菌類は植物との栄養交換のためにアーバスキュル と呼ばれる高度に分岐した構造を形成します。[ 29 ] これらはアーバスキュラー菌根菌の特徴的な構造です。アーバスキュルはリン、炭素、水、その他の栄養素の交換の場です。[ 23 ] 2つの形態があります。パリ 型は菌糸 が1つの細胞から次の細胞へと成長することを特徴とし、アルム 型は 植物細胞間の空間で菌糸が成長することを特徴とします。[ 30 ] パリ 型とアルム 型のどちらを選択するかは主に宿主植物の科によって決まりますが、一部の科や種はどちらのタイプにもなり得ます。[ 31 ] [ 32 ]
宿主植物は、細胞間菌糸の増殖とアーバスキュルの形成を制御します。アーバスキュルを含む細胞では、植物のクロマチンが 脱凝縮し、植物のDNAの転写が増加します。 [ 29 ] アーバスキュルを収容するために、植物宿主細胞には大きな変化が必要です。液胞は 縮小し、他の細胞小器官 は増殖します。植物細胞の細胞骨格は 、アーバスキュルの周囲に再編成されます。
宿主植物の根に定着した菌糸には、他に2種類あります。定着が起こると、短命な匍匐菌糸が植物の根から土壌に伸びます。これらはリンと微量栄養素を吸収し、植物に供給する菌糸です。AM菌の菌糸は表面積対体積比が高く、植物の根よりも吸収能力が優れています。[ 33 ] AMF菌糸は根よりも細く、根がアクセスできない土壌の孔に入り込むことができます。[ 34 ] 4番目のタイプのAMF菌糸は根から伸びて、他の宿主植物の根に定着します。4種類の菌糸は形態的に異なります。[ 23 ]
栄養素の吸収と交換 AM菌は絶対共生菌である。 腐生 能力は限られており、炭素栄養を植物に依存している。[ 35 ] AM菌は宿主植物の光合成産物をヘキソース として取り込む。
植物から菌類への炭素の移動は、アーバスキュルまたは根内菌糸を介して起こる可能性がある。[ 36 ] AMによるヘキソースからの二次合成は、根内菌糸体 で起こる。菌糸体内部では、ヘキソースはトレハロース とグリコーゲン に変換される。トレハロースとグリコーゲンは、迅速に合成および分解できる炭素貯蔵形態であり、細胞内糖濃度を緩衝する可能性がある。[ 36 ] 根内ヘキソースは、核酸のペントースを 生成する酸化ペントースリン酸経路 に入る。
脂質の 生合成は根内菌糸でも起こる。脂質はその後、貯蔵されるか、根外菌糸に輸送され、そこで貯蔵または代謝される。脂質のヘキソースへの分解は糖新生 として知られ、根外菌糸で起こる。[ 36 ] 植物から菌類に転流される炭素の約25%は根外菌糸に貯蔵される。[ 37 ] 宿主植物の炭素の最大20%がAM菌類に転送される可能性がある。[ 36 ] これは、宿主植物が菌根ネットワーク に相当な炭素投資を行い、地下の有機炭素プールに貢献していることを示している。
植物からAM菌への炭素供給量を増やすと、菌類から植物へのリンの吸収と転送が増加する。[ 38 ] 同様に、菌類に供給される光合成産物 が減少すると、リンの吸収と転送は低下する。AMFの種によって、植物にリンを供給する能力が異なる。[ 39 ] 場合によっては、アーバスキュラー菌根菌は共生能力が低く、比較的多くの炭素を消費する一方で、リンの供給は少ない。[ 39 ]
菌根菌が植物にもたらす主な利点は、栄養素、特にリンの吸収の増加にあると考えられています。これは、土壌との接触面積の増加、菌根菌への栄養素の移動の増加、根の環境の変化、および貯蔵量の増加によるものと考えられます。[ 34 ] 菌根菌は、植物の根よりもはるかに効率的にリンを吸収することができます。リンは拡散によって根に運ばれますが、菌糸は拡散に必要な距離を短縮するため、吸収が増加します。菌根菌へのリンの流入速度は、根毛の最大6倍にもなります。[ 34 ] 場合によっては、リンの吸収の役割は菌根ネットワークによって完全に引き継がれ、植物のリンはすべて菌糸由来となる可能性があります。[ 39 ] アーバスキュラー菌根系における窒素栄養 の役割と、それが共生と群集に与える影響については、あまり知られていません。この複雑な相互作用のメカニズムの解明において大きな進歩が見られた一方で、まだ多くの研究が必要である。
菌根菌の活動は、根圏 で利用可能なリン濃度を増加させます。菌根菌は、NH 4 + (アンモニウム イオン) を選択的に吸収し、H + イオンを放出することによって、根圏のpH を低下させます。 土壌 pH の 低下は、リン沈殿物の溶解度を高めます。菌糸による NH 4 + の吸収は、土壌の内部表面がアンモニウムを吸収し、拡散によって分配するため、植物への窒素の 流れも増加させます。[ 37 ]
コロニー形成のメカニズム 最近の研究では、AM菌がmyc因子 として知られる拡散因子を放出し、それが根粒形成因子の誘導遺伝子MtEnod11を活性化することが示されています。これは、 窒素固定 根粒菌 との共生関係を確立する際に関与する遺伝子と同じです(Kosuta et al. 2003)。この因子は、Fabienne Mailletと共同研究者[ 42 ] がNature誌に発表した画期的な研究で初めて特定しました。彼らは、300リットルの菌根ニンジン根と、Rhizophagus irregularis の4000万個の発芽胞子からの滲出液を抽出し、活性画分を精製しました。彼らは、この活性成分がリポキトオリゴ糖であることを実証しました。
Myc因子の認識は、共通共生シグナル伝達経路 (CSSP)を活性化し、最終的に植物がアーバスキュラー菌根菌に宿主を提供する適応プログラムへとつながる。
Maillet, F et al . (2011) 「アーバスキュラー菌根における真菌リポキトオリゴ糖共生シグナル」 Nature 469: 58–63に示されているように、 Rhizophagus irregularis のMyc因子であるMycRi-IV(C16:0,S)の化学構造。共通共生シグナル伝達経路 (CSSP)は、植物におけるシグナル伝達カスケードであり、 根粒 形成リゾビウムの NOD因子 認識と、アーバスキュラー菌根菌から放出されるMYC因子 認識の両方で活性化されることがわかっています。この経路は病原体認識 経路とは区別されますが、病原体認識とCSSPの両方に関与する共通の受容体がある可能性があります。ケビン・コープらによる最近の研究[ 43 ] では、他のタイプの菌根菌 もMyc因子認識などのCSSP構成要素に関与している可能性があることが示されています。
AMFのコロニー形成には、おおよそ以下のステップに分けられる一連の出来事[ 44 ]が必要です。
1.接触前の信号伝達、 2. CSSP 2.A. 知覚 2.B. 伝送 2.C. 転写 3. 宿泊プログラム
生態学
生物地理学 アーバスキュラー菌根菌は、鉱物土壌で生育する植物に最も多く見られ、火山性土壌 や砂丘環境 などの栄養不足の基質 で生育する植物にとって極めて重要です。AM菌の個体数は、熱帯雨林や温帯草原など、多様性の高い植物群落で最も多く、多くの潜在的な宿主植物が存在し、広範囲の宿主をコロニー化する能力を利用できます。[ 45 ] 非常に乾燥した土壌 や栄養豊富な土壌では、菌根のコロニー化の発生率は低くなります。菌根は水生生息地 で観察されていますが、水浸しの土壌では、一部の種でコロニー化が減少することが示されています。[ 45 ] アーバスキュラー菌根菌は植物種の80%に見られ[ 46 ] 、南極大陸を除くすべての大陸で調査されています。[ 47 ] [ 48 ] グロムス菌類 の生物地理は 、分散制限、[ 49 ] 気候などの環境要因、[ 47 ] 土壌系列 と土壌pH、[ 48 ] 土壌栄養素[ 50 ] および植物群落の影響を受けます。[ 47 ] [ 51 ] 2000年の証拠はAM菌が宿主種に特化していないことを示唆していますが、[ 52 ] 2002年までの研究では、少なくとも一部の菌類分類群は宿主特化型であることが示されています。[ 53 ] 「細根内生菌」アーバスキュラー菌根を形成するムコロミコティニア菌類の生態はほとんど知られていません。
植物群落への反応 菌根菌の特異性、宿主範囲、および定着度は、根内およびシステム内の菌類間の相互作用が複雑であるため、野外で分析することは困難です。アーバスキュラー菌根菌が、宿主植物に対する真菌病原体 のように、潜在的なAM宿主植物種への定着に特異性を示すことを示唆する明確な証拠はありません。[ 45 ] これは、関与する選択圧が逆であるためかもしれません。
病原関係では、宿主植物はコロニー形成を阻害する突然変異から利益を得るが、相利共生関係では、植物はAMFによるコロニー形成を可能にする突然変異から利益を得る。[ 45 ] しかし、植物種によって特定のAM菌によるコロニー形成の程度や依存度が異なり、一部の植物は任意菌根植物 である可能性があり、他の植物は絶対菌根植物である可能性がある。[ 45 ] 最近では、菌根の状態は植物の分布と関連付けられており、[ 54 ] 絶対菌根植物はより温暖で乾燥した生息地を占め、任意菌根植物はより広い範囲の生息地を占めている。
同じAM菌が多くの植物種に定着できる能力は、生態学的に重要な意味を持つ。異なる種の植物は、地下で共通の菌糸ネットワークで繋がることができる。[ 45 ] ある植物は、菌糸ネットワークの確立に必要な光合成炭素を提供し、別の種の植物はそれをミネラル吸収に利用できる。これは、アーバスキュラー菌根菌が地下における種内および種間の植物相互作用のバランスを保つことができることを示唆している。[ 45 ]
グロムス菌類は植物の根の中に生息するため、宿主植物から大きな影響を受け、逆に植物群落にも影響を与える。植物は光合成炭素の最大 30% を AM 菌類に分配することができ[ 55 ] 、その見返りに AM 菌類は植物のリンと窒素の最大 80% を獲得することができる。[ 46 ] AM 菌類群集の多様性は、植物の多様性 [ 56 ] 、植物の生産性[ 57 ]、草食動物 [ 58 ] と正 の相関関係にある。アーバスキュラー菌根菌は、 局所的な植物群落との小規模な相互作用によって影響を受ける可能性がある。たとえば、中心となる植物の周囲の植物の近隣は AM 菌類群集を変化させる可能性があり[ 59 ] 、場所内の植物の定着順序も同様である。[ 60 ]
AM菌と植物の侵入 植物種の侵入中、AM菌群集とバイオマスは劇的に変化する可能性がある。ほとんどの場合、AM菌のバイオマスと多様性は侵入によって減少する。[ 61 ] [ 62 ] [ 63 ] しかし、一部の菌類栄養植物種は、侵入中にAM菌の多様性を実際に増加させる可能性がある。[ 64 ]
侵入植物種の菌根菌の状態は、地域によって異なることが多い。例えば、英国や中央ヨーロッパでは、侵入植物は予想以上に頻繁に絶対菌根菌であることが判明しているが[ 54 ] [ 65 ] 、カリフォルニアの侵入植物は予想よりも菌根菌であることが少ないことがわかっている[ 66 ] 。
AM菌と他の植物共生菌との相互作用 植物宿主内のすべての共生生物は、しばしば予測不可能な方法で相互作用します。2010年のメタ分析 では、AM菌と垂直伝播内生菌の両方によってコロニー形成された植物は、これらの共生生物によって独立してコロニー形成された植物よりも大きいことが多いことが示されました。[ 67 ] しかし、この関係は状況依存的であり、AM菌は宿主植物の葉に生息する真菌内生菌と相乗的に相互作用することもあれば、[ 68 ] [ 69 ] 拮抗的に相互作用することもあります。[ 70 ] [ 71 ] [ 72 ] 同様の範囲の相互作用は、AM菌と外生菌根菌 および暗色隔壁内生菌 の間でも発生する可能性があります。[ 73 ]
環境勾配への反応 アーバスキュラー菌根菌は、多くの環境勾配 にわたって変化する。凍結や乾燥に対する耐性は、AM菌の分類群によって変化することが知られている。[ 74 ] 土壌の栄養分と水分濃度が高いほど、AM菌は存在量と多様性が低下する。[ 75 ] これは、おそらく、これらの環境条件下では、植物がAM菌に分配する炭素量が少なくなり、AM菌が資源を根内菌糸に再分配するためであろう。[ 76 ] 長期的には、これらの環境条件は、植物宿主、AM菌、および局所的な土壌栄養分濃度の間で局所的な適応を生み出すことさえある。[ 77 ] AMの構成は、標高が低い場所よりも山頂で多様性が低くなることが多いが、これは植物種の構成によって引き起こされる。[ 78 ]
AM菌は、塩分 などの非生物的環境要因に対する植物の耐性を向上させることが示されている。AM菌は塩ストレスを軽減し、植物の成長と生産性に有益である。[ 79 ]
根圏生態学 根圏とは 、根系のすぐ近くにある土壌領域のことである。
アーバスキュラー菌根共生は、土壌中の他の生物の群集と多様性に影響を与えます。これは、滲出液の放出によって直接観察することも、植物種や植物の滲出液の種類と量の変化によって間接的に観察することもできます。[ 80 ]
菌根菌の多様性は、共生関係の潜在的な数が増えるにつれて、植物種の多様性を高めることが示されている。優勢なアーバスキュラー菌根菌は、共生関係を確立した土地で非菌根植物の侵入を防ぎ、菌根宿主を促進することができる。[ 81 ]
土壌中に根粒菌が存在すると、共生関係の確立に関わる化学シグナルの濃度が増加するため、菌根菌の定着が促進される(Xie et al. 2003)。AM菌からNod因子に類似した分子が単離され、MtEnod11の誘導、側根形成、菌根形成の促進が示された。[ 82 ] 効果的な菌根菌の定着は、菌根性マメ科植物の根粒形成 と共生窒素固定も促進する可能性がある。 [ 37 ]
アーバスキュラー菌根菌の定着の程度と種類は、根圏の細菌群集に影響を与える。[ 83 ] 細菌種は、炭素化合物の根分泌物をめぐる競争能力が異なる。既存のAM菌根菌の定着による根分泌物と真菌分泌物の量または組成の変化が、根圏の細菌群集の多様性と豊富さを決定する。[ 80 ]
AM菌が植物の根と茎の成長に及ぼす影響は、根圏細菌にも間接的な影響を与える可能性がある。AMFは菌糸ネットワークの成長と退化を通じて、根圏に相当量の炭素を供給する。AM菌が植物種特有の根圏細菌組成への影響を媒介する上で重要な役割を果たしている可能性を示唆する証拠もある。[ 80 ]
グロムス菌類と地球規模の気候変動 地球規模の気候変動は、AM菌群集とAM菌と植物宿主との相互作用に影響を与えています。生物間の相互作用が地球規模の気候変動への反応に影響を与えることは一般的に認められていますが、将来の気候におけるこれらの相互作用の結果を予測する能力はまだありません。[ 84 ] 最近のメタ分析では、AM菌は干ばつ条件下では植物バイオマスを増加させ、窒素沈着シミュレーション研究では植物バイオマスを減少させることがわかっています。[ 85 ] [ 86 ] アーバスキュラー菌根菌自体も、大気中のCO2 濃度 の上昇に応じてバイオマスを増加させることが示されています。[ 87 ]
アーバスキュラー菌根菌の分子遺伝学的解析 過去 10 年間で、分子遺伝学技術とツールは目覚ましい進歩を遂げました。これらの進歩により、微生物および菌根生態学者は、アーバスキュラー菌根 (AM) 菌の個体、群集、生態系における生態学的および進化的役割について、新しく刺激的な疑問を投げかけることができるようになりました。AM 菌の遺伝子解析は、マルチローカス遺伝子型決定法を用いた単一胞子の遺伝子構造の調査[ 89 ] 、複数の草原群集における AM 菌の多様性と適応の調査[ 90 ] 、さらには AM 菌の多様性のグローバルな調査に至るまで行われ、これにより、グロムス門内の分子多様性に関する記述が大幅に増加しました[ 91 ] 。
分子遺伝学における最近の進歩は、微生物群集の分析を、従来の方法よりもはるかに細かい機能的なスケールで、そしておそらくより高い信頼性で明らかに可能にしています。土壌からの胞子抽出と胞子形態分析という古典的なAM菌同定法[ 92 ] は、AM菌のさまざまな戦略と形態、例えば、特定の種における胞子形成の欠如、季節性、高い培養不可能性、誤同定の可能性(人為的ミス)、多核胞子の新たな証拠[ 93 ] 、クローンAM種内の高い遺伝的変異[ 94 ] などにより、複雑な問題を抱えています。これらのさまざまな問題のため、過去には研究者は、ある時点または場所に存在するAM菌群集の真の構成を誤って表現していた可能性があります。さらに、従来の抽出、培養、顕微鏡による同定法に従うと、植物とAM菌の共生相互作用とメカニズムを生態学的または生態系機能に関連付けようとする際に最も重要と思われる、活動的/機能的なAM菌集団を決定する方法はありません。これは特に、AM菌にコロニー形成された根の割合を判定できる根のコロニー形成解析の場合に当てはまります。この解析の主な問題点は、対象植物と同時に複数のAM菌種が存在する圃場土壌です(AM菌の生態を参照)。分子生物学的手法を用いなければ、共生菌を特定することは不可能です。AM菌群集の遺伝子解析は過去10年間で大きく進歩しましたが、その手法はまだ完全に洗練されていません。以下では、AM菌の分子遺伝学的解析に用いられる手法の概要、研究への応用、今後の方向性、およびいくつかの問題点について説明します。
方法の概要
DNA/RNA土壌や根のサンプルから得られたAM菌の遺伝子解析は、生態学的または系統発生学的疑問に答えるという点で適用範囲が広い。DNA解析では、AM菌を記述するためにさまざまな核マーカーが使用され、すべての真核生物に見られる核リボソーム オペロン(18S rRNA )のさまざまな領域を表す。これらのマーカーを使用したAM菌のDNA解析は1990年代初頭に始まり[ 95 ] 、今日まで開発が続けられている。小サブユニット(SSU)rRNA遺伝子、内部転写スペーサー(ITS )遺伝子、および大サブユニット(LSU)rRNA遺伝子は、現在最も一般的に使用されているDNAマーカーである。SSU領域は生態学的研究で最も頻繁に使用されており[ 96 ] 、 ITSおよびLSU領域は主にグロムス門の分類学的構築に使用されている[ 97 ] 。
qPCRおよびqRT-PCR リアルタイムPCR 、または定量PCR(qPCR)は、生物試料(植物の根や土壌)から標的とするAM菌DNAを迅速に増幅し、同時に定量化する確立された手法になりつつあります。qPCRマーカーの比較的最近の進歩により、研究者は温室実験だけでなく野外においても、根におけるAM菌種の相対的な存在量を調査し、局所的なAM菌群集を特定することが可能になりました。
アーバスキュラー菌根菌のqPCRマーカーは、AM特異的プライマーと蛍光標識加水分解プローブから構成されます。これらのAM特異的プライマー(上記参照)は研究者が選択できますが、その選択は通常、研究課題、利用可能なリソース、および実験室でのトラブルシューティングへの意欲によって左右されます。
マイクロアレイ DNAマイクロアレイ 解析は現在、AM菌類の研究において、標的種または実験サンプルから多数の遺伝子の発現を同時に測定するために使用されています。最も一般的なツールまたは方法は、機能遺伝子アレイ(FGA)技術を使用することです。これは、炭素、窒素、リンの循環などの微生物プロセスにおいて機能的に重要な遺伝子のプローブを含む特殊なマイクロアレイです。FGAは、多数の機能遺伝子を同時に調べることができます。[ 98 ] この技術は通常、機能的な微生物遺伝子の一般的な解析に使用されますが、遺伝子配列決定と組み合わせることで、菌類群集の構成と微生物の機能との関連性について推論することができます。
特定の生物の化学的特徴は、AM菌や土壌細菌などのより隠蔽性の高い生物のバイオマスを検出するために使用できます。脂質、より具体的にはリン脂質と中性脂質は、グリセロール骨格に結合した脂肪酸を含んでいます。生物の脂肪酸組成は異なり、特定の脂肪酸の割合は生物固有の場合があります。たとえば、AM菌では、リン脂質部分における脂肪酸16:1ω5と18:1ω7の割合が、全脂肪酸組成の約58%を占めます。[ 99 ] 脂肪酸16:1ω5は、土壌中のAM菌を特徴付けるために最も一般的に使用される酸であり、土壌サンプル中の菌糸バイオマスの強力な指標として使用できます。[ 99 ]
AM菌のニュートラルリピド脂肪酸分析は、一般的にエネルギー貯蔵を示す方法として考えられていますが、最も重要なのは、NLFA(16:1ω5)とPLFA(16:1ω5)の比率が、土壌中のAM菌の栄養状態を示すために使用できる可能性があることです。エネルギーは主に、胞子や小胞などの貯蔵構造内のニュートラルリピドとしてAM菌に貯蔵されます。このため、NLFAは、一定量の土壌中の胞子の数と非常によく相関します。[ 99 ] NLFA濃度とPLFA濃度(活性菌糸)の比率は、貯蔵構造(胞子、NLFAとして測定)に割り当てられた炭素の割合を示すことができます。
脂質脂肪酸分析の問題点としては、AM菌に対する脂肪酸の特異性が不完全であること、脂肪酸組成の種または属特異的な変動により、複数のAM菌種が存在するシステム(例えば、野外土壌)での分析が複雑になること、土壌中の特定の脂肪酸濃度のバックグラウンドレベルが高いこと、リン脂質が生物の膜面積と相関しており、表面積対体積比が細菌や真菌などの生物間で大きく異なることなどが挙げられる。[ 100 ] 多くの属や種のAM菌が存在する野外土壌でこの方法の有効性を特定し、多様な脂肪酸組成を識別する能力を明らかにするためには、さらなる研究が必要である。
AM菌類に関する今後の研究方向 AM菌の将来的な分析の1つとして、安定同位体プローブの使用が挙げられます。安定同位体プローブ法(SIP )は、複雑な微生物システム内の個々の分類群の活性代謝機能を決定するために使用できる技術です。微生物の機能と系統発生を結びつけるこのレベルの特異性は、これまで微生物生態学では達成されていませんでした。この方法は、微生物生態学における従来の培養法とは独立して使用することもでき、機能的な微生物のin situ 分析を可能にします。AM菌の胞子からの単一核のシーケンスの応用も最近開発され、培養法の必要性を回避しています。[ 101 ]
安定同位体プロービング(SIP)SIP、より具体的にはDNA/RNAベースのSIPは、13C 、15N 、またはH218Oなど の安定同位体濃縮基質を使用し、種特異的なDNAまたはRNAマーカーを使用して「標識された」マーカーを分析します。[ 102 ] 標識DNAの分析は、超遠心分離機で形成された塩化セシウム勾配上で非標識DNAと標識DNAを分離することによって行われます。[ 103 ] すべて の微生物は細胞内に水を取り込むことができるため、 H218O 安定同位体プロービングの使用は、微生物生態学者や生物学者が長年答えるのに苦労してきた疑問、特に私のシステム内で活動している微生物は 何かという疑問に光を当てることができる非常に刺激的な新しい方法です。H218O 、 または 重水法は、活発に成長しているすべての生物をターゲットにし、成長自体にはほとんど影響を与えません。 これは、アーバスキュラー菌根菌を用いた温室実験のほとんどにおいて特に当てはまるだろう。なぜなら、植物はいずれにせよ水やりが必要であり、水は13C や15N を使用した場合のように特定の代謝経路を持つ生物を直接選択するわけではないからである[ 103 ]。
この方法はアーバスキュラー菌根菌の実験ではほとんど用いられていませんが、制御された実験で有効性が証明され、DNA/RNA真菌群集解析技術がさらに改良されれば、生育期、異なる植物宿主や処理条件、そして気候変動といった状況下において、AM菌種の活発な増殖部分を非常に具体的に特定するための有効な選択肢となる可能性があります。
AM共生を理解するためのsRNAとsRNA処理メカニズム sRNAは宿主と共生体間のクロストークにおいて重要な役割を果たすことが報告されている。[ 104 ] したがって、sRNA処理メカニズムはAM共生を理解する上で重要である。AM菌類は、細菌型のコア酵素と多数のアルゴノートタンパク質をsRNA処理システム(またはRNAiシステム)に持つという独自の特性を持っているようだ。[ 19 ] sRNAとsRNA処理メカニズムの研究は、AM菌類の共生を理解する上でも興味深いテーマである。
砂漠化 の脅威にさらされている地域では、在来植物群落の撹乱に続いて、土壌の物理的および生物学的特性、土壌構造、栄養分の利用可能性、有機物の劣化がしばしば発生します。撹乱された土地を復元する際には、地上の植生だけでなく、土壌の生物学的および物理的特性も回復させることが不可欠です。[ 105 ]
土地を修復する比較的新しいアプローチは、生態系修復 プロジェクト(植物浄化)で植生を再導入する際に、AM菌を土壌に接種することです。これにより、宿主植物が劣化した土壌に定着し、土壌の質 と健康が改善されました。[ 106 ] 在来のアーバスキュラー菌根菌種の混合物を導入した場合、非接種の土壌や単一の外来種のAM菌を接種した土壌と比較して、土壌の品質パラメータが長期的に大幅に改善されました。[ 105 ] その利点は、植物の成長の増加、リンの吸収の増加[ 107 ] 、土壌窒素含有量の増加、土壌有機物 含有量の増加、土壌団粒化であり、これはAM菌の存在下でのマメ科植物の根粒化の増加、水の浸透性の向上、土壌団粒化による土壌の通気性の向上によるものです。[ 105 ] 在来のAM菌株は、汚染された土壌から重金属の抽出を促進し、土壌を健康にして作物生産に適したものにします。[ 108 ]
農業 AMFと有益な細菌が植物の生育と土壌肥沃度に及ぼす影響
左側:AMFのライフサイクルと、AMFのさまざまな発達段階に影響を与える要因の視覚的表現。右側:菌根ヘルパー(MH)と植物成長促進(PGP)細菌がAMFと相乗的に相互作用している様子。[ 109 ] 現代の多くの農業手法は、菌根共生を阻害する。低投入型農業は、菌根共生を促進するような方法でシステムを管理する大きな可能性を秘めている。
耕起 、多量の肥料や殺菌剤の 使用、不適切な輪作、そしてこうした条件下で生き残る植物の選抜といった従来の農業慣行は、植物がアーバスキュラー菌根菌と共生関係を形成する能力を阻害する。
ほとんどの農作物は、AM菌が十分に定着すると、生育が良くなり、生産性も向上する。AM菌との共生は、宿主植物のリンや微量栄養素の吸収と成長を促進する(George et al. 1992)。
アーバスキュラー菌根菌の管理は、土壌中のリン濃度が一般的に低い有機農業や低投入農業システムにおいて特に重要であるが、アーバスキュラー菌根菌の定着を促進することで、すべての農業生態系が 恩恵を受けることができる。
Some crops that are poor at seeking out nutrients in the soil are very dependent on AM fungi for phosphorus uptake. For example, flax , which has poor chemotaxic ability, is highly dependent on AM-mediated phosphorus uptake at low and intermediate soil phosphorus concentrations (Thingstrup et al. 1998).
Proper management of AMF in the agroecosystems can improve the quality of the soil and the productivity of the land. Agricultural practices such as reduced tillage, low phosphorus fertilizer usage, and perennialized cropping systems promote functional mycorrhizal symbiosis.
Tillage Tillage reduces the inoculation potential of the soil and the efficacy of mycorrhizaes by disrupting the extraradical hyphal network (Miller et al. 1995, McGonigle & Miller 1999, Mozafar et al. 2000).
By breaking apart the soil macro structure, the hyphal network is rendered non-infective (Miller et al. 1995, McGonigle & Miller 1999). The disruption of the hyphal network decreases the absorptive abilities of the mycorrhizae because the surface area spanned by the hyphae is greatly reduced. This, in turn, lowers the phosphorus input to the plants that are connected to the hyphal network (Figure 3, McGonigle & Miller 1999).
In reduced-tillage system, heavy phosphorus fertilizer input may not be required as compared to heavy-tillage systems. This is due to the increase in mycorrhizal network, which allows mycorrhizae to provide the plant with sufficient phosphorus (Miller et al. 1995).
Phosphorus fertilizer The benefits of AMF are greatest in systems where inputs are low. Heavy usage of phosphorus fertilizer can inhibit mycorrhizal colonization and growth.
As the soil's phosphorus levels available to the plants increases, the amount of phosphorus also increases in the plant's tissues, and carbon drain on the plant by the AM fungi symbiosis become non-beneficial to the plant (Grant 2005).
A decrease in mycorrhizal colonization due to high soil-phosphorus levels can lead to plant deficiencies in other micronutrients that have mycorrhizal-mediated uptake such as copper (Timmer & Leyden 1980).
Perennialized cropping systems Cover crops are grown in the fall, winter, and spring, covering the soil during periods when it would commonly be left without a cover of growing plants.
Mycorrhizal cover crops can be used to improve the mycorrhizal inoculum potential and hyphal network (Kabir and Koide 2000, Boswell et al. 1998, Sorensen et al. 2005).
AM菌は生物栄養性であるため、菌糸ネットワークの成長には植物に依存しています。被覆作物を栽培することで、AM菌の成長期間を秋、冬、春まで延長できます。菌糸の成長が促進されることで、より広範囲な菌糸ネットワークが形成されます。被覆作物システムで見られる菌根菌の定着率の増加は、主に新しい作物の根に定着できる根外菌糸ネットワークの増加に起因すると考えられます(Boswell et al. 1998)。根外菌糸は冬を越すことができ、春の迅速な定着と生育初期の共生を可能にします(McGonigle and Miller 1999)。この初期の共生により、植物は十分に確立された菌糸ネットワークを利用して、生育初期に十分なリン栄養を供給され、作物の収量が大幅に向上します。
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外部リンク 菌根共生:ウェブ資料。第4章:アーバスキュラー菌根。 INVAM:国際菌根菌培養コレクション(小胞状アーバスキュラー菌根菌) グロムス菌類の系統発生と分類 菌根に関する文献交換 ヤヌシュ・ブラシュコウスキー – AMF に関する情報