リン脂質由来脂肪酸 (PLFA )は、 微生物生態学において 細菌 やその他の生物の化学分類学的 マーカーとして広く利用されています。リン脂質は 細胞膜 を構成する主要な脂質です。リン脂質は鹸化する ことができ、その際にジグリセリド 尾部に含まれる脂肪酸 が放出されます。未知のサンプルのリン脂質を鹸化すると、得られたPLFAの組成を既知の生物のPLFAと比較することで、サンプル生物の正体を特定できます。PLFA分析は、安定同位体プローブ などの他の技術と組み合わせて、サンプル中のどの微生物が代謝的に活性であるかを特定することができます。PLFA分析は、1980年代初頭から中頃にかけて、テネシー大学のDC Whiteによって開拓されました。[ 1 ]
リン脂質二重層。各リン脂質は、極性のある親水性頭部(赤色)と2つの疎水性脂肪酸尾部から構成されています。脂肪酸の構造は二重層の構造に影響を与えます。不飽和脂肪酸尾部(青色)を持つ脂肪酸は、飽和脂肪酸尾部(黒色)のみを持つ脂肪酸のパッキングを阻害します。その結果、二重層にはより多くの自由空間が生じ、水やその他の小分子に対する透過性が高まります。
リン脂質脂肪酸分析 PLFAは、すべての微生物細胞膜 の必須構造成分です。PLFA分析は、土壌や水環境の生きた微生物群集の構成の総バイオマス を推定したり、群集構成の広範な変化を観察したりするために広く使用されている技術です。近年、PLFAへの関心が急激に高まっており、この主題に関する査読付きジャーナルの参考文献が大幅に増加していることからも明らかです。[ 2 ] しかし、一部の研究者がPLFAを特定の微生物クラスに割り当てているが、実際にはそれらのPLFAは幅広い生命形態に存在するという懸念が高まっています。[ 2 ] リン脂質は多くの生物学的クラス(植物の根、菌類、土壌細菌など)に存在する可能性があるため、PLFAバイオマーカーを 間違ったクラスに過剰に割り当てないように注意する必要があります。リン脂質は多くの異なる生命形態に存在しますが、異なる生命形態間の脂肪酸側鎖は非常にユニークである可能性があります。多価不飽和脂肪酸(例: 18:3 ω3c)は植物、藻類、シアノバクテリアに見られますが、細菌には存在しないことが多いです。一価不飽和脂肪酸(特にオメガ7位)、奇数鎖飽和脂肪酸(例: 15:0)、分岐鎖脂肪酸(主にイソまたはアネトイソおよび10-メチル)、シクロプロパン脂肪酸(例 :19:0 cyclo ω7c)は主に細菌によって合成されます。多価不飽和脂肪酸である18:2 ω6c(リノール酸)は土壌 菌類 に見られますが、一価不飽和脂肪酸である16:1 ω5cはアーバスキュラー菌根菌 (AMF)に多く見られます。
基本的な前提は、個々の生物(特に細菌や真菌)が死ぬとリン脂質が急速に分解され、サンプルに残っているリン脂質は生きている生物由来であると想定されることです。さまざまなグループの細菌や真菌のリン脂質には、やや特殊な脂肪酸が 多種多様に含まれているため、これらのグループの有用なバイオマーカーとして利用できます。リン脂質を精製し、脂肪酸を切断してさらに分析することで、PLFA プロファイルと組成を決定できます。土壌、水、廃棄物中の微生物叢 の組成と代謝活動に関する知識は、作物生産の最適化、バイオレメディエーション、 微生物生態系の 理解に役立ちます。PLFA による土壌微生物群集分析は、土壌微生物叢の優勢な部分を感度よく再現性よく測定できること、および PLFA では生物の培養が不要であることから、広く使用されている技術です。[ 3 ] 培養による土壌微生物群集のサンプリングは費用対効果が低く、一部の微生物の培養の容易さの違いにより偏った結果が生じることがわかっています。PLFAの主な欠点は、抽出時間が非常に長く、面倒なことです。従来のPLFA抽出方法に比べてスループットが4~5倍向上した新しい96ウェルプレートPLFA抽出手順が開発されました。この新しい方法は、PLFAデータを分析するための新しいソフトウェアツールと組み合わせることで、多数のPLFA分析を実施する研究室、またはPLFA研究を開始したい研究室にとって有用となるでしょう。[ 4 ]
ツベルクロステアリン酸は、放線菌種のリン脂質脂肪酸バイオマーカーである。 パルミトレイン酸は、グラム陰性菌のリン脂質脂肪酸バイオマーカーである。 リノール酸は、真菌種のリン脂質脂肪酸バイオマーカーである。
PLFA分析の背景 生きた土壌微生物群集の初期の研究は、主に土壌中の細菌や真菌を培養する試みに基づいていた。しかし、多くの生物の培養が困難であること、生物の成長速度が異なること、および必要な労力のため、これは満足のいくものではなかった。1965年の論文では、微生物群集のバイオマーカーとして生物が産生する分子を使用することが提案された。[ 5 ] その後の20年間で、ガスクロマトグラフ (GC)とGC装置用の溶融シリカキャピラリーカラムの開発が急速に進歩し、脂肪酸メチルエステル(FAME)を含む 生物学的 材料のより良い分析が可能になった。PLFA分析は、「特徴的な」脂肪酸を使用することで、微生物群集の構造と活動を調べるために使用できる。[ 6 ] 基本的な概念は、リン脂質含有量は生物を表し、これらの化合物は好気性混合群集で急速に分解されるため、グラム陰性細菌の リポ多糖類 などの中性脂質成分の一部はサンプリング時に生きている生物を反映していないということです。
PLFAサンプルの調製 土壌、水サンプルなどでサンプル採取方法は異なりますが、抽出・誘導体化は一般的に土壌微生物群集に関する記事の以下のプロトコルと同様です。[ 7 ] 乾燥土壌サンプルからクロロホルム-メタノール-リン酸緩衝液混合物を用いて脂質を抽出しました。抽出は短時間の超音波処理 の後、2時間振とうし、遠心分離して土壌物質を沈殿させました。土壌上の液体にクロロホルムと水を追加し、脂質を含むクロロホルムを緩衝液/メタノール相から分離しました。脂質は固相抽出カラムで分画し、中性脂質、遊離脂肪酸、その他の物質を除去し、リン脂質相を乾燥させた後、脂肪酸メチルエステル(FAME)[ 7 ] を形成するためのエステル化を行い、分析に適した状態にしました。
土壌微生物叢のPLFA成分 放線菌は グラム陽性細菌であり、土壌、淡水、海洋環境で最も一般的な細菌の1つです。放線菌は有機物の分解に活発であり、耕したばかりの土壌の豊かな「土の」匂いを生み出します。この細菌群は、10番目の炭素にメチル分岐を持つ特徴的なバイオマーカー脂肪酸、例えば16:0 10-メチルや18:0 10-メチルを生成します。[ 9 ] 土壌放線菌の一般的な種には、Rhodococcus 、Nocardia 、Corynebacterium 、Streptomyces などがあります。
グラム陽性菌には、 好気性 バチルス属菌、特に B. cereus やB. subtilis に関連する菌種が含まれます。これらの菌は土壌中に広く存在し、根圏では数が増加します。これらのグラム陽性菌のPLFAプロファイルには、15:0 isoや15:0 anteisoなどのバイオマーカー分岐鎖脂肪酸が高割合で含まれています。したがって、PLFA分析におけるisoおよびanteiso脂肪酸の合計は、サンプル中のグラム陽性菌(放線菌を除く)の存在量を推定するのに役立ちます。
グラム陰性細菌は植物の 根圏 の主要な構成要素であり、リン酸 の溶解度を 高め、鉄やその他のミネラルの吸収を増加させるイオノフォア化合物を生成し、 抗真菌 化合物を生成することによって植物の成長を促進します。[ 10 ] グラム陰性細菌は活発な代謝中に高レベルの一価不飽和脂肪酸(例: 16:1オメガ-7および18:1オメガ-9)を生成しますが、栄養不足やその他のストレスにより代謝と細胞分裂が遅くなると、不飽和脂肪酸組成の大部分をシクロプロパン脂肪酸(例 :17:0シクロプロパンおよび19:0シクロプロパン)に変換します。したがって、PLFA分析では、一価不飽和脂肪酸とシクロプロパン脂肪酸の合計がグラム陰性細菌の存在量の推定値を提供する可能性があります。シクロプロパンと一価不飽和脂肪酸の比率が高いことは、ストレス状態を示します。[ 3 ]
農業における嫌気性細菌は 、主に深層土壌や水田などの湿潤な土壌における低酸素レベルの要因である。初期のサンプリングでPLFA分析を使用したところ、水田土壌中の細菌-古細菌コンソーシアムは、好気性細菌が約44%、通性嫌気性細菌が32%、古細菌が24%であった。長期にわたる湛水下では、その割合はそれぞれ27%、36%、37%であり、総バイオマスは著しく低かった。[ 11 ] 誘導体化中に生成されるジメチルアセタール(DMA)は、嫌気性細菌のバイオマーカーと考えられている。
古細菌は土壌中に広く分布しており、酸性条件下での硝化を制御すること [ 12 ] 、および農業土壌や森林土壌でのアンモニア酸化に寄与することが示されている[ 13 ] 。しかし、古細菌のリン脂質は細菌のようにエステル結合ではなくエーテル結合であるため、エステル結合脂肪酸を切断するように設計された通常のPLFAサンプル調製では有意に存在しない。
アーバスキュラー菌根菌 (AMF)は、維管束植物の約80%の皮層細胞の壁に侵入し、共生関係を築きます。菌類は植物細胞膜に隣接して膜構造を形成し、菌類からリン、窒素化合物、ミネラルの交換を可能にし、植物は主に光合成由来の糖類を菌類に供給します。AMFは絶対共生菌であるため、土壌中では自由に生活できません。根の中のAMF菌糸は脂質物質を形成し、それが根から土壌中に伸びる菌糸に運ばれるため、土壌サンプル中に存在する可能性があります。[ 14 ] 小胞はAMFの脂質貯蔵器官であり、土壌中の小胞と菌糸には脂肪酸18:2 w6c(PLFA分析の真菌含有量の指標としてよく使用される)と、AMFのバイオマーカーとして推奨されている脂肪酸16:1 w5c(PLFA分画:AMF菌糸、NLFA分画:AMF胞子)が含まれている。[ 15 ]
PLFA分析の応用 農作物の生産において、化学組成(pH、N、P、K、Ca、Mgなど)を分析するための農地土壌のサンプリングは古く から行わ れており、土壌微生物叢の重要性は認識されてきたものの、微生物叢を研究するためのツールが開発されたのは比較的最近のことである。
高付加価値野菜作物 多くの高付加価値野菜作物は、化学成分と土壌微生物叢の両方について土壌検査を行うことを容易に正当化します。 [ 16 ] 慣行農業、低投入農業、有機農業 システムでは、土壌微生物群集が湿潤/乾燥サイクルに迅速に反応し、細菌シクロプロピル脂肪酸の増加がストレス期間の検出に役立つことが示されました。[ 17 ] バチルス・チューリンゲンシス エンドトキシン を発現する遺伝子組み換えトウモロコシ(トウモロコシ)の系統は、PLFA分析で非遺伝子組み換え同質遺伝子系統と比較した場合、土壌微生物群集への影響が小さいことがわかりました。[ 7 ] 成功した外来侵入植物 種は、土壌の微生物群集に大きな影響を与える可能性があり[ 18 ] 、おそらくそれによって競争力が向上します。耕起 、除草、除草剤の 使用などの草地回復慣行は、表層土壌の微生物群集に影響を与えましたが、下層土壌の微生物叢には非常に小さな変化しかなく、4年間の回復後には群集は未処理の区画と非常によく似ていました。[ 19 ]
植物プランクトン 植物プランクトン (真核 藻類 )は、海洋や淡水域の太陽光が当たる層に生息する微細な光合成植物です。複雑な炭素化合物の主要な供給源として、水生食物網にとって不可欠です。植物プランクトンは、エイコサペンタエン酸 (EPA、20:5 w3c)を含む多価不飽和脂肪酸(PUFA)を相当量生成し、微細藻類は 魚油中のオメガ3脂肪酸 の起源となっています。 [ 30 ] 藻類の多様な分類群は、温度、塩分、日光、栄養利用可能性などの環境条件に応じて存在量が異なります。PLFAバイオマーカー組成は、いくつかの海洋環境における主要グループの存在量を決定するのに有効であることがわかっています。[ 31 ] 貯水池の堆積物の研究では、コミュニティのPUFA含有量が全微小真核PLFAの約 50%を占めると仮定されました。 [ 32 ] また、「オメガ3脂肪酸とオメガ6脂肪酸の比率は、微小真核生物群集の光合成生物と従属栄養生物の相対的な寄与を表している」と想定されていた。[ 32 ]
水生環境 土壌中の微生物の多様性がかなり大きいのとは対照的に、海流によって運ばれ藻類の分泌物にさらされる自由生活微生物は、比較的少数の種からなる少数の主要な微生物群で世界的に分布している。[ 33 ] 河床堆積物では、森林環境と河川の地理的位置に関連した微生物群集構造(PLFAで測定)の変動が見られ、その変動の多くは藻類バイオマーカー脂肪酸18:3 w3の使用によって決定された。[ 34 ] PLFA分析により、淡水貯水池の堆積微生物群集においてかなりの空間的および季節的変動が決定された。[ 32 ]
林業 針葉樹林は 、農業用肥料ではなく土壌中の利用可能な栄養素に依存しているため、共生菌根菌によって日常的にコロニー形成されます。森林内の菌根は、外生菌根菌(EMF)および/またはアーバスキュラー菌根菌(AMF)である可能性があります。[ 35 ] 土壌中の総PLFAの量は、土壌中の菌類の総量(AMFを除く)の推定値を提供します。AMFは、PLFA中の16:1 w5c脂肪酸の量によって推定できます。[ 35 ] ダグラスファーの森林では、[飽和、一価不飽和、および(シクロ17:0 + シクロ19:0)/(16:1 w7c + 18:1 w7c)]のPLFA比の増加によって水分ストレスが示されました。[ 36 ] 土壌pH値が低い北方林ではEM PLFAが高く、土壌のpHを上げると細菌PLFAが増加しました。[ 37 ] 樹木の根を通して光合成産物が導入されることは、土壌微生物叢にとって主要な炭素源であり、真菌および細菌群集の構成に影響を与える。[ 38 ] 樹木の根のない森林地帯は、樹木の根のある地域よりも真菌バイオマーカーが少なく、放線菌バイオマーカーが多かった。[ 39 ] オークの森林に窒素肥料を加えると、土壌微生物叢の外生菌根菌の含有量が減少した。[ 40 ]
廃水処理 活性汚泥 法は、廃水処理に最も広く用いられている方法です。活性汚泥プロセスでは、有機汚染物質の安定した除去効率のために複雑な微生物群集が必要です。PLFA分析は、活性汚泥反応槽の微生物群集構成、優勢な微生物群、およびそのようなシステムの効率を監視するために使用できます。[ 42 ] [ 43 ]
高山土壌の微生物研究 高山地帯の土壌微生物群集の構成は、他の植物群集と比較してあまり知られていない。微生物群集PLFAは、その構成と土壌N利用可能性、N無機化、硝化ポテンシャルとの関係によって特徴づけられる。[ 44 ]
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外部リンク USDA/NRCS推奨土壌健全性指標 – 技術ノートNo.450-03 土壌健康研究所 – 北米における土壌健康測定評価プロジェクト