種子の発芽 ランの原球体 ランにはいくつかのライフステージがあります。最初のステージは発芽していないランの種子 で、次のステージは原球体 、そしてその次のステージは成体ランです。ランの種子は非常に小さく(長さ0.35mmから1.50mm)、紡錘形で、尖った端に開口部があります。[ 5 ] 各種子には未分化の胚があり、根と茎の分裂組織 がありません。[ 3 ] ランの種子は自力で成長するのに十分な栄養分を持たず、胚乳 もありません。[ 2 ] その代わりに、自然環境の菌類共生体 から発芽に必要な栄養分を得ます。 [ 4 ]
ランの種子が発芽すると、プロトコームと呼ばれる中間構造が形成されます。プロトコームは発芽したが葉がなく、主に柔 細胞から構成される若い植物です。[ 6 ] [ 3 ] 感染したプロトコームは、数日以内に活発な分裂組織 を発達させる傾向があります。 [ 7 ] 成体段階では、多くのランは少量の太い分枝しない根を持ち、その結果、潜在的に菌根組織に適した小さな表面積の根系が形成されます 。[ 8 ]
葉緑素を持たないランは、無葉緑素菌従属栄養植物 と呼ばれ、生涯にわたって菌類共生体を保持し、炭素源を菌類に依存します。[ 9 ]
ランにとって菌類との共生が必要かどうかについての議論は古くからあり、ノエル・ベルナールが 1899年にランの共生を初めて提唱した。1922年、アメリカの植物学者ルイス・クヌードソンは 、ランの種子は菌根菌なしで寒天と菌類糖で育てることができることを発見したが、現代の研究では、ランの発芽は特定の菌類によってより成功する可能性があることがわかっている。[ 10 ]
着生 ランは他の植物に生育しますが、葉、茎、根にクロロフィルを生成することがあります。すべてのランと同様に、発芽と原球体への発達は菌類共生体に依存しており、菌類共生体は発芽時間を短縮し、原球体の活力を高めます。 [ 10 ] ランが特定の菌類に依存していることは広く研究されており、土壌中に存在する特定の菌類の個体群は、ランが古い植物に近いことや地理的な位置よりも、種子の発芽においてより重要であることが、以前考えられていたよりも明らかになっています。[ 11 ]
ランへの真菌の侵入 ザンビア産ランの菌根菌(寒天培地上)、ジョドレル研究所、キューガーデン 菌類はランのさまざまな生育段階で侵入することができます。菌糸は 、発芽したランの種子、原球体、後期段階の実生、または成植物の根の柔細胞に侵入することができます。[ 12 ] ランに侵入する菌糸はミトコンドリアが多く、液胞が少ないため、[ 13 ] 共生生物を受け入れると代謝能力が高まります。原球体段階では、菌糸は胚の合点(上部)端に侵入しますが、[ 14 ] 地生ランでは、成植物の根への菌類の侵入は主に根毛の 先端から起こり、その後、根毛は歪んだ形になります。[ 2 ] ランは栄養素、糖、ミネラルを菌類に依存しているため、共生関係は通常、ランの生涯を通じて維持されます。[ 15 ] しかし、一部のランは極端な条件下で菌類のパートナーを切り替えることがわかっています。[ 16 ]
菌類ペロトンとランの根皮質 菌類がランに侵入するとすぐに、菌類は発育中の実生の胚と成植物の根にペロトンと呼ばれる細胞内菌糸コイルを形成します。[ 4 ] 根皮質細胞におけるペロトンの形成は、ラン菌根を他の菌類と区別する特徴的な解剖学的構造です。[ 17 ] ペロトンは、大きさや菌糸の配置、密度が異なる場合があります。[ 7 ] ペロトンは、界面マトリックスとランの形質膜 によってランの細胞質 から分離されています。[ 18 ] 界面マトリックスを構成する物質は、ラン菌根の相互作用の段階によって異なる場合があります。[ 19 ] 変性したペロトンを持つランの細胞にはデンプン粒がなく、新たに侵入されたランの細胞には大きなデンプン粒が含まれていることから、真菌のコロニー形成によってデンプンが加水分解されたことが示唆される。[ 13 ] 感染したランの皮層細胞と、感染部位の近くの非感染皮層細胞では、DNA 含有量の増加により核が肥大する。[ 20 ] DNA 含有量の増加は柔細胞の分化と相関しており、ランの成長におけるその役割を示唆している。[ 21 ] 生きた真菌菌糸のペロトンが老化し、最終的に崩壊または溶解すると、ランの細胞内で茶色または黄色の塊として現れる。[ 6 ] 崩壊したペロトンは、現在の研究において非常に興味深い領域である。崩壊したペロトンは、まずランの微小管がペロトンを取り囲む崩壊を経験し、これが菌糸の生理的および構造的変化を引き起こすペロトン崩壊のメカニズムである可能性がある。[ 18 ] 古い根の皮層細胞は、若いペロトンよりも溶解したペロトンが多い傾向がある。[ 2 ] ペロトンが溶解しても、新しいペロトンが形成され続けるため、新しい菌糸活動が活発であることを示している。[ 8 ]
菌類 担子菌類リゾクトニア菌
ランの菌根を形成する菌類は、一般的に担子菌類です。これらは、 Ceratobasidium ( Rhizoctonia )、Sebacina 、Tulasnella 、Russula 種など、さまざまな分類群に属します。ほとんどのランは腐生菌 または病原菌 と共生しますが、外生 菌根菌種と共生するものは少数です。後者の共生関係は、ラン、外生菌根菌、および光合成宿主植物が関与するため、三者共生と呼ばれることがよくあります。[ 22 ] [ 23 ] ランの菌根における宿主特異性を決定する際の課題の 1 つは、野生由来のサンプルからラン特有の菌類を他の自由生活菌類種から識別する方法です。現代の分子解析やゲノムデータベースを用いても、これは依然として困難であることが判明している[ 24 ] 。これは、原球体からの菌類の培養や菌類サンプルの同定の難しさ[ 24 ] 、および進化するrDNAの変化[ 25 ] が原因の一部である。しかし、異なる菌類が、発芽時、原球体発達時、またはランの生涯を通じて、特定の段階でランと共生する可能性があることがより明らかになってきている[ 26 ] 。ランの種類とその共生菌類も、地上性か着生植物 として他の植物上で生育するかなど、ランが占める環境ニッチによって異なる[ 27 ] 。
外生菌根性担子菌類
リゾクトニア属に属さない様々なラン科植物において、他にも多くの担子菌類が確認されている。特に、完全菌従属栄養性のラン科植物の多くは、テレフォラ属 、トメンテラ属 、ルッソウ属 などの外生菌根性担子菌類と共生している。
アトラクティエラ目に属する担子菌類
子嚢菌類
ラン科植物では稀ではあるものの、子嚢菌類との共生はいくつかのラン科植物で確認されている。ヨーロッパ原産の地生ランであるエピパクティス・ヘレボリネは、 ツベリ科に属する外生菌根性子嚢菌類と特異的な共生関係を持つ。
栄養素の輸送 ランの菌根(OM)は地球上の植物多様性の約10%に見られ、ラン科植物の適応度と多様性を決定づける独特で特殊な菌根栄養転送相互作用を持っています。[ 28 ] ランの菌根共生には、ラン科植物でのみ観察されている多数の独自の栄養輸送システム、構造、現象が関わっています。これらの相互作用は、担子菌類とすべてのラン科植物種の間で形成されます。[ 29 ] ランと最も一般的に共生している担子菌類であるリゾクトニアは、腐生能力で知られており、この菌類とランの共生は特異であり、植物と菌類の両方がアーバスキュラー菌根では利用できない菌根共生内の炭素源にアクセスできるようになります。[ 30 ] [ 29 ]
ランの種によって、これらの相互作用を利用する方法や程度は異なります。[ 31 ] ランの菌根共生は、菌類パートナーに完全に寄生するものから、植物と菌根菌の間で双方向の栄養移動を伴う相利共生まで多岐にわたります。[ 32 ] [ 33 ] ランは発芽時に必須の寄生生活段階を持ち、その栄養分はすべて菌類から供給されなければなりません。[ 34 ] 発芽後、ランの菌根共生は、相互作用を取り巻く環境で利用可能な炭素と栄養分を利用するように特化します。これらの共生関係は、植物によって決定されると考えられています。[ 33 ] 過去の研究では、密集した日陰の多い森林に生息するランの個体は、炭素に関して菌類パートナーに著しく依存している可能性があり、その依存度は種内および種間で異なり、これらの相互作用の変動性と反応性を示しています。[ 28 ] [ 35 ]
リンの輸送 リンはすべての植物に必要な重要な栄養素であり、土壌中のリン欠乏は しばしば共生関係の形成を決定づける。菌根菌は周囲の土壌から有機リン、リン酸塩、無機リン化合物の3つの異なる形態でリンを得る。これらの化合物はしばしば陽イオンに強く結合しており、生物学的に利用可能にするにはプロトン化または異化される必要がある。菌根菌は、その広大な土壌表面積と高い酵素多様性により、これを行うのに非常に効率的である。[ 44 ] [ 43 ] [ 42 ] 土壌から解放されたリン化合物(主に無機リン酸塩)は、2つの提案された経路を介して移動する。 1つ目の方法は、主にリン酸として無機リンを菌類から界面アポプラストへ能動的に輸送し、界面アポプラストの酸性度によりプロトン化されてリン酸二水素を形成し、その後能動的なリン酸輸送体によって植物細胞へ輸送するものである。[ 42 ] [ 44 ] 2つ目の方法は、前述の経路と同様に、菌類からのリン酸の受動的な流出と植物による能動的な吸収に依存する。自由生活性の菌類は通常、菌糸の再吸収性のため、リン酸の損失が非常に少ないことが観察されているが、共生中はリン酸の再吸収が減少するため、菌類からの正味の流出が増加すると考えられている。[ 42 ] どちらの経路も、効率的な輸送のために菌類細胞内のリン酸濃度が比較的高く、植物細胞内のリン酸濃度が低いことを必要とするが、2つ目の方法はこの条件に大きく依存する。さらに、これらの方法は相互に排他的ではなく、同じ個体で発生する可能性がありますが、相互作用の複雑さを明らかにするには、さらなる研究が必要です。[ 28 ] リンの交換を促進するために、さまざまな遺伝子が上方制御されます。ラン植物では、MtPT4 や StPT3 などの Pi トランスポーター遺伝子が H+ ATPase トランスポーターとともに上方制御されます。[ 43 ] 菌類パートナーは、Pi トランスポーター遺伝子とアルカリホスファターゼ をコードする遺伝子 (Perotto) を上方制御しました。[ 45 ] [ 43 ] ホスファターゼ遺伝子の上方制御は、一部の環境で菌類が得るリンの大部分が有機分子の異化作用によるものであることを示している点で重要です。[ 43 ] 菌根共生が確立されると、植物が得るリンは菌類組織を通してのみ得られることに注意することが重要です。[ 31 ] さらに、菌類から植物へのリンの大規模な補助輸送は、菌類ペロトンが生きているときにのみ発生し、これらの構造が分解し始めると、リンの大幅な流れは停止します。[ 44 ] これにより、この経路は生物栄養性、つまり両方とも生きている2つ以上の生物間での栄養素の移動に分類されます。
窒素輸送 窒素輸送は、菌根共生を介して起こることが多い、同様に重要で影響力のあるプロセスです。[ 46 ] 窒素はリンよりもはるかに容易に入手でき、はるかに豊富ですが、菌根相互作用は窒素の分配において依然として大きな利点をもたらします。硝酸塩とアンモニウムとしての生物利用可能な窒素は、土壌媒体から菌根菌の根外菌糸に吸収され、アミノ酸に同化されます。 [ 43 ] 場合によっては、アミノ酸やその他の窒素含有有機化合物が周囲の土壌に存在することがあります。その場合、有機窒素の取り込みは、アミノ酸透過酵素とペプチド輸送体を介しても行われます。[ 39 ] アミノ酸として菌類に組み込まれると、窒素が宿主植物に転送されるメカニズムにはいくつかの異なるものが提案されています。これらの窒素転送経路は専ら生物栄養性であると考えられていますが、かなりの量の窒素が壊死栄養性にも転送される可能性がありますが、それは大きく異なるプロセスです。[ 46 ] 最初の経路では、アミノ酸は菌糸体外に運ばれ、そこで尿素回路の異化段階によって分解される。合成され菌体内に運ばれる主要なアミノ酸はアルギニン であり、これはアンモニウムに異化される。アンモニウムはその後、菌糸体と周囲の植物膜との間の界面空間に送られ、アンモニウム輸送体を介して植物細胞に輸送され、植物に組み込まれる。[ 39 ]
この経路を介した窒素の輸送(主にアンモニウムとして)に対応するため、植物パートナーではアンモニウム輸送体遺伝子群が上方制御され、さらに菌根菌パートナーは、外部アミノ酸透過酵素、硝酸塩輸送体、アンモニウム輸送体とともに、プロテアーゼ遺伝子群を上方制御することが多い。 [ 39 ] [ 42 ] Cameron 2006 および Fochi 2016 が提唱したように、窒素は、アルギニン、グリシン、グルタミンなどのアミノ酸として、特定の少数の特殊なアミノ酸輸送体を介して細胞内に輸送されることもある。ラン植物と共生関係にある菌根菌T. calospora は 、アミノ酸透過酵素をコードする遺伝子である SvAAP1 および SvAAP2 の発現を上方制御し、アミノ酸が窒素輸送に関与する重要な分子であるという仮説を支持する。[ 39 ] [ 32 ] [ 40 ] アミノ酸にはかなりの量の炭素も含まれており、炭素の輸送が観察されたアミノ酸トランスポーター遺伝子のアップレギュレーションの主な原因である可能性がありますが、それでも窒素はこの経路を介して植物に輸送される可能性があります。[ 41 ] アンモニウムの形での無機窒素の輸送とアミノ酸としての有機窒素の輸送は、土壌中のさまざまな窒素化合物の存在量に応じて、同じ種または生物で同時に起こる可能性が最も高いです。[ 28 ] Fochi 2016 と Dearnaley 2007 は、アミノ酸が実際にはランに転送される主要な窒素化合物である可能性があると示唆しており、その証拠は菌根菌に関連する植物内の濃縮された C13 と N15 の同位体比から得られていますが、この輸送関係を完全に理解するには、さらなる研究が必要です。[ 39 ] [ 31 ]
炭素輸送 菌根菌からラン植物へ窒素とリンを運ぶ独特のペロトン構造を除けば、これらの栄養素の輸送は、前述のように、アーバスキュラー菌根やエリカ菌根で観察されるものとほぼ同じですが、菌根輸送に関わる最も基本的な要素である炭素に関しては、ランの菌根は、菌根共生における一方向の栄養素輸送という従来のパラダイムとは明らかに異なる特徴を示しています。[ 28 ] [ 42 ] [ 41 ] ランの菌根相互作用は、葉緑素を持たないMonotropa uniflora のように菌類に寄生する完全な菌従属栄養植物から、緑葉の Goodyera repens のように双方向の栄養輸送が行われるアーバスキュラー菌根に見られるものと同様の性質を持つ相互作用まで、さまざまな共生シナリオを包含しています。 [ 47 ] [ 32 ] [ 33 ] ランの菌 根における記録された相互作用では、光合成能力のある種であっても、炭素が菌類から植物へ容易に流れることが観察されています。これは、植物から菌類への炭素の移動と同時に起こる場合もあれば、そうでない場合もあります。[ 32 ] [ 48 ] [ 41 ] この現象の進化論的理由はまだ解明されていません。[ 28 ]
このため、ランの菌根は一般的に少なくとも部分的に菌従属栄養的な相互作用であると考えられています。[ 28 ] 菌従属栄養性のランの菌根では、菌類が炭素を、土壌中で起こる腐生反応の産物であるペプチドや炭水化物の様々な形で吸収します。[ 28 ] [ 49 ] [ 50 ] これらの反応は、担子菌門に属する菌根菌の活動によって開始され、進行することが多く、ランに関連する菌類は、利用できる広範な代謝手段を持ち、セルロースやリグニンを容易に消化して炭素を得ることができます。[ 50 ] プロテアーゼ、セルロースおよびリグニン消化酵素、ならびにオリゴペプチドおよび炭水化物トランスポーターをコードする遺伝子は、炭素の吸収増加を促進するために菌糸土壌網で上方制御されます。[ 36 ] さらに、ラン植物と菌従属栄養的に相互作用する菌類は、ブナの木との菌根共生でもよく見られます。[ 51 ] 樹木から菌類、そしてランへと光合成産物が転流されることが提案されていますが、徹底的な研究はまだ行われていません。[ 52 ] 菌類によって獲得された炭素は、糖類(ほとんどの菌根菌ではトレハロースが極めて一般的)、アミノ酸に変換されるか、あるいは単に菌類生物に同化されます。菌類から植物への炭素の転移は、主にトレハロースなどの炭水化物として、または主にアルギニンなどのアミノ酸として、またはグリシンやグルタミンなどのアミノ酸として、2 つの形態のいずれかで起こる。[ 33 ] [ 32 ] [ 40 ] これらの分子は、菌類ペロトン膜に埋め込まれた特殊なアミノ酸透過酵素と炭水化物輸送体を介して、界面空間に輸送され、ペロトンを取り囲む植物小胞体膜にある同様の類似輸送体を介して植物に吸収される。[ 40 ] [ 32 ] [ 49 ] このような輸送体をコードする遺伝子は、植物と菌類の両方で、共生中に窒素およびリン化合物輸送体遺伝子で見られるアップレギュレーションと同様に、有意なアップレギュレーションを受ける。[ 36 ] 菌類から植物への炭素の能動輸送は、完全に生物栄養的な反応であるが、菌類の塊が分解・消化される際にも、かなりの量の炭素が植物に伝達されると考えられている。
菌食(壊死食)前述のように、窒素と炭素の伝達は生きたペロトンを介して容易に起こりますが、Kuga 2014 と Rasumussen 2009 は、菌類ペロトンの老化と消化中に大量の炭素と窒素が植物に取り込まれることもあることを観察しています。このプロセスは菌食と呼ばれます。[ 41 ] [ 40 ] ペロトンの溶解は、観察されたほとんどのラン植物内で接触および最初のペロトン形成後 30 ~ 40 時間で始まります。[ 28 ] 前述のように、ペロトンが形成されると、植物由来の膜で覆われ、最終的にはゴルジ装置に囲まれた小胞体の性質を帯びます。これらのオルガネラの存在は、その目的を示しており、菌類細胞を消化するためにペロトンと植物膜の間の界面に消化酵素を分泌することであると考えられています。[ 53 ] 菌糸体の運命が決定し、分解と消化が行われると、菌糸体の周囲に二次膜が形成されます。これは基本的に大きな液胞であり、菌糸体の隔離された分解を可能にします。[ 53 ] さらに、ペルオキシソームが消化植物細胞内に蓄積し、新たに形成された液胞にエキソサイトーシスを起こします。このプロセスにより、尿酸分解酵素、キチナーゼ、ペプチダーゼ、酸化酵素、触媒などの多数の酵素が液胞内に濃縮され、菌糸体の分解が促進されます。[ 53 ] [ 28 ] 分解された菌糸体の残骸は植物に吸収され、栄養素とエネルギーが植物宿主に伝達されます。[ 41 ] 安定同位体イメージングにより、菌根菌の菌糸網に適用された C13 と N15 は菌類ペロトンを介して植物に容易に移行し、植物細胞を含むペロトンとペロトン自体にこれらの同位体が不均衡な量で存在することが明らかになったが、老化ペロトンでは、これらの C13 と N15 を含む化合物の濃度はさらに顕著で、生きているペロトンよりも有意に高かった。[ 40 ] これは、植物ペロトンが老化し始めると、炭素と窒素の栄養化合物が蓄積され、おそらく溶解中に植物に移行することを示唆している。[ 40 ] 菌糸の形態変化もこの提案をさらに裏付けており、ペロトンが崩壊する前の最後の形態変化は膨張であり、これはおそらく栄養化合物の負荷の増加によるものである。[ 40 ] 消化が完了すると、すぐに消化細胞の再感染が起こり、新しいペロトンが形成され、最終的には分解されます。[ 41 ] 再感染と消化は連続体であり、協力関係の全期間にわたって周期的に発生します。[ 28 ] Rasmussen 2009 は、栄養転送に関与する 2 種類の植物宿主細胞、いわゆる「消化細胞」といわゆる「宿主細胞」を区別しています。「消化細胞」は、密な菌糸ペロトンの形成に続いて急速な消化とそれに続く再感染に関与しているようですが、「宿主細胞」には生きた菌糸ペロトンが含まれており、消化されないか、少なくともそれほど容易には消化されません。[ 41 ] Rasmussen 2002 は、菌類細胞の溶解を伴うピトファジーと 呼ばれる別の栄養転送モードについて論じているが、菌糸全体を溶解するのではなく、成長端のみが分解され、菌類の細胞質の内容物が植物と菌類の膜の間の界面空間に放出され、そこで植物が必要な化合物を吸収することができる。この栄養転送モードに関する情報は少なく、まだ推測の域を出ず、さらなる研究が必要である。[ 54 ]
微量栄養素の転送 微量栄養素の移行は、ほとんどの場合、菌類による土壌からの吸収時と菌類から宿主植物への移行時の両方において、細胞膜を介した受動輸送によって起こると考えられている。[ 42 ] ただし、常にそうとは限らず、このトピックに関する研究は限られているものの、特定の条件下では微量栄養素の能動輸送と分配の証拠がある。[ 55 ] ラン科植物D. officinale の 共生ではカチオントランスポーターのアップレギュレーションが観察されており、菌類が菌類から植物への栄養素の移行を助けている可能性が示唆されている。[ 56 ] カチオン、特に鉄は、有機物や粘土質の基質に強く結合していることが多く、植物、菌類、細菌の手の届かないところにあるが、シデロフォアなどの化合物は、これらのカチオンの獲得を助けるために、菌類や細菌によって土壌に分泌されることが多い。[ 50 ] シデロフォアは 、Fe3+ に対して非常に高い親和性を持つ小さな分子であり、多くの細菌や菌類によって利用されていることが一般的に見られる。[ 57 ] これらの化合物は菌糸網の周囲の土壌に放出され、土壌中の鉱物化合物から鉄を奪い取ります。その後、シデロフォアは菌糸に再吸収され、そこで鉄はシデロフォアから解離して利用されます。[ 57 ] Haselwandter は、主要な鉄キレート化合物としてシデロフォア バシジオクロムを利用するRhizoctonia 属のラン共生菌根菌におけるシデロフォアの存在を調査しました。 [ 55 ] 他の重要な栄養素は、キレート分子などの特殊な方法を介して菌根菌とラン植物の間で伝達される可能性がありますが、この主題についてはさらなる研究が必要です。[ 28 ]
共生生物の特異性 現在の分子解析により、ランの研究、栽培、および保全において関心のある共生関係を形成する特定の分類群の同定が可能になった。これは、バニラビーンズ のような商業的価値のある絶滅危惧種のランの取引と保全において特に重要である。[ 58 ] ランに見られる共生の種類には傾向が見られ、主にランの生活様式に依存しており、共生は主に植物に利益をもたらす。地生ランは一般的にTulasnellaceae と共生することがわかっているが、一部の独立栄養性 および非独立栄養性のランはいくつかの外生菌根菌と共生している。[ 59 ] [ 60 ] しかし、着生菌は 、多系統群であるRhizoctonia の限られたクレードとより一般的に共生する可能性がある。[ 61 ] これらの菌類は、着生ランまたは地生ランのいずれかと重要な共生関係を形成する可能性がありますが、両方と共生することはまれです。[ 61 ] 種子誘引法を用いることで、研究者は共生ラン菌根の特定の種と株を分離することができました。この手法を用いると、着生ランであるデンドロビウム・ アフィラムの種子は、トゥラスネラ 菌株と組み合わせると実生に発芽することが分かりましたが、この種の種子は、成体ランから採取したトリコデルマ 菌で処理すると発芽しませんでした。これは、段階特異的な共生菌が存在することを示しています。これらの菌類の共生関係、および特定の共生菌に対する親和性は、宿主の根の発達段階と年齢に基づいて変化します。[ 62 ] [ 9 ] [ 26 ] ランが成長するにつれて、菌類との共生関係はより複雑になります。
Cephalanthera longibracteataのような 混合栄養性 ランは、炭素源として菌類にそれほど依存していないため、 一般的にはいくつかの菌類、特にRussulaceae 、Tricholomataceae 、Sebacinales 、Thelephoraceae と共生している可能性がある。[ 63 ] 一部のランは共生菌に非常に特異性があり、単一の菌類のクラスまたは属を好むことがある。菌従属栄養性 ランであるCorallorhiza maculata の遺伝子型は、 地質学的場所や他のランの存在に関係なく、Russulaceae と密接に共生していることがわかっている。 [ 64 ] チリの地生ランChloraea collicensis とC. gavilu は、 Rhizoctonia 属の 1 つの主要な共生菌のみを持っていることがわかっている。[ 65 ] 研究によると、汎用的なランは他の汎用的な菌類と共生し、多くの場合、複数の種と共生するが、高度に特化したランはより限られた範囲の菌類パートナーを利用する。[ 25 ] 例えば、光合成ランであるLiparis liliifolia は 、成体期に多くの菌株と共生する。[ 66 ] 逆に、光合成ランであるGoodyera pubescens は 、干ばつなどの環境変化にさらされない限り、1 つの優勢な菌類とのみ共生することがわかった。この場合、ランはストレスに応じて共生生物を変えることができた。[ 16 ] ランの菌類特異性には膨大な多様性がある。興味深いことに、ほとんどのアーバスキュラー菌根菌 と外生菌根菌の共生は、同時に複数の菌類と共生関係を形成する。[ 16 ] 菌類の共生も環境に依存するため、熱帯性ランと温帯性ランでは菌類のパートナーに多くの違いがある。
世界中の多くのランが絶滅の危機に瀕していることを考えると、種特異的な菌類共生体の知識は非常に重要です。菌類共生体の特定は、絶滅の危機に瀕しているランの保全と再導入に役立つ可能性があります。[ 58 ] インドの研究者は、成体のランのサンプルを使用して、絶滅危惧種のランであるDactylorhiza hatagireaの種子を発芽させ、 Ceratobasidium と密接に関連していることがわかりました。 [ 67 ]
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外部リンク 「ランの菌根」、『菌類生物学』(オンライン教科書)、 シドニー大学生 物科学部、2004年6月 「ラン科菌根」は、 2002年1月11日にウィスコンシン大学マディソン 校植物学科のFrank C. LandisによるMycorrhizae and Plant Phylogeny(ウェブサイト)からWayback Machine に2006年8月28日に アーカイブされました。