視覚光伝達とは、脊椎動物の網膜にある光受容細胞(桿体細胞と錐体細胞)が光を検出する、視覚系の感覚伝達過程のことである。光子は網膜の発色団(それぞれオプシンに結合している)に吸収され、そこから複数の中間細胞を経て、視神経を構成する網膜神経節細胞(RGC)へと信号が伝達される。
光は眼に入り、光学媒体を通過し、網膜の内側の神経層を通過した後、最終的に網膜の外層にある光受容細胞に到達します。光はオプシンに結合した発色団によって吸収され、発色団が光異性化され、発色団を「リセット」する視覚サイクルと、視覚信号を脳に伝達する光伝達カスケードの両方が開始されます。カスケードは、光強度に比例して膜電位が-70 mVの静止電位から増加するにつれて、興奮した光受容細胞の段階的分極(アナログ信号)から始まります。静止状態では、光受容細胞は電位を維持するためにシナプス終末でグルタミン酸を継続的に放出しています。 [ 1 ]光強度が増加すると、伝達物質の放出速度が低下します(過分極)。各シナプス終末は、水平細胞と双極細胞と最大500個の接触を形成します。[ 1 ]これらの中間細胞(アマクリン細胞とともに)は受容野内の光受容体信号の比較を行うが、その正確な機能はよく理解されていない。信号は網膜神経節細胞(RGC)に到達するまで全ての細胞で段階的な分極として残り、そこで活動電位に変換されて脳に伝達される。[ 1 ]
脊椎動物の視覚に関わる光受容細胞は、桿体細胞、錐体細胞、および光感受性神経節細胞(ipRGC)です。これらの細胞には、細胞膜タンパク質であるオプシンに結合した発色団(ビタミンA1のアルデヒドであり、光吸収部分である11-シス-レチナール)が含まれています。桿体細胞は、低照度下での視覚とコントラスト検出を担っています。桿体細胞は周波数に関わらずすべて同じ応答を示すため、例えば低照度条件下のように、桿体細胞だけでは色の情報を推測することはできません。一方、錐体細胞は種類が異なり、それぞれ周波数応答が異なるため、異なる種類の錐体細胞の出力を比較することで色を知覚することができます。錐体細胞の種類ごとにオプシンがわずかに異なるため、それぞれの錐体細胞は特定の波長、つまり特定の色に最もよく反応します。 3 種類の錐体細胞は、それぞれ長波長 (赤みがかった色)、中波長 (緑みがかった色)、短波長 (青みがかった色) に最適に反応する L 錐体、M 錐体、S 錐体です。人間は、色覚を可能にする 3 つの反対処理チャネルからなる三色明所視を持っています。[ 2 ]桿体視細胞は網膜で最も一般的な細胞タイプで、かなり遅くに発達します。ほとんどの細胞は出生前に分裂後になりますが、分化は出生後に起こります。出生後最初の 1 週間で細胞は成熟し、開眼時には眼は完全に機能するようになります。視覚色素ロドプシン (rho) は、桿体における分化の最初の既知の兆候です。[ 3 ]
光受容体の光強度に対する挙動を理解するためには、様々な電流の役割を理解する必要がある。
非ゲート型K +選択性チャネルを介して、継続的な外向きカリウム電流が流れている。この外向き電流は、光受容体を約-70mV(K +の平衡電位)付近で過分極させる傾向がある。
また、 cGMP依存性ナトリウムチャネルによって運ばれる内向きナトリウム電流も存在する。この「暗電流」は細胞を約-40mVまで脱分極させる 。これは他のほとんどのニューロンよりも著しく脱分極している。
高密度のNa + -K +ポンプにより、光受容体はNa +とK +の細胞内濃度を一定に保つことができる。
光の強度が増加すると、膜電位は低下します(過分極)。これは、光の強度が増加すると、光受容体からの刺激性神経伝達物質であるグルタミン酸の放出が減少するためです。光の強度が低下すると、つまり暗い環境では、光受容体からのグルタミン酸の放出が増加します。これにより膜電位が上昇し、膜の脱分極が生じます。[ 1 ]
光受容細胞は、刺激がない状態、すなわち暗所(暗所)では脱分極するという点で特異な細胞である。明所(明るい場所)では、光受容細胞は過分極して−60mVの電位になる 。
暗闇では、cGMP濃度が高く、cGMP依存性ナトリウムチャネルが開いた状態を維持するため、暗電流と呼ばれる安定した内向き電流が発生します。この暗電流によって細胞膜電位は約-40mVに脱分極され 、グルタミン酸が放出されてニューロンの興奮が抑制されます。
暗所条件下での細胞膜の脱分極により、電位依存性カルシウムチャネルが開きます。細胞内Ca2 +濃度の上昇により、神経伝達物質であるグルタミン酸を含む小胞が細胞膜と融合し、グルタミン酸がシナプス間隙(ある細胞の末端と別のニューロンの始端の間の領域)に放出されます。グルタミン酸は通常は興奮性神経伝達物質ですが、ここでは抑制性神経伝達物質として機能します。
錐体細胞経路では、グルタミン酸が次の働きをする。
要約すると、光はcGMP依存性ナトリウムチャネルを閉じ、Na +イオンとCa2 +イオンの両方の流入を減少させます。Na +イオンの流入を止めることで、暗電流が効果的に遮断されます。この暗電流の減少により光受容体が過分極し、グルタミン酸の放出が減少するため、網膜神経の抑制が軽減され、これらの神経が興奮します。光伝達中のCa2 +流入の減少は、以下の§ 光伝達カスケードの不活性化で説明するように、光伝達の不活性化と回復を可能にします。

光照射下では、cGMPレベルが低いためNa +チャネルとCa2 +チャネルが閉じ、細胞内Na +とCa2 +が減少します。回復期(暗順応期)には、Ca2 +レベルが低いため、以下のように回復(光伝達カスケードの終結)が誘導されます。
さらに詳しく説明すると:
RGS(Gタンパク質シグナル伝達調節因子)のGTPase加速タンパク質(GAP)はトランスデューシンのαサブユニットと相互作用し、結合したGTPをGDPに加水分解させ、ホスホジエステラーゼの作用を停止させ、cGMPからGMPへの変換を阻止します。この光伝達カスケードの不活性化ステップ(Gタンパク質トランスデューサーの不活性化)は、光伝達カスケードの不活性化における律速段階であることがわかっています。[ 7 ]
言い換えれば、グアニル酸シクラーゼ活性化タンパク質(GCAP)はカルシウム結合タンパク質であり、細胞内のカルシウム濃度が低下すると、GCAPは結合していたカルシウムイオンから解離し、グアニル酸シクラーゼと相互作用して活性化します。その後、グアニル酸シクラーゼはGTPをcGMPに変換し、細胞内のcGMP濃度を回復させることで、光伝達中に閉じられていたナトリウムチャネルを再び開きます。
最後に、メタロドプシンIIは不活性化されます。カルシウム結合タンパク質であるリカベリンは、カルシウムが存在する場合、通常はロドプシンキナーゼに結合しています。光伝達中にカルシウム濃度が低下すると、カルシウムはリカベリンから解離し、ロドプシンキナーゼが放出されてメタロドプシンIIをリン酸化し、トランスデューシンへの親和性が低下します。最後に、別のタンパク質であるアレスチンがリン酸化されたメタロドプシンIIに結合し、完全に不活性化します。こうして、最終的に光伝達は不活性化され、暗電流とグルタミン酸放出が回復します。メタロドプシンIIがリン酸化されてアレスチンに結合し、不活性化されるこの経路が、暗順応のS2成分の原因であると考えられています。S2成分は、あらゆる光退色強度において暗順応の開始時に存在する暗順応機能の線形部分を表しています。

視覚サイクルは、視覚オプシンと発色団である11-シス-レチナールからなるレチニリデンタンパク質と呼ばれるGタンパク質共役受容体を介して起こります。11-シス-レチナールは、シッフ塩基を介してオプシン受容体に共有結合しています。11-シス-レチナールが光子を吸収すると、光異性化を起こしてオールトランス-レチナールとなり、オプシンGPCRの立体構造が変化します。これによりシグナル伝達カスケードが引き起こされ、環状GMP依存性カチオンチャネルが閉じ、光受容細胞が過分極します。光異性化後、オールトランス-レチナールはオプシンタンパク質から放出され、オールトランス-レチノールに還元され、網膜色素上皮に移動して「再充電」されます。最初にレシチンレチノールアシルトランスフェラーゼ(LRAT)によってエステル化され、次にイソメロヒドロラーゼRPE65によって11-シス-レチノールに変換されます。RPE65のイソメラーゼ活性は示されていますが、ヒドロラーゼとしても作用するかどうかは不明です。[ 8 ]最後に、11-シス-レチナールに酸化されてから光受容体細胞の外節に戻り、そこで再びオプシンと結合して、新しい機能的な視覚色素(レチニリデンタンパク質)、すなわちフォトプシンまたはロドプシンを形成します。
ショウジョウバエなどの無脊椎動物における視覚光伝達は、これまで説明されてきた脊椎動物のそれとは異なる。無脊椎動物の光伝達の主要な基盤はPI(4,5)P2サイクルである。ここで、光はロドプシンの構造変化を誘導し、メタロドプシンに変換する。これによりGタンパク質複合体の解離が促進される。この複合体のαサブユニットはPLC酵素(PLC-β)を活性化し、 PIP2をDAGに加水分解する。この加水分解によりTRPチャネルが開き、カルシウムが流入する。
無脊椎動物の光受容細胞は、形態的にも生理学的にも脊椎動物の光受容細胞とは異なります。脊椎動物では視覚刺激によって光受容膜電位が過分極(弱化)しますが、無脊椎動物では光強度によって脱分極します。無脊椎動物で同一条件下で発生する単一光子イベントは、時間経過とサイズにおいて脊椎動物とは異なります。同様に、無脊椎動物では多光子イベントは単一光子応答よりも長くなります。しかし、脊椎動物では多光子応答は単一光子応答と似ています。両門とも光順応があり、単一光子イベントは小さく、速くなります。カルシウムはこの順応において重要な役割を果たします。脊椎動物の光順応は主にカルシウムフィードバックによるものですが、無脊椎動物ではサイクリックAMPが暗順応の別の制御因子です。[ 9 ]


ショウジョウバエのゲノムは7つのオプシンをコードしており、[ 11 ]そのうち5つは眼のオマチディアで発現している。光受容細胞R1-R6はオプシンRh1を発現しており、[ 12 ]青色光(約480 nm)を最大限に吸収するが、[ 13 ] [ 14 ] [ 15 ] R1-R6細胞は、UV領域(355 nmと370 nm)に2つの感度最大値を追加する感光性色素[ 16 ] [ 17 ] により、オプシンが許容するよりも広いスペクトル範囲をカバーする。[ 15 ] R7細胞には、黄色と淡色の桿状体を持つ2つのタイプ(R7yとR7p)がある。[ 18 ] [ 19 ]淡色の R7p 細胞は、紫外線(345 nm)を最大に吸収するオプシン Rh3 を発現します。 [ 20 ] [ 21 ] [ 22 ] R7p 細胞は、紫色の光 (437 nm) を最大に吸収する Rh5 を発現する R8p 細胞と厳密にペアになっています。 [ 21 ] [ 15 ] もう一方の黄色の R7y 細胞は、青色を吸収する遮蔽色素 [ 18 ] と紫外線 (375 nm )を最大に吸収するオプシン Rh4 を発現します。 [ 23 ] [ 22 ] R7y細胞は、青緑色の光 (508 nm) を最大に吸収する Rh6 を発現する R8y 細胞と厳密にペアになっています。 [ 24 ] [ 15 ]オーマチディアの一部では、R7 細胞と R8 細胞の両方がオプシン Rh3 を発現します。[ 21 ]
しかし、これらのオプシンの吸収極大は、遮蔽色素のない白眼のハエ(Rh3-Rh6)[ 22 ] [ 15 ] 、または単離されたオプシン(Rh1)から直接測定されたものである。[ 13 ]これらの色素は、波長に応じてオプシンに到達する光を減少させる。したがって、色素が完全に存在するハエでは、オプシンの実効吸収極大が異なり、光受容細胞の感度も異なる。遮蔽色素がある場合、オプシンRh3は345 nm [ a ]から330 nmに、Rh4は375 nmから355 nmに短波長シフトする。遮蔽色素の有無は、オプシンRh5(435 nmと437 nm) には実際的な違いをもたらさないが、オプシンR6は508 nmから600 nmに92 nm長波長シフトする。[ 10 ]
ショウジョウバエの眼のオプシンに加えて、ショウジョウバエにはさらに 2 つのオプシンがあります。単眼はオプシン Rh2 を発現し、[ 25 ] [ 26 ]紫色の光 (約 420 nm) を最大に吸収します。[ 26 ]また、オプシン Rh7 は、紫外線 (350 nm) を最大に吸収し、500 nm までの異常に長い波長の尾部を持ちます 。90 位のリジンをグルタミン酸に置換すると、長い尾部は消失します。この変異体は紫色の光 (450 nm) を最大に吸収します。[ 27 ]オプシン Rh7 は、クリプトクロムとともに、ショウジョウバエの概日リズムを中枢ペースメーカーニューロンの昼夜サイクルに同調させます。[ 28 ]
ショウジョウバエの各オプシンは、リジンを介してカロテノイド発色団11-cis-3-ヒドロキシレチナールに結合します。[ 29 ] [ 30 ]このリジンはほぼすべてのオプシンで保存されており、進化の過程で失われたオプシンはごくわずかです。[ 31 ]リジンを持たないオプシンは光感受性がありません。[ 32 ] [ 33 ] [ 34 ]特に、ショウジョウバエのオプシンRh1、Rh4、Rh7は、光受容体としてだけでなく、アリストロキア酸の化学受容体としても機能します。これらのオプシンは、他のオプシンと同様にリジンを持っています。しかし、Rh1でリジンがアルギニンに置き換えられると、Rh1は光感受性を失いますが、アリストロキア酸には反応します。したがって、Rh1が化学受容体として機能するためにリジンは必要ありません。[ 33 ]
脊椎動物の視覚と同様に、無脊椎動物の視覚伝達もGタンパク質共役経路を介して起こる。ただし、脊椎動物ではGタンパク質はトランスデューシンであるのに対し、無脊椎動物ではGq(ショウジョウバエではdgq )である。ロドプシン(Rh)が光子を吸収すると、その発色団である11-cis-3-ヒドロキシレチナールがall-trans-3-ヒドロキシレチナールに異性化する。Rhは立体構造変化を起こして活性型であるメタロドプシンになる。メタロドプシンはGqを活性化し、Gqは次にNorpAとして知られるホスホリパーゼCβ(PLCβ)を活性化する。[ 35 ]
PLCβは、細胞膜に存在するリン脂質であるホスファチジルイノシトール(4,5)-ビスリン酸(PIP 2)を加水分解して、可溶性のイノシトール三リン酸(IP 3)とジアシルグリセロール(DAG)に分解し、DAGは細胞膜に残ります。DAG、DAGの誘導体、またはPIP 2の枯渇により、一過性受容体電位(TRP)と呼ばれるカルシウム選択性イオンチャネルが開き、カルシウムとナトリウムが細胞内に流入します。[ 36 ] IP 3は、小胞体の延長であるサブラブドメリック槽のIP 3受容体に結合してカルシウムを放出すると考えられていますが、このプロセスは正常な視覚には必須ではないようです。[ 35 ]
カルシウムは、カルモジュリン(CaM)やInaCとして知られる眼特異的なプロテインキナーゼC (PKC)などのタンパク質に結合します。これらのタンパク質は他のタンパク質と相互作用し、光応答の停止に必要であることが示されています。さらに、アレスチンと呼ばれるタンパク質はメタロドプシンに結合し、Gqの活性化を阻害します。CalXとして知られるナトリウム-カルシウム交換体は、カルシウムを細胞外に排出します。これは、内向きのナトリウム勾配を利用して、 3 Na + / 1 Ca ++の化学量論比でカルシウムを排出します。[ 37 ]
TRP、InaC、およびPLCは、InaDと呼ばれる足場タンパク質に結合することでシグナル伝達複合体を形成する。InaDは、標的タンパク質のC末端に特異的に結合するPDZドメインタンパク質と呼ばれる5つの結合ドメインを含んでいる。PDZドメインまたは標的タンパク質のいずれかに突然変異が生じると、複合体が破壊され、シグナル伝達効率が低下する。例えば、プロテインキナーゼCであるInaCとInaDの相互作用が阻害されると、光応答の不活性化が遅れる。
脊椎動物のメタロドプシンとは異なり、無脊椎動物のメタロドプシンは、オレンジ色の光(580 nm)の光子を吸収することでロドプシンに変換することができる 。
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