歴史 分裂酵母( Schizosaccharomyces pombe)は 、1893年にドイツの醸造協会研究所で働いていたグループが、東アフリカから輸入されたキビビールに酸味を与える沈殿物を調べていたときに初めて発見されました。分裂を意味する「schizo」という用語は、それまで他の分裂酵母 を説明するために使用されていました。「pombe」という言葉が加えられたのは、東アフリカのビールから分離されたためで、スワヒリ語で「pombe」は「ビール」を意味します。標準的なS. pombe 株は、1946年と1947年にウルス・ロイポルドがオランダのデルフト の酵母コレクションから入手した培養物から分離されました。これは、A. オスターワルダーが1924年にスイスのヴェーデンスヴィル にある連邦ブドウ園芸試験場でフランスワイン(おそらく腐敗していた)から分離した後、S. pombe var. liquefaciensという 名前でそこに寄託したものです。ウルス・ロイポルドが使用した培養物には、(他のものに加えて)h90(株968)、h-(株972)、h+(株975)の接合型を持つ細胞が含まれていた。その後、果実、蜜、または発酵物からS. pombeを 分離する2つの大規模な取り組みが行われた。1つはフロレンツァーノら[ 13 ] によるシチリア島西部のブドウ畑での取り組み、もう1つはゴメスら(2002)によるブラジル南東部の4つの地域での取り組みである[ 14 ] 。
生態学 分裂酵母S. pombe は 、菌類の中で最も大きく多様なグループである子嚢菌 門に属します。自由生活性の子嚢菌は、樹木の滲出液、植物の根や周囲の土壌、熟した果実や腐った果実、そして基質間を運搬する昆虫 ベクターとの関連でよく見られます。これらの関係の多くは共生または腐生ですが、多くの子嚢菌(およびその担子菌類の近縁種)は、商業作物を含む無数の植物種を標的とする重要な植物病原体です。子嚢菌酵母属の中で、分裂酵母Schizosaccharomycesは、よく知られている β-グルカンに加えて 細胞壁 に α-(1,3)-グルカンまたはシュードニゲランを沈着させ、キチン をほとんど欠いている点で独特です。この属の種はマンナン組成も異なり、マンナンの側鎖に末端d-ガラクトース糖が見られます。S . pombeは 過剰な糖の存在下で好気性発酵 を行います。 [ 15 ] S. pombeはワインの主要な有機酸の1つであるL-リンゴ酸を分解することができ、他の Saccharomyces 株とは異なっています。
出芽酵母(Saccharomyces cerevisiae )との比較分裂酵母(Schizosaccharomyces pombe) と出芽酵母(Saccharomyces cerevisiae) はどちらも広く研究されており、これら2種は約3億~6億年前に分岐したと考えられています[ 16 ] 。これらは分子生物学および細胞生物学において重要なツールとなっています。これら2種の技術的な識別点としては、以下のようなものがあります。
S. cerevisiaeに は約5,600個のオープンリーディングフレーム があり、S. pombeに は約5,070個のオープンリーディングフレームがある。遺伝子の数は似ているにもかかわらず、S. cerevisiae に は約 250 個のイントロン しかないのに対し、S. pombe には約 5,000 個のイントロンがある。 S. cerevisiaeは 16 本の 染色体 を持ち、S. pombe は 3 本の染色体を持つ。S. cerevisiaeは 二倍体である ことが多いのに対し、S. pombe は通常一倍体で ある。S. pombeは シェルテリン 様テロメア 複合体を持つが、 S. cerevisiae は 持たない。[ 17 ] S. cerevisiaeは 細胞周期 のG1期に長期間留まる(その結果、G1-S期への移行は 厳密に制御される)のに対し、S. pombeは 細胞周期のG2期に長期間留まる(その結果、G2-M期への移行は厳密に制御される)。両種は、互いに共有していない高等真核生物と遺伝子を共有している。S . pombe は 脊椎動物と同様のRNAi 機構 遺伝子を持っているが、 S. cerevisiae にはこれがない。S . cerevisiaeは S. pombe に比べてヘテロクロマチンが 非常に単純化されている。[ 18 ] 逆に、S. cerevisiaeは ペルオキシソームが よく発達しているが、S. pombe にはない。 S. cerevisiaeは 125 bpの小さな点状セントロメア と、ほぼ同じサイズの配列定義複製起点を持つ。一方、S. pombeは 哺乳類のセントロメアにより近い、大きく反復配列を持つセントロメア(40 ~ 100 kb)と、少なくとも1 kbの退化した複製起点を持つ。
分裂酵母(S. pombe)の経路と細胞プロセス 分裂酵母( S. pombe )の遺伝子産物(タンパク質とRNA)は、あらゆる生命に共通する多くの細胞プロセスに関与している。分裂酵母GO slimは、分裂酵母 のすべての遺伝子産物の生物学的役割をカテゴリー別に高レベルで概観する。[ 8 ]
ライフサイクル 分裂酵母(S. pombe) の中心体 。分裂酵母は、ゲノムが単純で完全に特徴づけられており、増殖速度が速い単細胞真菌です。古くから醸造、製パン、分子遺伝学に利用されてきました。分裂酵母(S. pombe) は、直径約3μmの棒状細胞で 、両端の伸長によってのみ成長します。有糸分裂 後、細胞は隔壁(細胞板)の形成によって分裂し、細胞板が細胞の中央で分裂します。
細胞増殖の中心的な出来事は、S(合成)期に起こる染色体複製であり、それに続いて染色体分離 と核分裂(有糸分裂)、そして細胞分裂(細胞質分裂 )が起こり、これらを総称してM(有糸分裂)期と呼びます。G1期はM期とS期の間の期間であり、G2期もS期とM期の間の期間です。分裂酵母では、G2期が特に長く、新たなS(合成)期が始まるまで細胞質分裂(娘細胞の分離)は起こりません。
分裂酵母の分裂を示すカルコフルオアホワイト共焦点蛍光画像シリーズ 分裂酵母は、多細胞動物と同様のメカニズムで有糸分裂を制御します。通常は半数体状態で増殖します。飢餓状態になると、反対の接合型(PとM)の細胞が融合して二倍体の接合子を形成し、それがすぐに減数分裂に入り、4つの半数体胞子を生成します。条件が改善すると、これらの胞子が発芽して増殖する半数体細胞を生成します。[ 19 ]
細胞分裂 分裂酵母の細胞質分裂。 細胞質分裂の一般的な特徴をここに示します。細胞分裂の場所は後期に入る前に決定されます。その後、後期紡錘体(図中の緑色の部分)が、分離した染色体があらかじめ定められた分裂面の両側に位置するように配置されます。
サイズコントロール 分裂酵母の細胞周期の長さは、栄養状態に依存する。 分裂酵母では、成長がG2/M期の進行を制御しているが、wee1 変異は異常に小さいサイズで有糸分裂に入り、結果としてG2期が短くなる。G1期は長くなるため、G2/M期の制御が失われた場合、Start期(細胞周期の開始)の進行は成長に反応することを示唆している。さらに、栄養状態の悪い細胞は成長が遅く、そのためサイズが2倍になり分裂するのに時間がかかる。栄養レベルが低いと成長閾値もリセットされ、細胞はより小さなサイズで細胞周期を進む。ストレス条件[熱(40 ℃)または酸化剤過酸化水素]にさらされると、S. pombe 細胞は細胞分裂時間の増加と細胞死の確率の増加によって測定されるように老化する。 [ 20 ] 最後に、wee1変異分裂酵母細胞は野生型細胞よりも小さいが、細胞周期を通過するのにかかる時間は同じである。これは、小さな酵母細胞は成長が遅い、つまり単位時間あたりに付加される総質量が正常細胞よりも小さいためである。
分裂酵母では 、空間勾配が細胞サイズと有糸分裂への移行を調整すると考えられている。[ 21 ] [ 22 ] [ 23 ] Pom1タンパク質キナーゼ(緑色)は細胞皮質に局在し、細胞先端で最も濃度が高い。細胞周期調節因子Cdr2、Cdr1、Wee1は、細胞中央の皮質ノード(青と赤の点)に存在する。a、小さな細胞では、Pom1 勾配がほとんどの皮質ノード(青の点)に到達する。Pom1は Cdr2を阻害し、Cdr2とCdr1がWee1を阻害するのを防ぎ、Wee1がCdk1をリン酸化できるようにし、サイクリン依存性キナーゼ(CDK)活性を不活性化して有糸分裂への移行を防ぐ。b、長い細胞では、Pom1 勾配は皮質ノード(赤の点)に到達しないため、Cdr2とCdr1はノードで活性のままである。 Cdr2とCdr1はWee1を阻害し、Cdk1のリン酸化を阻害することでCDKの活性化と有糸分裂への移行を阻止する。(この簡略化された図では、CDK活性の他のいくつかの調節因子は省略されている。)
交配型転換 分裂酵母は、細胞周期のS期に起こる複製連動組換えイベントによって接合型を切り替えます。分裂酵母は、DNA複製プロセスの固有の非対称性を利用して接合型を切り替えます。これは、複製方向が細胞型の変化に必要であることが示された最初のシステムでした。接合型切り替えシステムの研究により、部位特異的複製終結部位RTS1、部位特異的複製一時停止部位MPS1、および接合型遺伝子座mat1の姉妹染色分体の1つをマークする新しいタイプの染色体インプリントが発見され、特徴付けられました。さらに、サイレンシングされたドナー領域の研究により、ヘテロクロマチンの形成と維持の理解が大きく進展しました。[ 24 ]
DNA損傷に対する反応 分裂菌(Schizosaccharomyces pombe) は、栄養が制限されている場合に交配を行うことができる任意有性微生物である。[ 25 ] 酸化ストレスを引き起こし、酸化 DNA損傷 につながる薬剤である過酸化水素にS. pombe を曝露すると、交配 と減数分裂胞子の形成が強く誘導される。[ 26 ] この発見は、減数分裂、特に減数分裂組換えが、DNA損傷を修復するための適応である可能性を示唆している。[ 26 ] この見解を裏付けるものとして、 S. pombe のDNA中のdU:dG型の単一塩基病変が減数分裂組換えを刺激するという発見がある。[ 27 ] この組換えには、DNA骨格からウラシルを除去し、塩基除去修復を開始する酵素であるウラシル-DNAグリコシラーゼが 必要である。この発見に基づき、ウラシル塩基、ア塩基部位、または一本鎖ニックのいずれかの塩基除去修復がS. pombeにおける組換えの 開始に十分であると提唱された。[ 27 ] S. pombe を用いた他の実験では、DNA複製中間体、すなわち岡崎フラグメント の処理の不備が一本鎖ニックやギャップなどのDNA損傷を引き起こし、これらが減数分裂組換えを刺激することが示された。[ 28 ]
モデルシステムとして 分裂酵母は、哺乳類、特にヒトのようなより複雑な生物を理解するために使用できる細胞の基本原理を研究するための注目すべきモデルシステムとなっています。[ 29 ] [ 30 ] この単細胞真核生物は非病原性で、実験室で簡単に培養および操作できます。[ 31 ] [ 32 ] 分裂酵母は、真核生物の既知のゲノム配列の中で最も少ない数の遺伝子を持ち、ゲノムには3つの染色体しかありません。[ 33 ] 分裂酵母細胞の細胞分裂と細胞組織化に関与する遺伝子の多くは、ヒトのゲノムにも見られます。[ 31 ] [ 32 ] [ 34 ] 細胞周期制御と分裂は、あらゆる細胞の成長と発達に不可欠です。分裂酵母の保存遺伝子は集中的に研究されており、最近の多くの生物医学的発展の理由となっています。[ 35 ] [ 36 ] 分裂酵母は、細胞分裂を観察するための実用的なモデルシステムでもあります。分裂酵母は円筒形の単細胞真核生物で、中央分裂によって分裂および増殖します。[ 31 ] これは顕微鏡を使用して簡単に観察できます。分裂酵母は世代時間が2~4時間と非常に短いため、実験室で観察および培養しやすいモデルシステムでもあります。[ 32 ] 分裂酵母のゲノム構造の単純さ、哺乳類のゲノムとの類似性、操作の容易さ、および薬剤分析に使用できる能力が、分裂酵母が生物医学および細胞生物学の研究に多くの貢献をし、遺伝子分析のモデルシステムとなっている理由です。[ 32 ] [ 25 ] [ 30 ] [ 37 ] [ 38 ]
ゲノム 分裂酵母(Schizosaccharomyces pombe) は、ヘテロクロマチンタンパク質、大きな複製起点、大きなセントロメア、保存された細胞チェックポイント、テロメア機能、遺伝子スプライシング、その他多くの細胞プロセスなど、ヒトにも見られる保存されたゲノム領域があるため、細胞分裂と成長の研究によく使用されます。[ 33 ] [ 39 ] [ 40 ] S. pombe の ゲノムは2002年に完全に配列決定され、ゲノムプロジェクトの一環として配列決定された6番目の真核生物ゲノムとなりました。約14MbのDNAを含む3つの染色体内に推定4,979個の遺伝子が発見されました。このDNAは、セントロメア(40kb)とテロメア(260kb)領域にギャップがある核内の3つの異なる染色体内に含まれています。[ 33 ] 分裂酵母のゲノムの最初の配列決定後、これまで配列決定されていなかった遺伝子の他の領域も配列決定されました。これらの遺伝子領域の構造および機能解析は、 PomBase などの大規模な分裂酵母データベースで見つけることができます。
ゲノムプロジェクトの遺伝子の43%は、4,739個の遺伝子にイントロンが含まれていることがわかった。分裂酵母は出芽酵母に比べて重複遺伝子が少なく、わずか5%しか含まれていないため、分裂酵母は観察に適したモデルゲノムであり、研究者はより機能的な研究アプローチを作成することができる。S . pombe は 多数のイントロンを持つため、代替スプライシングによって生成されるタンパク質の種類や、ヒトの類似遺伝子をコードする遺伝子の範囲が拡大する機会がある。[ 33 ] 分裂酵母の3つのセントロメアの81%が配列決定されている。3つのセントロメアの長さは、34、65、110 kbであることがわかった。これは出芽酵母のセントロメアの300~100倍の長さである。セントロメアの DGS 領域の 1,780 bp 領域全体にわたって極めて高いレベルの保存 (97%) が見られる。セントロメアのこの伸長と保存配列により、分裂酵母は細胞分裂を観察するための実用的なモデルシステムとなり、ヒトではその類似性から使用されている。[ 33 ] [ 41 ] [ 42 ]
PomBase [ 43 ] によると、タンパク質をコードする遺伝子の 70% 以上がヒトのオルソログを持ち、そのうち 1500 以上がヒトの疾患に関連している。このため、S. pombe は ヒトの遺伝子や疾患経路、特に細胞周期や DNA チェックポイント システムを研究するための優れたシステムとなっている。[ 42 ] [ 44 ] [ 45 ] [ 46 ]
S. pombe のゲノムには、wtf遺伝子と呼ばれる減数分裂促進因子 と抑制因子が含まれている。 [ 47 ]
遺伝的多様性 分裂酵母の生物多様性と進化の研究は、 20か国から収集された161株のSchizosaccharomyces pombe で行われた。 [ 48 ] 進化速度のモデリングにより、すべての株が約2,300年前から生きていた共通の祖先から派生したことが示された。この研究では、それぞれ1,900以上のSNPで異なる57株の分裂酵母も特定され、[ 48 ] 検出された57株の分裂酵母はすべて栄養要求性なし(参照株と同じ最小培地で生育可能)であった。[ 48 ] S.pombeゲノムに関する多くの研究は、分裂酵母株の遺伝的多様性は出芽酵母よりわずかに少ないという考えを支持している。[ 48 ] 実際、異なる環境での増殖においてS.pombeの変異は限られている。さらに、分裂酵母で分離する表現型の変異の量は、S. cerevisiae で見られるものよりも少ない。[ 49 ] 分裂酵母のほとんどの株は醸造飲料から分離されたため、この拡散には生態学的または歴史的な文脈はない。
細胞周期解析 酵母におけるDNA複製は、多くの研究者によってますます研究されている。酵母におけるDNA複製、遺伝子発現、および保存されたメカニズムのさらなる理解は、研究者に、これらのシステムが一般的に哺乳類細胞、特にヒト細胞でどのように機能するかについての情報を提供することができる。[ 40 ] [ 50 ] [ 51 ] [ 52 ] 細胞の成長や老化などの他の段階も、より複雑なシステムにおけるこれらのメカニズムを理解するために酵母で観察されている。[ 34 ] [ 53 ] [ 54 ] [ 55 ]
分裂酵母(S. pombe) の定常期細胞は、DNA損傷を 引き起こす活性酸素種 の産生により、経時的な老化を起こします。このような損傷のほとんどは、通常、DNA 塩基除去修復 とヌクレオチド除去修復 によって修復されます。[ 56 ] これらの修復プロセスに欠陥があると、生存率が低下します。
細胞質分裂は、分裂酵母でよく観察される細胞分裂の構成要素の 1 つです。細胞質分裂のよく保存された構成要素は分裂酵母で観察され、さまざまなゲノムシナリオを調べて変異を特定することができます。[ 45 ] [ 57 ] [ 58 ] 細胞質分裂は恒久的なステップであり、細胞の健全性にとって非常に重要です。[ 59 ] 特に収縮環の形成は、モデルシステムとしてS. pombe を使用する研究者によって盛んに研究されています。収縮環は、分裂酵母とヒトの細胞質分裂の両方で高度に保存されています。[ 45 ] 細胞質分裂の変異は、細胞死や癌細胞の発生など、細胞の多くの機能不全を引き起こす可能性があります。[ 45 ] これはヒトの細胞分裂では複雑なプロセスですが、S. pombe ではより単純な実験で、ヒトなどのより高次のモデルシステムでの研究に適用できる結果が得られます。
細胞が正確な細胞分裂を確実に行うために講じる安全対策の 1 つは、細胞周期チェックポイントです。[ 60 ] [ 61 ] これらのチェックポイントは、あらゆる変異原が排除されることを保証します。[ 62 ] これは多くの場合、標的のユビキチン化を刺激し、細胞質分裂を遅らせるリレー シグナルによって行われます。[ 33 ] このような有糸分裂チェックポイントがないと、変異原が生成されて複製され、細胞死や癌細胞に見られる腫瘍形成など、多数の細胞の問題を引き起こします。ポール ナース、リーランド ハートウェル、ティム ハントは、2001 年にノーベル生理学・医学賞を受賞しました。彼らは、細胞が適切に分裂するために不可欠な重要な保存されたチェックポイントを発見しました。これらの発見は癌や病気の細胞と関連付けられており、生物医学にとって注目すべき発見です。[ 63 ]
分裂酵母をモデルシステムとして用いる研究者は、オルガネラの動態や応答、酵母細胞と哺乳類細胞間の相関関係の可能性についても調べている。[ 64 ] [ 65 ] 分裂酵母の染色体動態やタンパク質発現レベル、調節を観察することで、ミトコンドリア疾患やゴルジ体、小胞体などの様々なオルガネラシステムについてさらに理解を深めることができる。[ 46 ] [ 51 ] [ 66 ] [ 67 ] [ 68 ] [ 69 ]
しかし、分裂酵母をモデルシステムとして使用することには限界がある。それは多剤耐性である。「MDR応答には、2種類の薬剤排出ポンプ、ATP結合カセット(ABC)ファミリーと主要促進因子スーパーファミリーの過剰発現が関与している」[ 35 ] 。ポール・ナースと彼の同僚たちは最近、化学阻害剤と一般的なプローブに感受性のあるS. pombe 株を作成し、分裂酵母を化学薬研究のモデルシステムとして使用できるかどうかを調べている。[ 35 ]
例えば、非常に一般的な化学療法薬であるドキソルビシンには多くの副作用があります。研究者たちは、分裂酵母をモデル系として用いて耐性に関連する遺伝子を観察することで、ドキソルビシンの作用機序をさらに理解する方法を模索しています。ドキソルビシンの副作用と染色体代謝および膜輸送との関連性が明らかになりました。現在、バイオテクノロジーでは薬物標的化のための代謝モデルが利用されており、分裂酵母モデル系を用いた今後のさらなる進歩が期待されています。[ 36 ]
実験的アプローチ 分裂酵母は入手しやすく、培養や変異体作製のための操作も容易で、一倍体または二倍体のどちらの状態でも維持できる。S . pombe は通常一倍体細胞であるが、窒素欠乏などのストレス条件下に置かれると、2 つの細胞が接合して二倍体を形成し、その後、四分子子嚢内に 4 つの胞子を形成する。[ 32 ] このプロセスはどの顕微鏡でも容易に観察でき、この現象がどのように機能するかを見るために、より単純なモデルシステムで減数分裂を観察することができる。
したがって、テトラッド解剖、変異原分析、形質転換、FRAPやFRETなどの顕微鏡技術など、事実上あらゆる遺伝学実験や技術をこのモデルシステムに適用できます。Tug-Of-War (gTOW) などの新しいモデルも、酵母の頑健性を分析し、遺伝子発現を観察するために使用されています。ノックインおよびノックアウト遺伝子の作成は比較的簡単で、分裂酵母のゲノムが配列決定されているため、この作業は非常にアクセスしやすく、よく知られています。[ 75 ] [ 76 ]
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外部リンク PomBase — 分裂酵母ゲノムデータベース MicrobeWikiのSchizosaccharomyces pombe に関するページ