
円二色性( CD ) は、円偏光を含む二色性、すなわち左円偏光と右円偏光の吸収差です。[ 1 ] [ 2 ]左円偏光 (LHC) と右円偏光 (RHC) は、光子の可能な 2 つのスピン角運動量状態を表すため、円二色性はスピン角運動量の二色性とも呼ばれます。[ 3 ]この現象は、19 世紀前半にジャン=バティスト・ビオ、オーギュスタン・フレネル、エメ・コットン によって発見されました。 [ 4 ]円二色性と円複屈折は、光学活性の現れです。これは、光学活性キラル分子の吸収帯で現れます。CD分光法は、さまざまな分野で幅広い用途があります。特に、遠紫外CD は、タンパク質の二次構造を調査するために使用されます。[ 5 ] UV/Vis CD は、電荷移動遷移を調査するために使用されます。[ 6 ]近赤外CDは、金属d → d遷移をプローブすることで幾何構造と電子構造を調べるために用いられる。[ 2 ]赤外エネルギー領域からの光を用いる振動円二色性は、小さな有機分子、そして最近ではタンパク質やDNAの構造研究に用いられる。[ 5 ]
電磁放射は電気的な磁気互いに垂直で伝搬方向にも垂直に振動する電場、すなわち横波。[ 7 ]直線偏光は電場ベクトルが1つの平面内でのみ振動する場合に発生するが、円偏光は電場ベクトルの方向が伝搬方向を中心に回転し、ベクトルの大きさが一定のままの場合に発生する。空間内の1点において、円偏光ベクトルは波の周波数の1周期にわたって円を描くため、この名前が付けられている。下の2つの図は、ある瞬間の直線偏光と円偏光の電場ベクトルを、さまざまな位置について示している。円偏光の電場ベクトルのプロットは、伝搬方向に沿ってらせんを形成する。左円偏光(LCP)が観測者に向かって伝搬する場合、電場ベクトルは反時計回りに回転します。[ 2 ]右円偏光(RCP)の場合、電場ベクトルは時計回りに回転します。


円偏光が吸収性の光学活性媒体を通過するとき、右偏光と左偏光の速度は異なる()波長()そしてそれらが吸収される程度()円偏光二色性とは、[ 5 ]光線の電場は分子と相互作用する際に電荷の直線的な変位(電気双極子)を引き起こし、一方、磁場は電荷の循環(磁気双極子)を引き起こします。これら2つの運動が組み合わさることで、電子はらせん運動で励起され、これには並進運動と回転運動、およびそれらに関連する演算子が含まれます。回転強度と実験的に決定された関係サンプルとは
回転強度も理論的に決定されており、
これら2つの式から、ゼロでないためには電気双極子モーメント演算子と磁気双極子モーメント演算子(そして) は同じ既約表現として変換されなければならない。そしてこれらが起こり得る唯一の点群であるため、キラル分子のみがCD活性を示す。
簡単に言うと、円偏光自体が「キラル」であるため、キラル分子との相互作用が異なります。つまり、2種類の円偏光は吸収される度合いが異なります。CD実験では、選択した波長の左円偏光と右円偏光を等量ずつ交互に(キラル)試料に照射します。2つの偏光のうち一方が他方よりも多く吸収され、この波長依存的な吸収差を測定することで、試料のCDスペクトルが得られます。分子との相互作用により、光の電場ベクトルは試料を通過した後に楕円軌道を描きます。
分子のキラリティが構造的なものではなく、立体配座的なものであることが重要である。つまり、例えば、らせん状の二次構造を持つタンパク質分子は、立体配座の変化に伴って円偏光二色性(CD)スペクトルが変化する可能性がある。
定義により、
どこ(デルタ吸光度)とは、左円偏光(LCP)光と右円偏光(RCP)光の吸光度の差のことです(通常測定されるのはこの差です)。は波長の関数であるため、測定が意味を持つためには、測定が行われた波長を知る必要がある。
ビールの法則を適用すると、次のように表すこともできます。
どこ
それから
これはモル円二色性です。この固有の性質は、通常、物質の円二色性と呼ばれるものです。は波長の関数であり、モル円二色性値() 有効な波長を指定する必要があります。
後述するように、円偏光二色性(CD)の多くの実用的な応用において、測定されるCDは単に分子固有の性質ではなく、分子の立体配座に依存します。このような場合、CDは温度、濃度、溶媒を含む化学環境の関数にもなり得ます。この場合、報告されるCD値は、意味のある値とするために、これらの他の関連要因も明記する必要があります。
2 回回転対称性を持たない規則的な構造では、円偏光波の差動透過[ 10 ] (および反射[ 11 ] ) を含む光学活性[ 8 ] [ 9 ]も、材料を通過する伝搬方向に依存します。この場合、いわゆる外因性 3 次元キラリティは、光ビームと構造の相互の向きに関連しています。
それでも通常は測定されますが、歴史的な理由から、ほとんどの測定値は楕円率の度数で報告されます。モル楕円率は、濃度で補正された円二色性です。モル円二色性とモル楕円率、は、次の式によって容易に相互変換されます。

この関係は、偏光の楕円率を次のように定義することによって導き出される。
どこ
いつ等しい(右円偏光と左円偏光の吸光度に差がない場合)は 0° で、光は直線偏光です。または(円偏光が一方向で完全に吸収される場合)はゼロに等しい。角度は45°で、光は円偏光している。
一般的に、円偏光二色性効果は小さいため、は小さく、次のように近似できます。ラジアンで。強度または放射照度なので、光の散乱は電場ベクトルの二乗に比例するため、楕円率は次のようになる。
楕円率は次のように表すことができます。
以来この式は、指数関数をテイラー級数で一次まで展開し、その後、次の項を破棄することで近似できます。1と比較し、ラジアンから度数に変換する場合:
溶質濃度と経路長の線形依存性は、モル楕円率を次のように定義することによって除去される。
そして、最後の2つの式をベールの法則と組み合わせると、モル楕円率は次のようになる。
モル楕円率の単位は、歴史的に(deg·cm²/dmol)です。モル楕円率を計算するには、試料濃度(g/L)、セル光路長(cm)、および分子量(g/mol)を知る必要があります。
試料がタンパク質の場合、分子量の代わりに平均残基重量(含まれるアミノ酸残基の平均分子量)が用いられることが多く、これは実質的にタンパク質をアミノ酸溶液として扱うことを意味します。平均残基楕円率を用いることで、分子量の異なるタンパク質の円偏光二色性(CD)スペクトルを比較することが容易になります。この正規化されたCDスペクトルは、タンパク質構造の研究において重要です。
ポリマー、特にタンパク質やポリペプチドの二次構造を推定する方法では、測定されたモル楕円率スペクトルを正規化値、具体的にはポリマーの長さに依存しない値に変換する必要がある場合が多い。この目的のために平均残基楕円率が用いられる。これは、分子の測定されたモル楕円率を分子中のモノマー単位(残基)の数で割った値である。

円偏光二色性(CD)分光法は、生物物理学および生化学研究において強力なツールであり、生体分子の構造特性と安定性に関する独自の知見を提供します。CDは、光学活性分子による左円偏光と右円偏光の吸収差によって生じるため、生体高分子のキラル性に対して本質的に敏感です。このため、タンパク質のαヘリックスやβシート、核酸の二重らせんに見られる特徴的なCDスペクトルシグネチャに見られるように、二次構造の解析に特に有用です。X線結晶構造解析、NMR、クライオ電子顕微鏡などの高分解能技術は原子レベルの構造の詳細を明らかにし、ITCやSPRなどの相互作用に基づく手法は分子間相互作用をプローブしますが、CD分光法は構造変化や安定性シフトを迅速かつラベルフリーで検出する手段を提供します。相補的なデータを提供できることから、CD分光法は現代の生物物理学ツールボックスに不可欠な要素であり、生体分子研究のほぼすべての分野に応用されています。円偏光二色性(CD)分光法は、生体分子、特にタンパク質やペプチドの研究において、学術界やバイオ医薬品業界で広く用いられている。CDスペクトルは、二次構造と三次構造の両方に関する貴重な知見を提供する。
二次構造情報は、遠紫外領域(約 180 nm ~ 260 nm)で吸収するペプチド結合から生じるシグナルから得られ、 α ヘリックス、β シート、β ターン、ランダムコイル などの構造要素の識別と部分的な割り当てを可能にします。[ 13 ] [ 14 ] [ 15 ] [ 16 ]これらの構造割り当ては、タンパク質が取り得る二次コンフォメーションに重要な制約を与えます。CD は一般的に、検出された α ヘリックスが分子内のどこにあるか、あるいはいくつあるかを完全に予測することさえできません。それにもかかわらず、CD は、特にコンフォメーションの変化を示すための貴重なツールです。たとえば、温度(熱変性温度ランプ実験)または変性剤の濃度(化学変性実験)、たとえば塩化グアニジンや尿素の関数として、分子の二次構造がどのように変化するかを研究するために使用できます。このようにして、分子に関する重要な熱力学的情報(変性のエンタルピーやギブズ自由エネルギーなど)を明らかにすることができ、これは他の方法では容易に得られません。タンパク質を研究しようとする人は誰でも、CDが、タンパク質を用いた大規模かつ/または高価な実験を行う前に、タンパク質が天然の立体構造にあることを確認するための貴重なツール(つまり、品質管理技術として)であることに気づくでしょう。さらに、CD分光法は生体無機界面の研究にも使用されており、具体的には、試薬による滴定の前後の人工タンパク質の二次構造の違いを分析するために使用されています。[ 17 ]
三次構造に関する知見は、近紫外領域(約250 nm~350 nm)で吸収を示す芳香族アミノ酸のスペクトル寄与から得られる。この領域で得られるシグナルは、フェニルアラニン、チロシン、システイン(またはSSジスルフィド結合)、およびトリプトファンアミノ酸の吸収、双極子モーメントの配向、および周囲環境の性質に起因する。遠紫外CDとは異なり、近紫外CDスペクトルは特定の3D構造に帰属させることはできない。むしろ、近紫外領域は、そのスペクトルプロファイルが芳香族残基の組成、および側鎖のコンフォメーションと環境に極めて依存するため、指紋領域とみなすことができる。
可視円偏光二色性(CD)スペクトル(約350 nmから700 nmの範囲)は、タンパク質中の補欠分子族の性質に関する構造情報を提供します。例えば、ヘモグロビンやシトクロムcのヘム基などです。可視CD分光法は、金属とタンパク質の相互作用を研究するための非常に強力な技術であり、個々のd-d電子遷移を別々のバンドとして分離することができます。可視光領域のCDスペクトルは、一般的に金属イオンがキラル環境にある場合にのみ生成されるため、溶液中の遊離金属イオンは検出されません。この利点は、タンパク質に結合した金属のみを観察できるため、pH依存性や化学量論を容易に得ることができることです。遷移金属イオン錯体の光学活性は、配置効果、配座効果、および近接効果に起因すると考えられています。 KlewpatinondとViles(2007)は、ヒスチジンと主鎖配位を含むCu(II)およびNi(II)正方形平面錯体の可視CDスペクトルの出現を予測するための一連の経験則を作成した。[ 18 ]
タンパク質やペプチド以外にも、UV-CD分光法は核酸の二次構造を特徴づける強力なツールであり、DNAヘリックスやG-四重鎖などのRNA構造モチーフに関する知見を提供します。A-DNA、B-DNA、Z-DNAといった異なるDNAコンフォメーションは、塩基スタッキングやヘリックス形状の変動により、それぞれ異なるCDスペクトル特性を示します。[ 19 ] [ 20 ]同様に、ステムループ、擬似ノット、G-四重鎖などのRNA構造は、その特有の折り畳みパターンや塩基相互作用を反映した独自のCDスペクトルを生成します。特にG-四重鎖は、そのトポロジー(平行、逆平行、またはハイブリッド)に応じて、CDスペクトルに特徴的な正および負のバンドを示します。[ 21 ]これらのスペクトル特性により、UV-CDは核酸の折り畳み、安定性、およびリガンドとの相互作用を研究するための不可欠な技術となっています。
円偏光二色性(CD)分光法は、例えば原子分解能のデータが得られるX線結晶構造解析やタンパク質NMR分光法に比べて、構造に関する詳細な情報は得られません。しかし、CD分光法は、大量のタンパク質や複雑なデータ処理を必要としない迅速な方法です。そのため、CD分光法は、様々な溶媒条件、温度、pH、塩濃度、および様々な補因子の存在を調べるために使用できます。
CD分光法は通常、溶液中のタンパク質の研究に用いられ、固体状態を研究する手法を補完するものである。しかし、多くのタンパク質は天然状態では膜に埋め込まれており、膜構造を含む溶液は散乱が強い場合が多いため、これは限界でもある。CDは薄膜や粉末でも測定できる。例えば、TiO2などの固体半導体材料に対してCD分光法を実施し、生体分子の電子遷移がしばしば起こるUV波長領域で大きな信号を得ている。[ 22 ]
最新のタンパク質円偏光二色性(CD)分光法は、二次構造および三次構造の比較分析、一般に高次構造(HOS)比較と呼ばれる分析において最も強力なツールです。例えば、バイオ医薬品のバッチ間一貫性の評価、突然変異の影響の評価、親タンパク質に対する電荷変異体や糖鎖変異体の特性の研究などが挙げられます。HOS分析は、製剤添加物、pH、イオン強度がタンパク質の立体構造に及ぼす影響を研究する上でも非常に効果的です。
HOS比較は幅広い用途があり、初期段階の分析評価から後期段階の品質管理、製剤開発から強制分解による保存安定性評価まで、バイオ医薬品開発のあらゆる段階で重要な役割を果たします。
高次構造比較では、遠紫外域と近紫外域の両方の波長範囲を活用することで、統計的に堅牢で再現性があり、定量化可能なデータ分析が可能になります。高次構造比較では、2つのスペクトルが異なるかどうか、ひいてはその根底にある構造情報が異なるかどうかを定量的に評価します。これは、目視検査では困難、あるいは不可能な場合が多いです。これらの微妙な違いを検出するには、複数の独立したスペクトルと堅牢な統計分析が必要です。なぜなら、多くの変動は小さすぎて目視では判別できないからです。

HOS比較にはさまざまなアプローチがあり、文献には多数のスペクトル比較方法が記載されていますが、HOS比較方法やアプリケーションに関係なく、すべての方法はペアワイズスペクトル比較の類似性の尺度として単一の値を得るという同じ目標を持つ数学的アプローチです。そのような方法の1つが加重スペクトル差(WSD)法であり、これは多くのバイオ医薬品会社や規制当局が好むHOS比較方法です。[ 23 ] [ 24 ]
過去 10 年間、HOS 比較は、新規バイオ医薬品申請の提出書類における CD データを統合するための重要なツールとして確立されてきました。特にバイオシミラーの開発においては、HOS 比較は FDA、EMA、およびその他の規制機関の要件を満たすために不可欠です。このガイダンスの根拠は、一般に入手可能な治療薬の安全性、品質、および有効性を規制および管理することです。[ 25 ]
円偏光二色性(CD)分光法における蛍光測定は、入射光に対して90度の角度で記録され、タンパク質の安定性や構造変化に関する追加的な知見を提供する補完的なデータチャネルとしてしばしば機能します。トリプトファンやチロシンなどの芳香族残基からの固有蛍光を検出することで、研究者は構造変化に伴う環境変化を評価できます。蛍光データは、特に温度上昇実験において、CD信号と同時に取得することができ、発光強度や波長シフトの変化を追跡することで、タンパク質の展開過程を監視するのに役立ちます。このプロセスは 、例えば、 1分あたり1℃の速度で温度を連続的に上昇させながら、1℃間隔でCDスペクトルを記録することによって追跡できます。蛍光スペクトルに必要な励起帯域幅は、通常、CD測定で使用されるスペクトル帯域幅よりも大きいため、CD測定と蛍光測定で異なるスペクトル帯域幅を使用する必要がある場合があります。この二重アプローチにより、さまざまな条件下でのタンパク質の挙動の解釈が強化され、構造および安定性評価の信頼性が向上します。
蛍光データを収集する方法は複数あり、光電子増倍管(PMT)を用いて全蛍光を記録する方法、CCD蛍光光度計を用いて全スペクトル蛍光を記録する方法、または走査型発光分光器(SEM)を用いて一定の励起波長で蛍光スペクトルを走査する方法などがある。
CDは旋光分散(ORD)の技術と密接に関連しています。旋光とは、直線偏光が光学活性物質を通過する際に回転する現象であり、光の左円偏光成分と右円偏光成分の屈折率の差によって生じます(直線偏光は右円偏光と左円偏光の等しい組み合わせと考えることができます)。旋光分散とは、波長による旋光の変化のことです。ORDスペクトルとCDスペクトルはどちらも、偏光(円偏光または直線偏光)とキラル分子との相互作用から生じ、直接関連しています。それぞれは、クラマース・クローニッヒ変換を用いて互いに導出できます。ORDとCDの測定は基本的に同じ情報を提供しますが、実験的にはそれぞれの技術が特定の用途で好まれています。CDは、キラル分子が光を吸収する波長でのみ観測されるため、より高分解能の技術です。これにより、複数の吸収帯を含む複雑なスペクトルの解釈が容易になります。一方、ORD測定は、測定対象のキラル分子が必ずしも光を吸収しない波長で取得できます。これは、ORD測定は高濃度の物質や、溶媒や緩衝塩の吸収によって吸収帯が隠されている物質に対しても実施できることを意味します。ORDは、特に非置換糖類に有効です。なぜなら、この種の生体分子は、市販のCD測定装置で測定可能なUV-Vis領域に吸収を持つ発色団を持たないからです。
適切なアクセサリを使用すれば、CD分光光度計で線形二色性(LD)測定を行うことができます。線形二色性とは、配向軸に平行および垂直に偏光した光の吸光度の差のことです。
ΔA = A para - A perp
ここで、Aは直線偏光の吸光度であり、添え字はそれぞれ平行偏光と垂直偏光を示します。サンプルがゼロでないLDを持つためには、異方性である必要があります。異方性は、例えば液晶のように固有のものである場合もあれば、例えばポリマーフィルムの延伸、電場の印加、またはせん断場における配向や変形(例えばDNAなどの核酸)によって誘発される場合もあります。
LD装置は、クエットセルを用いてせん断場を生成する。試料は、同心円状の2つの石英円筒間の環状ギャップに収容され、外側の円筒(ローター)は円筒軸を中心に回転し、内側の円筒(ステーター)は固定されている。この構造は、考案者であるモーリス・クエットにちなんで名付けられた。
せん断によって、液体中の大きな粒子が整列したり変形したりすることがあります。例えば、カーボンナノチューブやガラス繊維のような剛性の高い棒状粒子は整列しますが、小胞、ミセル、柔軟なポリマーは平衡構造から変形し、せん断方向に伸びます。線形二色性を用いることで、吸収された発色団における正味の電子移動の方向をせん断方向に対して決定し、それによって吸収種の整列方向、あるいはその周囲の変形方向を特定することができます。
LDとその測定に関する詳細については、本書を参照してください。[ 26 ]
磁気円二色性(MCD)とは、光の伝搬方向と平行な磁場が存在する状況下で、左円偏光と右円偏光の吸収率が異なる現象である。MCDは、キラルな試料を必要としない点で自然界の円二色性(CD)とは異なり、CDとMCDの起源は大きく異なる。
MCDスペクトルには、A項、B項、C項と呼ばれる3つの成分が寄与している。室温では、特に非磁性発色団の場合、A項とB項が支配的であり、標準的なMCD実験で観測できるスペクトルの大部分を占める。
A項は、スピンの差による縮退励起状態のゼーマン分裂によって生じます。その結果、各スピン状態の紫外可視スペクトルの波長にわずかなずれが生じ、それぞれの状態が左円偏光または右円偏光を優先的に吸収します。A項MCDスペクトルは、吸収ピーク付近に鋭い遷移を持つ吸収遷移の微分として観測されます。A項バンドが存在するため、MCDスペクトルは吸収スペクトルや自然CDスペクトルよりも構造が明確になり、複数の重なり合う発色団をより容易に定量化でき、個々の発色団の変化を追跡することが可能になります。
B項は、非縮退基底状態の混合によって生じる。通常は単一の吸収帯ピークとして観測され、その値は正または負のいずれかとなる。
C項は、常磁性基底状態の磁場に対する応答によって、ゼーマン準位上の分子の分布が変化することに起因する。C項は極低温でのみMCDスペクトルにおいて顕著になり、高磁場強度と極低温という装置要件は、関連技術である電子常磁性共鳴(EPR)の要件と非常によく似ている。これは高価で専用のシステムであり、したがって、卓上型CD装置の容易に交換可能なMCDアクセサリでC項を測定できる範囲を超えている。
MCDデータの収集方法は、磁石の向きが2種類あり、検出器に近い方が北極か南極かという点を除けば、自然CDの収集方法と似ています。通常、磁石をそれぞれの向きにしてスペクトルを取得します。磁場が反転するとスペクトルへのMCD成分の寄与は符号が変わりますが、自然CD成分の寄与は符号が変わらないため、2つのスペクトルを平均化することで両方の寄与を得ることができます。
MCDに関する詳細については、本書を参照してください。[ 27 ]
円偏光発光(CPL)は、円偏光二色性(CD)の発光版です。CDは分子の基底状態における構造を調べるのに対し、CPLは通常、入射光ビームに対して垂直に観測され、分子の励起状態または発光状態における構造に関する情報を提供します。CPL実験では、放出された光に含まれる左円偏光と右円偏光の含有量を分析します。
左円偏光と右円偏光の放射光の強度差ΔIは、次式で与えられる。
ΔI = I L – I R
ここで、I LとI R はそれぞれ左円偏光と右円偏光の発光強度である。平均発光強度は次式で与えられる。
I = ( I L + I R ) / 2
ΔIとIはどちらも相対単位です。これは、発光実験ではすべての発光が検出されるわけではなく、限られた立体角内の発光のみが検出されるためです。さらに、発光分子の濃度の絶対値を得ることは困難な場合があります。これらの理由から、発光における非対称性因子は次のように定義されます。
g lum = Δ I / I
ここで、g lumは、特定の条件下で各CPL活性分子に固有の絶対値である。
市販されている多くの円偏光二色性分光光度計は、付属品を取り付けることで、試料の円偏光発光を測定できるように改造することができる。
円偏光二色性(CD)分光法を用いて固体試料を分析することは可能である。これにはいくつかの方法がある。
試料は、臭化カリウムや塩化カリウムなどの不活性分散剤で圧縮するか、試料を薄膜としてディスク上に堆積させることで、ディスク状に作製されることが多い。この手法は赤外吸収分光法で広く用いられており、紫外可視分光法でも使用されている。試料は透過モードで測定され、光は試料を透過して分光計の透過ポートに設置された検出器に到達する。異方性の影響を排除するため、試料は通常ホイールに取り付けられ、手動で回転させることで複数の角度位置で測定を行うことができる。その後、すべての位置のスペクトルを平均化する。
固体試料が粉末状である場合は、積分球と呼ばれる装置を用いて拡散反射率を測定することで測定できる。
積分球は20世紀初頭に開発され、当初は光源の方向を考慮せずに光源の全出力を測定するために使用されていました。現在では、固体試料の紫外可視吸収スペクトルや赤外吸収スペクトルを測定する際に広く用いられており、固体の紫外可視円偏光二色性(CD)分光法にも応用されています。
光は入射口から球体に入り、球体の内面は通常白色で反射性があり拡散性があるため、光は多重散乱反射によって球体内に均等に分布します。検出器は出口口に配置され、光の強度が測定されます。円偏光二色性(CD)分光法では、試料は入射口に配置され、光が球体に入る前に試料を通過するか、入射口の反対側の球体上の点に配置され、光が球体に入った後に試料から拡散反射されます。これらの2つの動作モードは、それぞれ透過モードと拡散反射モードと呼ばれます。どちらの場合も、試料は粉末状で準備されます。透過モードの場合、試料は臭化カリウムまたは塩化カリウムに分散され、ディスク状に圧縮されます。拡散反射モードの場合、試料は粉末のままで、必要に応じて硫酸バリウムやポリテトラフルオロエチレン(PTFE)などの希釈剤に分散されます。
市販されている多くの円偏光二色性(CD)分光光度計は、溶液中の高速反応の速度論を研究するためのストップドフロー装置を装備できるように設計されています。この手法の最も単純な形式では、2つの反応物の溶液を混合チャンバーに通すことで急速に混合し、混合液がチャンバーから出てきた後、光学観察セルを通過します。ある時点で流れを突然停止し、吸光度、蛍光、蛍光偏光、円偏光二色性などの適切な分光プローブを使用して反応を監視します。時間に対する分光信号の変化を記録し、適切なモデルを使用してデータをフィッティングすることで、反応速度論を定義する速度定数を得ることができます。
炭水化物においても円偏光二色性(CD)の研究が行われてきたが、非置換炭水化物の対応するCDバンドが存在する真空紫外(VUV)領域(100~200 nm)でのCDスペクトルの測定に伴う実験上の 困難さのため、成功は限られていた。VUV領域より上の波長域にバンドを持つ置換炭水化物については、測定に成功している。

遠紫外CDの測定は、生理的緩衝液および塩濃度の一般的な水性緩衝液系が遠紫外領域で著しく吸収するという事実によっても複雑になります。リン酸、トリス、およびHEPESは許容されますが、濃度は最小限に抑える必要があります(例えば、理想的には10~20 mM)。緩衝塩は遠紫外領域の低域で驚くほど高い吸光度を示すため、約50 mM以下に抑えるように努める必要があります(光路長に依存します)。フッ化物イオンは遠紫外領域での吸収が少ないため、塩化物イオンの代わりにフッ化物イオンを使用する実験者もいれば、純水で実験を行った実験者もいます。水自体も約180 nm以下で吸収します。注目すべき回避策の1つは、H 2 OからD 2 Oに切り替えることで、171 nmまで測定できる可能性があります 。[ 28 ] CDは基本的に吸収法であり、ベールの法則に従うため、遠紫外領域で作業する場合、短い光路長のセル/キュベットを使用することでバッファーの吸収を最小限に抑えるという別の工夫があります 。この作業では、0.1~0.5 mmの光路長は珍しくありません。一方、近紫外領域の実験では、これらの考慮事項のほとんどが影響されず、通常は標準的な10 mm光路長のキュベットでより高い濃度で実施されます。濃度と光路長は吸光度を作るための数学的な積を形成するため、同じ吸光度値を達成するために線形的に交換可能です。
水系での測定に加えて、CD、特に遠紫外CDは、エタノール、メタノール、アセトニトリル、トリフルオロエタノール(TFE)などの有機溶媒中で、さまざまな割合の有機溶媒まで測定できます。TFEは、耐性が高く、タンパク質の構造形成を誘導し、一部のタンパク質ではβシートを、他のタンパク質ではαヘリックスを誘導するという利点があります。これは、通常の水系条件下では観察されません。[ 29 ]アセトン、THF、ジオキサン、クロロホルム、ジクロロメタンなどの多くの一般的な有機溶媒は、一般的に遠紫外CDと相性が悪いです。[ 30 ]
二次構造推定に用いられるタンパク質のCDスペクトルは、アミノ酸骨格のアミド結合のπからπ*およびnからπ*軌道遷移に関連していることに留意しておくと興味深いだろう。これらの吸収帯は、いわゆる真空紫外(波長が約200 nm未満)に部分的に存在する。この波長領域は、酸素 による強い光吸収によってオゾンが生成されるため、空気中では実際にはアクセスできない。オゾンは反応性の高いガスであり、健康や分光計の光学部品に有害である。さらに、ランプやモノクロメーターに微量の酸素やオゾンが存在するだけでも、CDデータの取得が妨げられる。オゾンは約250 nmに強く幅広い吸収ピークを持ち、さらに600 nm付近にも幅広いピークを持つため、分光計ランプからの光を波長範囲の大部分、特に紫外領域で減衰させる。実際には、これらのスペクトルは真空中ではなく、酸素を含まない装置(タンクまたはデュワーから供給される高純度窒素ガスでパージされたもの)で測定される。
酸素を除去した後、200 nm以下の波長域での動作において、おそらく2番目に重要な技術的要素は、この領域での損失を低く抑えるように光学系全体を設計することです。この点において重要なのは、遠紫外領域での損失を低く抑えるようにコーティングが最適化されたアルミニウム蒸着ミラーを使用することです。
これらの機器で一般的に使用される光源は、高圧キセノンアークランプです。キセノン光源は非常に安定しており、遠紫外線から近赤外線まで広範囲で均一な発光スペクトルを生成します。通常のキセノンアークランプは低紫外線領域での使用には適していません。そのため、高純度合成溶融石英製の外殻を備えた、特別に設計されたキセノンアークランプを使用する必要があります。
シンクロトロン光源からの光は短波長で非常に高いフラックスを持ち、160 nm までの CD の記録に使用されてきました。2010 年に、デンマークのオーフス 大学の電子蓄積リング施設 ISA の CD 分光光度計を使用して、120 nm までの固体 CD スペクトルが記録されました。[ 31 ]量子力学的レベル では、円二色性と旋光性の特徴密度は同一です。旋光分散と円二色性は同じ量子情報内容を共有しています。