
In biochemistry, Michaelis–Menten kinetics, named after Leonor Michaelis and Maud Menten, is the simplest case of enzyme kinetics, applied to enzyme-catalysed reactions involving the transformation of one substrate into one product. In 1913, Michaelis and Menten expanded on Victor Henri's fundamental equation of enzyme kinetics, which was established in 1902.[1][2] It takes the form of a differential equation describing the reaction rate (rate of formation of product P, with concentration ) as a function of , the concentration of the substrate A (using the symbols recommended by the IUBMB).[3][4][5][6] The formula below is given by the Michaelis–Menten equation:
, which is often written as ,[a] represents the limiting rate approached by the system at saturating substrate concentration for a given enzyme concentration. The Michaelis constant has units of concentration, and for a given reaction is equal to the concentration of substrate at which the reaction rate is half of .[7] Biochemical reactions involving a single substrate are often assumed to follow Michaelis–Menten kinetics, without regard to the model's underlying assumptions. Only a small proportion of enzyme-catalysed reactions have just one substrate, but the equation still often applies if only one substrate concentration is varied.

The plot of against has often been called a "Michaelis–Menten plot", even recently,[8][9][10] but this terminology is historically misleading, as Michaelis and Menten did not use such a plot. Instead, they plotted against , which has some advantages over the usual ways of plotting Michaelis–Menten data. If is the dependent variable, then it does not distort any experimental errors in . Michaelis and Menten did not attempt to estimate directly from the limit approached at high これは、現代の技術で得られたデータでは正確に行うのが難しく、彼らのデータではほぼ不可能です。代わりに彼らは、曲線が中間範囲でほぼ直線であり、最大傾斜がつまり正確な値で判断するのは簡単だった曲線上の対応する点から。
このグラフは今日では推定にはほとんど使用されていません。そしてしかし、アイソザイムなど、幅広い基質濃度範囲で複数の酵素の特性を比較することは依然として価値があります。たとえば、ヘキソキナーゼの4つの哺乳類アイソザイムは、ヘキソキナーゼA(脳ヘキソキナーゼ)の約0.02 mMからヘキソキナーゼD(「グルコキナーゼ」、肝臓ヘキソキナーゼ)の約50 mMまでの濃度範囲でグルコースによって半分飽和され、その範囲は2500倍に及びます。従来の(線形)プロットでは、高親和性アイソザイムのグラフの読みやすさが損なわれますが、半対数プロットでは、すべてのアイソザイムの速度論的パラメーターを読み取ることができます。[ 11 ]
ミカエリスとメンテンの10年前、ヴィクトル・アンリは、酵素反応は酵素と基質の結合相互作用を仮定することで説明できることを発見した。[ 12 ]彼の研究はミカエリスとメンテンによって引き継がれ、彼らはスクロースをグルコースとフルクトースに加水分解する酵素であるインベルターゼの反応速度論を研究した。[ 13 ] 1913年、彼らはこの反応の数理モデルを提案した。[ 14 ]このモデルでは、酵素Eが基質Aに結合して複合体EAを形成し、生成物Pを放出して酵素の元の形を再生する。[ 7 ]これは模式的に次のように表すことができる。
どこ(順方向速度定数)(逆反応速度定数)および(触媒速度定数)は速度定数を表し、[ 15 ] A(基質)とEA(酵素-基質複合体)の間の二重矢印は、酵素-基質結合が可逆的なプロセスであることを示し、単一の順方向矢印はP(生成物)の形成を表します。
酵素濃度が基質濃度よりはるかに低いといった特定の仮定の下では、生成物生成速度は次のように表される。
その中では初期酵素濃度です。反応次数は分母の2つの項の相対的な大きさに依存します。基質濃度が低い場合レート基質濃度に比例して変化する(一次反応速度論[ 16 ]しかし、より高い、 と反応は独立性に近づく(ゼロ次反応速度論)、[ 16 ]漸近的に限界速度に近づくこの速度は実際には達成されないが、すべての酵素分子が基質に結合しているという仮想的な場合を指している。ターンオーバー数または触媒定数として知られるこの値は、通常 s⁻¹ で表される、単位時間あたり酵素分子 1 個あたりに生成物に変換される基質分子の限界数である。基質をさらに加えても反応速度は増加せず、酵素は飽和状態にあると言われる。
ミカエリス定数酵素の濃度や純度には影響されない。[ 17 ]その値は、酵素の種類と基質の種類、温度やpHなどの条件の両方に依存する。
このモデルは、酵素と基質の相互作用以外にも、抗原抗体結合、DNA-DNAハイブリダイゼーション、タンパク質間相互作用など、さまざまな生化学的状況で使用されています。[ 18 ] [ 19 ]ラングミュア方程式が一般的な生体分子種の吸着をモデル化するために使用できるのと同様に、一般的な生化学反応を特徴付けるために使用できます。[ 19 ]このような形式の経験式が微生物の増殖に適用される場合、モノ方程式と呼ばれることもあります。
ミカエリス・メンテン速度論は、生化学反応以外にも、さまざまなトピックに適用されています。[ 15 ]これには、粉塵の肺胞クリアランス、 [ 20 ]種プールの多様性、[ 21 ]血中アルコールのクリアランス、[ 22 ]光合成と光照射の関係、および細菌ファージ感染が含まれます。[ 23 ]
この方程式は、イオンチャネル伝導率とリガンド濃度の関係を記述するためにも使用でき、 [ 24 ]また、例えば、世界の海洋における栄養素と植物プランクトンの成長を制限するためにも使用できます。[ 25 ]
特異性定数(触媒効率とも呼ばれる)は、酵素が基質を生成物にどれだけ効率的に変換するかを示す指標です。そしてそれはそれ自体がパラメータであり、より根本的なものですフマラーゼなどの拡散律速酵素は、基質が活性部位に拡散することによって制限され、理論上の上限である10 8 – 10 10 M −1 s −1で機能します。[ 26 ]
特定の基質Aに対する特異性定数を次のように表すとします。ミカエリス・メンテン式は次のように表すことができる。そして次のように:

基質濃度が小さい場合、反応速度は基質濃度に対して一次依存性を示す。
逆に、ゼロ次依存性に近づく基質濃度が高い場合:
酵素がミカエリス・メンテン速度論に従う2つの競合基質を識別する能力は、特異性定数のみに依存し、または一人で。基板用そして競合基質の場合すると、両方が同時に存在する場合の2つのレートは次のようになります。
両方の分母にはミカエリス定数が含まれていますが、それらは同じ値であるため、一方の式をもう一方の式で割ると相殺されます。
したがって、反応速度の比率は、2つの基質の濃度とそれらの特異性定数のみに依存する。
この方程式はミカエリスとメンテンではなくアンリによって考案されたものであるため、アンリ・ミカエリス・メンテン方程式と呼ぶ方がより正確である[ 27 ]。ただし、アンリが試みたように反応の時間経過を分析するよりも、初期速度の観点から反応を分析する方が簡単で、結果としてより生産的であることを認識したのはミカエリスとメンテンであった。アンリはこの方程式を導出したが、それを適用しようとはしなかった。さらに、ミカエリスとメンテンはpHを制御するための緩衝液の必要性を理解していたが、アンリは理解していなかった。
パラメーター値は酵素によって大きく異なります。いくつかの例を以下に示します。[ 28 ]
ミカエリスとメンテン(およびアンリ)は、彼らの分析において、基質が複合体と瞬間的な化学平衡状態にあると仮定した。これは、 [ 14 ] [ 29 ]を意味する。
ここで、eは遊離酵素の濃度(総濃度ではない)であり、xは酵素-基質複合体EAの濃度である。
酵素の保存には、[ 29 ]
どこは、酵素の総濃度です。この2つの式を組み合わせると、簡単な代数計算によって、酵素-基質複合体の濃度を表す次の式が得られます。
どこは酵素-基質複合体の解離定数である。したがって、速度式はミカエリス-メンテン式である。 [ 29 ]
どこ触媒定数に相当するそして限界速度は同様に平衡を仮定すると、ミカエリス定数は。
ミカエリスとメンテンがインベルターゼを研究していたのとほぼ同時期にウレアーゼを研究していたドナルド・ヴァン・スライクとGE・カレン[ 30 ]は、基本的に正反対の仮定を立て、最初のステップを平衡ではなく、速度定数を持つ不可逆的な二次反応として扱った。彼らの手法は今日では全く使われていないため、最終的な反応速度式を示すだけで十分である。
また、機能的にはアンリ・ミカエリス・メンテン式と区別がつかないことに注意する必要がある。運動学的挙動の検査から判断することはできないが、に等しいまたはあるいは、他の何かへ。
GE BriggsとJBS Haldaneは、MichaelisとMenten、およびVan SlykeとCullenのアプローチを調和させた分析を行い[ 31 ] [ 32 ]、これは今日では酵素反応速度論の基本的なアプローチとされている。彼らは、中間複合体の濃度は生成物形成が測定される時間スケールでは変化しないと仮定した[ 33 ]。この仮定は、結果として得られる速度式は以下のとおりです。
どこ
これはミカエリス定数の一般化された定義である。[ 34 ]
示されているすべての導出は、最初の結合ステップを質量作用の法則で扱っており、溶液中を自由に拡散することを前提としています。しかし、タンパク質の濃度が高い生細胞の環境では、細胞質は自由流動する液体というより粘性のあるゲルのように振る舞うことが多く、拡散によって分子の動きが制限され、反応速度が変化します。[ 35 ]このゲル状の構造はタンパク質のような大きな分子を厳しく制限しますが、中心代謝に関与する多くの代謝物のような小さな分子への影響ははるかに小さいです。[ 36 ]したがって、実際には、基質の動きを拡散の観点から扱うことは大きな誤差を生じさせる可能性は低いです。それにもかかわらず、SchnellとTurnerは、制限された移動速度論を捉えるために、細胞質をフラクタルとしてモデル化する方がより適切であると考えています。 [ 37 ]
ミカエリス・メンテン式のパラメータを決定するには、通常、様々な基質濃度で一連の酵素アッセイを実施する必要がある。初期反応速度の測定すなわち、酵素-基質複合体が形成されたと想定できるほど短い時間経過後に反応速度を測定しますが、基質濃度はほぼ一定のままであり、平衡または準定常状態の近似は有効です。[ 38 ]反応速度を濃度に対してプロットし、速度の既知の誤差分布特性に基づいて適切な重み付けを行ったミカエリス-メンテン式の非線形回帰を使用することで、パラメータを取得できます。
非線形回帰を実行するための計算設備が利用可能になる前は、方程式の線形化を含むグラフ的手法が使用されていました。これらの手法は数多く提案されており、その中にはEadie–Hofsteeプロットも含まれています。に対して[ 39 ] [ 40 ]ヘインズプロットに対して[ 41 ]およびラインウィーバー・バークプロット(二重逆数プロットとも呼ばれる)に対して[ 42 ]これらのうち、[ 43 ]ヘインズプロットが最も正確なのは、は、一様な標準偏差を持つ誤差の影響を受ける。[ 44 ]データの視覚化の観点から、Eadie–Hofstee プロットには重要な特性がある。それは、可能な範囲全体である。値に縦軸の目盛りの範囲が有限であるため、不適切な実験計画を隠蔽するような軸を選択することは不可能である。
しかし、視覚化には役立つものの、3 つの線形プロットはすべてデータのエラー構造を歪め、より精度の低い推定値を提供する。そして正しく重み付けされた非線形回帰よりも。誤差を仮定するとの上逆表現では、の上(不確実性の伝播)は、二重逆数プロットの線形回帰には重みを含める必要があることを示唆している。これはLineweaverとBurk [ 42 ]によってよく理解されており、彼らはデータを分析する前に著名な統計学者W. Edwards Demingに相談していた[ 45 ] 。それ以降のほとんどすべての研究者とは異なり、Burkは誤差分布の実験的研究を行い、それが一様な標準誤差と一致することを発見した。適切な重みを決定する前に。[ 46 ]ラインウィーバーとバークの研究のこの側面は当時ほとんど注目されず、その後忘れ去られた。
直接線形プロットは、パラメータ空間で観測値を直線で表すグラフ手法であり、軸はそして: 各線は切片で描画されますで軸とで軸。異なる観測値の線の交点は、次の値をもたらします。そして[ 47 ]
GrecoとHakala [ 48 ]をはじめとする多くの著者は、非線形回帰はMichaelis-Menten方程式の線形形式の回帰よりも常に優れていると主張している。しかし、これは適切な重み付けスキームが使用されている場合にのみ正しい。できれば実験的調査に基づいていることが望ましいが、実際にはほとんど行われていない。前述のように、Burk [ 46 ]は適切な調査を実施し、彼のデータの誤差構造が均一な標準偏差と一致していることを発見した。より最近の研究では、1970年代に使用されていた手法では、均一な変動係数(標準偏差をパーセントで表したもの)が真実に近いことがわかった。[ 49 ] [ 50 ]しかし、この真実は、どのような依存関係よりも複雑である可能性がある。単独で表現できる。[ 51 ]
一様標準偏差率の標準偏差が均一であるとみなされる場合、各率の適切な重みは非線形回帰の値は 1 です。二重逆数プロットを使用する場合、各値は重量は一方、Hanes プロットを使用すると、各値重量は。
均一な変動係数レートが均一な係数変動を持つとみなされる場合、各レートの適切な重みは非線形回帰の値は二重逆数プロットを使用する場合、各値は重量は一方、Hanes プロットを使用すると、各値重量は。
理想的にはこれらの各ケースにおいて、真の値は存在するはずですが、それは常に不明です。しかし、予備的な推定の後、計算された値を使用できます。推定を精緻化するため。実際には、酵素反応速度データの誤差構造は実験的に調査されることは非常にまれであり、したがってほとんど知られておらず、単に仮定されている。しかし、データの内部証拠から誤差構造の印象を形成することは可能である。[ 52 ]これは手作業で行うのは面倒だが、コンピュータでは容易に行うことができる。
サンティアゴ・シュネルとクラウディオ・メンドーサは、ランベルトW関数の解に基づいて、ミカエリス・メンテン速度論の時間経過速度論解析のための閉形式解を提案した。[ 53 ] すなわち、
ここでWはランベルトW関数であり、
現在ではシュネル・メンドーサ方程式[ 54 ]として知られる上記の式は、推定に用いられてきた。そして時系列データから。[ 55 ] [ 56 ]
酵素触媒反応のうち基質が1つだけのものはごく少数であり、基質の1つが水である2基質反応を1基質反応として扱うことで数を増やしたとしても、その数は依然として少ない。したがって、通常は基質が1つだけの場合に用いられるミカエリス・メンテン式は、有用性が限られていると考えるかもしれない。しかし、この考えは誤解を招く。2基質反応の一般的な式は、次のように表すことができる。2つの基質濃度に関してそして:
その他の記号は運動定数を表します。ここで、は多様で一定とみなす。すると、方程式を次のように整理するのが便利である。
これはまさにミカエリス・メンテン式と同じ形式である。
見かけ上の値そして以下のように定義される。
線形(単純)型の阻害は、阻害剤濃度における混合阻害の一般式に基づいて分類することができる。:
その中では競合阻害定数であり、は非競合阻害定数です。この式には、他の種類の阻害も特殊な場合として含まれています。
純粋な非競合阻害は非常にまれで、主にプロトンと一部の金属イオンの影響に限られます。クレランドはこのことを認識し、非競合を混合型と再定義しました。[ 58 ]一部の著者はこの点において彼に倣っていますが、すべてではありません。そのため、出版物を読む際には、著者がどの定義を使用しているかを確認する必要があります。
いずれの場合も、反応速度式は見かけの定数を含むミカエリス・メンテン式の形式をとる。これは上記の式を次のように書き表すことで確認できる。
見かけ上の値そして以下のように定義される。