構造 共焦点顕微鏡 で観察した、培養 10日目の初代海馬 ニューロン 。両方の画像で、ニューロンは体細胞樹状突起マーカーである微小管関連タンパク質 (赤色)で染色されている。右側の画像では、シナプス小胞が緑色で染色されている(緑色と赤色が重なる部分は黄色)。スケールバー = 25 μm。[ 3 ] シナプス小胞は、直径40 nmの球体には限られた数のタンパク質しか入らないため、比較的単純な構造をしている。 精製された小胞は、タンパク質とリン脂質 の比率が1:3で、脂質組成はホスファチジルコリン 40% 、ホスファチジルエタノールアミン 32% 、ホスファチジルセリン12%、 ホスファチジルイノシトール 5% 、コレステロール 10%である。[ 4 ]
シナプス小胞には、神経伝達物質の取り込みに関わる輸送タンパク質 と、シナプス小胞のエキソサイトーシス 、エンドサイトーシス 、リサイクルに関与する輸送タンパク質という、2種類の必須構成要素が含まれている。
様々な神経伝達物質が小胞へ移動する際の化学量論 比を以下の表に示す。
最近、シナプス小胞にはトランスファーRNA 断片、Y RNA 断片、mirRNA などの小さなRNA分子も含まれていることが発見されました。[ 5 ] この発見は化学シナプスの研究に幅広い影響を与えると考えられています。
小胞プール 神経終末の小胞は、即時放出プール 、リサイクルプール、予備プールの 3 つのプールに分類されます。[ 8 ] これらのプールは、神経終末における機能と位置によって区別されます。即時放出プールは細胞膜 にドッキングしており、刺激を受けると最初に放出される小胞群です。即時放出プールは小さく、すぐに枯渇します。リサイクルプールは細胞膜に近接しており、中程度の刺激で循環する傾向があるため、小胞放出速度は小胞形成速度と同じか、それよりも低くなります。このプールは即時放出プールよりも大きいですが、動員されるまでに時間がかかります。予備プールには、通常の条件下では放出されない小胞が含まれています。この予備プールは、ガラス基板上で培養されたニューロンではかなり大きい (約 50%) ことがありますが、無傷の脳組織の成熟したシナプスでは非常に小さいか、存在しません。[ 9 ] [ 10 ]
生理
シナプス小胞サイクル シナプス小胞サイクルの事象は、いくつかの重要なステップに分けられます。[ 11 ]
1. シナプスへの輸送 シナプス前ニューロンのシナプス小胞成分は、キネシン モーターファミリーのメンバーを使用して最初にシナプスに輸送されます。C . elegans では、シナプス小胞の主要なモーターはUNC-104です。[ 12 ] また、UNC-16/Sunday Driverなどの他のタンパク質がシナプス小胞の輸送のためのモーターの使用を調節するという証拠もあります。[ 13 ]
2. 送信機の負荷 シナプスに到達すると、シナプス小胞に神経伝達物質が充填される。伝達物質の充填は能動的なプロセスであり、神経伝達物質トランスポーターと電気化学的勾配を提供するプロトンポンプATPaseを必要とする。これらのトランスポーターは、異なる種類の伝達物質に対して選択性がある。小胞性アセチルコリン トランスポーターと小胞性GABAトランスポーター をコードするunc-17とunc-47の特性については、これまでに報告されている。[ 14 ]
3. ドッキング 内容物を詰めたシナプス小胞は放出部位の近くにドッキングする必要がありますが、ドッキングはサイクルのステップですが、その詳細はほとんどわかっていません。シナプス小胞上および放出部位には多くのタンパク質が同定されていますが、小胞タンパク質と放出部位タンパク質間の既知のタンパク質相互作用のいずれも、サイクルのドッキング段階を説明できません。rab-3およびmunc-18の変異体は、放出部位での小胞のドッキングまたは小胞の組織化を変化させますが、ドッキングを完全に阻害するわけではありません。[ 15 ] SNAREタンパク質も、サイクルのドッキング段階に関与しているようです。[ 16 ]
4. プライミング シナプス小胞が最初にドッキングした後、融合を開始する前にプライミングされる必要があります。プライミングは、シナプス小胞がカルシウム流入に応答して迅速に融合できるように準備します。このプライミングのステップには、部分的に組み立てられたSNARE複合体の形成が関与していると考えられています。タンパク質Munc13 、RIM 、およびRIM-BPがこのイベントに関与しています。[ 17 ] Munc13は、t-SNAREシンタキシンを閉じたコンフォメーションから開いたコンフォメーションに変化させることを刺激し、v-SNARE/t-SNARE複合体の組み立てを刺激すると考えられています。[ 18 ] RIMもプライミングを調節しているようですが、このステップには必須ではありません。
5. 融合 プライミングされた小胞は、細胞質内のカルシウム濃度の上昇に応答して細胞膜と非常に速やかに融合する。これにより、貯蔵された神経伝達物質がシナプス間隙 に放出される。融合イベントはSNAREによって直接媒介され、SNAREの集合から供給されるエネルギーによって駆動されると考えられている。このイベントのカルシウム感知トリガーは、カルシウム結合シナプス小胞タンパク質であるシナプトタグミンである。SNAREがカルシウム依存的に融合を媒介する能力は、最近、試験管内で再構成された。SNAREが融合プロセスに必須であることと一致して、C. elegans のv-SNAREおよびt-SNARE変異体は致死性である。同様に、ショウジョウバエ の変異体およびマウスのノックアウトは、これらのSNAREがシナプスエキソサイトーシスにおいて重要な役割を果たしていることを示している。[ 11 ]
6. エンドサイトーシス これは、完全接触融合モデルにおけるシナプス小胞の再取り込みを説明するものである。しかし、他の研究では、この種の融合とエンドサイトーシスが常に起こるわけではないことを示唆する証拠が集められている。
小胞のリサイクル シナプス小胞のリサイクルには、主に2つのメカニズムが関与していると考えられています。それは、完全崩壊融合と「キス・アンド・ラン」方式です。どちらのメカニズムも、神経伝達物質を細胞外空間に放出するシナプス孔の形成から始まります。神経伝達物質が放出された後、孔は完全に拡張して小胞がシナプス膜に完全に崩壊するか、急速に閉じて膜を切り離し、キス・アンド・ラン融合を起こすことができます。[ 19 ]
完全崩壊融合 神経シナプスでの強い刺激の期間が、小胞数を減少させるとともに、細胞容量と表面積を増加させることが示されている。[ 20 ] これは、シナプス小胞が神経伝達物質のペイロードを放出した後、細胞膜と融合してその一部になることを示している。HRP(西洋ワサビペルオキシダーゼ)でシナプス小胞を標識した後、HeuserとReeseは、カエルの 神経筋接合 部の細胞膜の一部が細胞に取り込まれ、シナプス小胞に再変換されることを発見した。[ 21 ] 研究によると、シナプス小胞のエキソサイトーシス、回収、および再形成の全サイクルには1分未満しかかからないことが示唆されている。[ 22 ]
完全な崩壊融合では、シナプス小胞が融合して細胞膜に組み込まれます。新しい膜の形成はタンパク質を介したプロセスであり、特定の条件下でのみ起こります。活動電位 の後、Ca 2+ がシナプス前膜に流入します。Ca 2+ は 細胞質内の特定のタンパク質に結合し、その1つがシナプトタグミン であり、これがシナプス小胞と細胞膜の完全な融合を引き起こします。この孔の完全な融合はSNARE タンパク質によって促進されます。この大きなタンパク質ファミリーは、ATP 依存的にシナプス小胞のドッキングを媒介します。シナプス小胞上のシナプトブレビンの助けを借りて、膜上の t-SNARE 複合体 ( シンタキシン とSNAP-25 から構成) がシナプス小胞をドッキング、プライミング、融合させて膜に組み込むことができます。[ 23 ]
完全な崩壊融合のメカニズムは、ボツリヌス毒素 と破傷風 毒素の標的であることが示されています。ボツリヌス毒素は、SNAP-25 タンパク質を分解するプロテアーゼ 活性を持っています。SNAP -25 タンパク質は、神経伝達物質、特にアセチルコリンを放出する小胞融合に必要です。[ 24 ] ボツリヌス毒素は基本的にこれらのSNAREタンパク質を切断し、そうすることでシナプス小胞が細胞のシナプス膜と融合して神経伝達物質を放出するのを妨げます。破傷風毒素は同様の経路をたどりますが、代わりにシナプス小胞上のタンパク質シナプトブレビン を攻撃します。その結果、これらの神経毒素 はシナプス小胞の完全な崩壊融合を妨げます。このメカニズムが機能しないと、筋肉の痙攣、麻痺、死に至る可能性があります。
「キス・アンド・ラン」シナプス小胞がリサイクルされる2番目のメカニズムは、キスアンドラン融合 として知られています。この場合、シナプス小胞は細胞膜に「キス」して、神経伝達物質のペイロードが放出される小さな孔を開き、その後孔を閉じて細胞内にリサイクルされます。[ 19 ] キスアンドラン機構は、激しく議論されてきたトピックです。その効果は観察され記録されていますが、完全な崩壊融合ではなく、なぜそれが使用されるのかという理由はまだ研究中です。キスアンドランは、希少な小胞リソースを節約するためによく使用され、高周波入力に応答するためにも使用されると推測されています。[ 25 ] 実験では、キスアンドランイベントが発生することが示されています。最初にKatz とdel Castilloによって観察され、その後、キスアンドラン機構は、キスアンドランイベントで細胞容量 が増加しないという点で完全な崩壊融合とは異なることが観察されました。[ 25 ] これはキス・アンド・ラン方式の考え方を裏付けており、シナプス小胞はペイロードを放出し、その後膜から分離する。
変調 細胞は、膜リサイクルに関して少なくとも2つのメカニズムを持っていると考えられる。特定の条件下では、細胞は一方のメカニズムから他方のメカニズムに切り替えることができる。Ca2 +濃度が低い場合、シナプス膜ではゆっくりとした従来型の完全崩壊融合が優勢であり、Ca2 + 濃度が高い場合は、速いキス・アンド・ラン機構が用いられる。
Alesらは、 細胞外カルシウムイオン濃度の上昇が、カルシウム濃度依存的に、リサイクルとシナプス小胞放出の優先モードをキスアンドラン機構にシフトさせることを示した。シナプスにおける神経伝達物質の分泌中、シナプス活動に応じて、エキソサイトーシスとエンドサイトーシスが連動する最適な条件を達成するために、エキソサイトーシスのモードがカルシウムによって調節されることが提唱されている。[ 26 ]
実験的証拠は、刺激列の開始時にキスアンドランがシナプス放出の主要なモードであることを示唆している。この文脈では、キスアンドランは高い小胞放出確率を反映している。キスアンドランの発生は、ニューロンの急速な発火と刺激によっても増加し、このタイプの放出の速度は他の形態の小胞放出よりも速いことを示唆している。[ 27 ]
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