
| tRNA | |
|---|---|
| 識別子 | |
| シンボル | t |
| Rfam | RF00005 |
| その他のデータ | |
| RNAタイプ | 遺伝子、tRNA |
| PDB構造 | PDBe 3icq、1asy、1asz、1il2、2tra、3tra、486d、1fir、1yfg、3eph、3epj、3epk、3epl、1efw、1c0a、2ake、2azx、2dr2、1f7u、1f7v、3foz、2hgp、2j00、2j02、2ow8、2v46、2v48、2wdg、2wdh、2wdk、2wdm、2wh1 |
転移RNA(略してtRNA 、以前は可溶性RNAの略でsRNAと呼ばれていました[1] )は、 RNAで構成されたアダプター分子で、通常76〜90ヌクレオチドの長さです(真核生物の場合)。[2]細胞内では、メッセンジャーRNA(mRNA)の遺伝コードとタンパク質のアミノ酸配列との間に物理的なリンクを提供し、タンパク質合成装置であるリボソームによって結合される正しいアミノ酸配列を運びます。mRNAの各3ヌクレオチドのコドンは、tRNAの3ヌクレオチドのアンチコドンによって補完されます。そのため、tRNAは、遺伝コードに従って 新しいタンパク質を生物学的に合成する翻訳に必要な要素です。
概要
翻訳のプロセスは、DNAのヌクレオチド配列に格納された情報から始まります。これは最初にmRNAに変換され、次にtRNAが遺伝コードのどの3ヌクレオチドコドンがどのアミノ酸に対応するかを指定します。[3]各mRNAコドンは特定のタイプのtRNAによって認識され、3ヌクレオチドアンチコドンに沿ってドッキングし、一緒に3つの相補的な 塩基対を形成します。
tRNA のもう一方の端には、アンチコドン配列に対応するアミノ酸への共有結合があり、各タイプの tRNA は特定のアミノ酸に結合します。遺伝コードには同じアミノ酸を指定する複数のコドンが含まれているため、同じアミノ酸を運ぶ異なるアンチコドンを持つ tRNA 分子が複数存在します。
tRNA 3' 末端への共有結合は、アミノアシル tRNA 合成酵素と呼ばれる酵素によって触媒される。タンパク質合成の際、アミノ酸が結合した tRNA は、伸長因子と呼ばれるタンパク質によってリボソームに運ばれ、tRNA とリボソームの会合、新しいポリペプチドの合成、および mRNA に沿ったリボソームの転座 (移動) を助ける。tRNA のアンチコドンが mRNA と一致する場合、リボソームにすでに結合している別の tRNA が、成長中のポリペプチド鎖をその 3' 末端から、新しく運ばれた tRNA の 3' 末端に結合したアミノ酸に転移する。この反応はリボソームによって触媒される。tRNA 分子内の多数の個々のヌクレオチドは、メチル化または脱アミド化によって化学的に修飾されることがある。これらの異常な塩基は、tRNA とリボソームの相互作用に影響を与えることがあり、アンチコドンに存在して塩基対形成特性を変えることもある。[4]
構造



tRNAの構造は、一次構造、二次構造(通常はクローバーリーフ構造として視覚化される)、および三次構造に分解できる[6] (すべてのtRNAは、リボソームのPサイトとAサイトに収まるように同様のL字型の3D構造を持っている)。クローバーリーフ構造は、一般的なRNA三次構造モチーフであるヘリックスの同軸スタッキングによって3D L字型構造になる。tRNA分子内の各アームの長さとループの「直径」は、種によって異なります。[6] [7] tRNA構造は次の要素で構成されています。
- アクセプターステムは、5'末端ヌクレオチドと3'末端ヌクレオチド(アミノ酸を結合するために使用されるCCAテールを含む)との塩基対形成によって形成される7〜9塩基対(bp)のステムである。アクセプターステムには、ワトソン-クリック型以外の塩基対が含まれる場合がある。[6] [8]
- CCAテールは、tRNA 分子の 3' 末端にあるシトシン- シトシン -アデニン配列です。アミノアシル tRNA 合成酵素によって tRNA にロードされ、アミノアシル tRNA を形成するアミノ酸は、CCA テールの 3'-ヒドロキシル基に共有結合します。[9]この配列は、酵素による tRNA の認識に重要であり、翻訳に不可欠です。[10] [11]原核生物では、CCA 配列は一部の tRNA 配列に転写されます。ほとんどの原核生物 tRNA と真核生物 tRNA では、CCA 配列は処理中に追加されるため、tRNA 遺伝子には現れません。[12]
- Dループは4~6bpのステムで、ループで終わり、ジヒドロウリジンを含むことが多い。[6]
- アンチコドンループは5bpのステムであり、そのループ内にアンチコドンが含まれる。[6]
- TΨCループは、ループ内に珍しい塩基Ψが存在することからそのように名付けられました。Ψは、修飾されたウリジンである擬似ウリジンです。修飾された塩基は、T(リボチミジン、m5U)とAが塩基対を形成し、5'-TΨCGA-3'配列内によく見られます。 [13]
- 可変ループまたはVループは、アンチコドンループとΨUループの間に位置し、その名前が示すように、サイズは3塩基から21塩基まで変化します。一部のtRNAでは、「ループ」は可変アームと呼ばれる剛性のステムを形成するのに十分な長さです。[14] 10塩基を超えるVループを持つtRNAは「クラスII」に分類され、それ以外は「クラスI」と呼ばれます。[15]
アンチコドン
アンチコドン[16]は、 mRNAコドンの3つの塩基に対応する3つのヌクレオチドの単位である。各tRNAは、アミノ酸の1つ以上のコドンと3つの相補的塩基対を形成できる明確なアンチコドントリプレット配列を持っている。一部のアンチコドンは、ウォブル塩基対形成により、複数のコドンと対になる。多くの場合、アンチコドンの最初のヌクレオチドはmRNAにはないイノシンであり、これは対応するコドン位置の複数の塩基と水素結合することができる。 [4] :29.3.9 遺伝コードでは、単一のアミノ酸が4つの3番目の位置の可能性すべて、または少なくともピリミジンとプリンの両方によって指定されるのが一般的である。たとえば、アミノ酸のグリシンは、コドン配列GGU、GGC、GGA、およびGGGによってコードされている。他の修飾ヌクレオチドも最初のアンチコドン位置に現れる可能性があり、これは「ウォブル位置」とも呼ばれ、ミトコンドリアなどで遺伝暗号に微妙な変化をもたらします。[17]ウォブル塩基の可能性により、必要なtRNAの種類の数が減ります。標準的な遺伝暗号の各センスコドンに1つずつ、合計61種類ではなく、61のセンスコドンすべてを明確に翻訳するために必要なtRNAは31個だけです。[3] [18]
命名法
tRNAは、通常、そのアミノ酸(例:tRNA-Asn)、アンチコドン配列(例:tRNA(GUU))、またはその両方(例:tRNA-Asn(GUU)またはtRNAアスン
GUU[19]これら2つの特徴はtRNAの主な機能を説明していますが、実際にはtRNAの多様性全体を網羅しているわけではありません。そのため、区別するために数字の接尾辞が追加されています。[ 20]同じアミノ酸を対象とするtRNAは「アイソタイプ」と呼ばれ、同じアンチコドン配列を持つtRNAは「アイソアクセプター」と呼ばれ、両方が同じだが他の場所で異なるtRNAは「アイソデコーダー」と呼ばれます。[21]
アミノアシル化
アミノアシル化は、化合物にアミノアシル基を付加するプロセスである。これは、アミノ酸をtRNA分子のCCA 3′末端に共有結合させる。各tRNAは、アミノアシルtRNA合成酵素によって特定のアミノ酸でアミノアシル化(またはチャージ)される。アミノ酸に対して複数のtRNAや複数のアンチコドンが存在する可能性があるにもかかわらず、通常、アミノ酸ごとに1つのアミノアシルtRNA合成酵素が存在します。合成酵素による適切なtRNAの認識は、アンチコドンのみによって媒介されるわけではなく、アクセプターステムが重要な役割を果たすことがよくあります。[22] 反応:
特定の生物では、1 つ以上のアミノリン酸 tRNA 合成酵素が欠損している場合があります。これにより、化学的に関連するアミノ酸が tRNA にチャージされ、1 つまたは複数の酵素を使用することで、tRNA は正しくチャージされるように変更されます。たとえば、ヘリコバクター ピロリではグルタミニル tRNA 合成酵素が欠損しています。したがって、グルタミン酸 tRNA 合成酵素は tRNA-グルタミン (tRNA-Gln) にグルタミン酸をチャージします。次に、アミドトランスフェラーゼがグルタミン酸の酸側鎖をアミドに変換し、正しくチャージされた gln-tRNA-Gln を形成します。
リボソームへの結合
リボソームには、2つのリボソームサブユニット間の空間にまたがるtRNA分子の結合部位が3つあります。A (アミノアシル)、[24] P(ペプチジル)、[ 25] E(出口)部位です。さらに、リボソームには、 mRNAのデコード中またはタンパク質合成の開始中に使用されるtRNA結合部位が他に2つあります。これらは、T部位(伸長因子Tuと呼ばれる)とI部位(開始)です。[26]慣例により、tRNA結合部位は、最初に小さなリボソームサブユニットの部位、2番目に大きなリボソームサブユニットの部位で示されます。たとえば、A部位はA/A、P部位はP/P、E部位はE/Eと表記されることが多いです。[25] A部位とP部位のL27、L2、L14、L15、L16などの結合タンパク質は、AP Czernilofskyら(Proc. Natl. Acad. Sci、USA、pp. 230-234、1974)によるアフィニティー標識によって決定されている。
翻訳開始が完了すると、最初のアミノアシル tRNA は P/P 部位に配置され、以下に説明する伸長サイクルの準備が整います。翻訳伸長中、tRNA は最初に伸長因子 Tu ( EF-Tu ) またはその真核生物 ( eEF-1 ) または古細菌の対応物との複合体の一部としてリボソームに結合します。この最初の tRNA 結合部位は A/T 部位と呼ばれます。A/T 部位では、A 部位の半分はmRNA デコード部位がある小さなリボソームサブユニットに存在します。mRNA デコード部位は、翻訳中にmRNA コドンが読み取られる場所です。T 部位の半分は主に、 EF-Tu または eEF-1 がリボソームと相互作用する大きなリボソームサブユニットに存在します。mRNA のデコードが完了すると、アミノアシル tRNA は A/A 部位に結合し、結合したアミノ酸との次のペプチド結合[27]が形成される準備が整います。成長中のポリペプチドを A/A 部位に結合したアミノアシル tRNA に渡すペプチジル tRNA は、P/P 部位に結合しています。ペプチド結合が形成されると、P/P 部位の tRNA はアシル化されるか、または 3' 末端が自由になり、A/A 部位の tRNA は成長中のポリペプチド鎖を解離します。次の伸長サイクルを可能にするために、tRNA はハイブリッド A/P および P/E 結合部位を通過し、サイクルを完了して P/P および E/E 部位に留まります。A/A および P/P tRNA が P/P および E/E 部位に移動すると、mRNA も 1 コドン移動し、 A/T 部位が空になり、次の mRNA デコード ラウンドの準備が整います。E/E 部位に結合した tRNA は、リボソームを離れます。
P/I部位は、細菌においてIF2と呼ばれる開始因子によって運ばれるアミノアシルtRNAに最初に結合する部位である。 [26]しかし、真核生物や古細菌のリボソームにおけるP/I部位の存在はまだ確認されていない。P部位タンパク質L27は、E. CollatzとAP Czernilofskyによるアフィニティー標識によって決定されている(FEBS Lett.、Vol. 63、pp. 283–286、1976)。
tRNA遺伝子
生物はゲノム中のtRNA遺伝子の数が異なります。例えば、遺伝学研究でよく使われるモデル生物である線虫C. elegansは、核ゲノムに29,647個の遺伝子を持ち、[28]そのうち620個がtRNAをコードしています。[29] [30]出芽酵母Saccharomyces cerevisiaeは、ゲノム中に275個のtRNA遺伝子を持っています。ゲノムあたりのtRNA遺伝子の数は大きく異なり、FusobacteriaやTenericutesなどのグループの細菌種はゲノムあたり約30個の遺伝子を持ちますが、ゼブラフィッシュ( Danio rerio )などの複雑な真核生物ゲノムは1万個を超えるtRNA遺伝子を持つことがあります。[31]
2013年1月の推定によると、ヒトゲノムには合計約20,848個のタンパク質コード遺伝子[32]があり、細胞質tRNA分子をコードする核遺伝子が497個、tRNA由来の擬似遺伝子(もはや機能しないと考えられているtRNA遺伝子)が324個あります[33] (ただし、擬似tRNAは細菌の抗生物質耐性に関与していることが示されています)。[34]すべての真核生物と同様に、ヒトには22個のミトコンドリアtRNA遺伝子[35]があります。これらの遺伝子の一部の変異は、 MELAS症候群などの重篤な疾患と関連付けられています。ミトコンドリアtRNA遺伝子と配列が非常に類似した核染色体領域(tRNA類似遺伝子)も特定されています。[36]これらのtRNA類似体は、核ミトコンドリアDNA(ミトコンドリアから核に移行した遺伝子)の一部とも考えられています。[36] [37]ミトコンドリアtRNA(tRNA類似体)の複数の核コピーの現象は、ヒトからオポッサムまで多くの高等生物で観察されており[38]、類似体が機能している可能性を示唆しています。
細胞質tRNA遺伝子は、アンチコドンの特徴に応じて49のファミリーに分類できます。これらの遺伝子は、22番染色体とY染色体を除くすべての染色体上に存在します。6p(140個のtRNA遺伝子)と1番染色体には高いクラスター化が見られます。[33]
HGNCは、ゲノム tRNA データベース (GtRNAdb) およびこの分野の専門家と協力して、tRNA をコードするヒト遺伝子に固有の名前を承認しました。
通常、細菌由来のtRNA遺伝子は、古細菌由来のtRNA(平均=83.1 bp)や真核生物由来のtRNA(平均=84.7 bp)よりも短い(平均=77.6 bp)。[31]成熟tRNAは逆のパターンを示し、細菌由来のtRNAは通常(中央値=77.6 nt)古細菌由来のtRNA(中央値=76.8 nt)よりも長く、真核生物の成熟tRNAは最も短い(中央値=74.5 nt)。[31]
進化
ゲノムtRNA含有量は、生物のドメイン間でゲノムを差別化する特徴です。古細菌は、均一な数の遺伝子コピーを持つゲノムtRNA含有量の点で最も単純な状況を示し、細菌は中間の状況を示し、真核生物は最も複雑な状況を示します。[39]真核生物は、他の2つの界よりもtRNA遺伝子含有量が多いだけでなく、異なるアイソアクセプター間で遺伝子コピー数に大きなばらつきがあり、この複雑さはtRNA遺伝子の重複とアンチコドン特異性の変化によるものと思われます[要出典]。
異なる種におけるtRNA遺伝子のコピー数の進化は、特定のtRNA修飾酵素(細菌のウリジンメチルトランスフェラーゼ、真核生物のアデノシンデアミナーゼ)の出現と関連付けられており、これらの酵素は、特定のtRNAのデコード能力を高めます。[39]一例として、tRNA Alaは4つの異なるtRNAアイソアクセプター(AGC、UGC、GGC、CGC)をコードします。真核生物では、AGCアイソアクセプターは、他のアイソアクセプターと比較して遺伝子コピー数が極端に豊富であり、これはそのワブル塩基のAからIへの修飾と相関しています。この同じ傾向は、真核生物のほとんどのアミノ酸で示されています。実際、これら2つのtRNA修飾の影響は、コドン使用バイアスにも見られます。高度に発現した遺伝子は、これらの修飾tRNAによって解読されるコドンのみを使用するコドンに富んでいるようであり、これはこれらのコドン、ひいてはこれらのtRNA修飾が翻訳効率において役割を果たしている可能性を示唆している。[39]
多くの種は、進化の過程で特定のtRNAを失っています。例えば、哺乳類と鳥類はともに64個のtRNA遺伝子のうち14個を欠いていますが、他の生命体はこれらのtRNAを含んでいます。[40]正確に対になるtRNAが欠落している翻訳コドンについては、生物はウォブリングと呼ばれる戦略に頼ります。この戦略では、不完全に一致したtRNA/mRNAペアでも翻訳が行われますが、この戦略では翻訳エラーの傾向も高まります。[41]進化の過程でtRNA遺伝子が失われた理由はまだ議論されていますが、ウイルス感染に対する抵抗力の向上に関係している可能性があります。[42]ヌクレオチドトリプレットは、アミノ酸と関連するtRNAよりも多くの組み合わせを表現できるため、遺伝コードに冗長性があり、いくつかの異なる3ヌクレオチドコドンが同じアミノ酸を表現できます。このコドンの偏りが、コドンの最適化を必要とするものです。
仮説上の起源
tRNAの上半分(Tアームと、5'末端リン酸基および3'末端CCA基を持つアクセプターステムで構成)と下半分(Dアームとアンチコドンアームで構成)は、構造的にも機能的にも独立したユニットです。上半分は、もともと初期のRNAワールドでtRNAのような分子を複製用にマークしていた可能性のある3'末端ゲノムタグを含めて最初に進化した可能性があります。下半分は、たとえばRNAワールドでタンパク質合成が始まり、リボ核タンパク質ワールド( RNPワールド)に変わったときに、拡張として後から進化した可能性があります。この提案されたシナリオは、ゲノムタグ仮説と呼ばれています。実際、tRNAとtRNAのような凝集体は、今日でも複製に対して重要な触媒的影響(つまり、リボザイムとして)を持っています。これらの役割は、RNAワールドの「分子(または化学)化石」と見なすことができます。[43] 2021年3月、研究者らは、転移RNAの初期の形態が生命の非常に初期の発達、つまりアビオジェネシスにおける複製リボザイム分子であった可能性があることを示唆する証拠を報告した。[44] [45]
tRNA由来の断片
tRNA由来の断片(またはtRF)は、成熟tRNAまたは前駆体転写産物の切断後に出現する短い分子である。[46] [47] [48] [49]細胞質tRNAとミトコンドリアtRNAはどちらも断片を生成できる。[50]成熟tRNAに由来すると考えられているtRFの構造タイプは少なくとも4つあり、比較的長いtRNA半分と短い5'-tRF、3'-tRF、i-tRFが含まれる。[46] [50] [51]前駆体tRNAは切断され、5'リーダーまたは3'トレイル配列から分子を生成することができる。切断酵素には、アンジオジェニン、ダイサー、RNase Z、RNase Pなどがある。[46] [47]特にアンジオジェニンの場合、tRFは3'末端に特徴的に珍しい環状リン酸を持ち、5'末端にヒドロキシル基を持っている。[52] tRFはRNA干渉、特にtRNAを複製のプライマーとして使用するレトロウイルスやレトロトランスポゾンの抑制に役割を果たしているようだ。アンジオジェニンによって切断された半分のtRNAはtiRNAとしても知られている。piRNAとして機能するものを含むより小さな断片の生合成はあまり理解されていない。[53]
tRF には、性別、人種、病気の状態によって大きな変化を示すなど、複数の依存性と役割があります。[50] [54] [55]機能的には、Ago にロードされて RNAi 経路を介して作用したり、[48] [51] [56]ストレス顆粒の形成に関与したり、[57] RNA 結合タンパク質から mRNA を置換したり[58]翻訳を阻害したりします。[59]システムまたは生物レベルでは、4 種類の tRF が多様な活動スペクトルを持っています。機能的には、tRF はウイルス感染、[60]がん、[51]細胞増殖[52]および代謝のエピジェネティックな世代間調節に関連しています。[61]
tRFは人間に限らず、複数の生物に存在することが示されている。[51] [62] [63] [64]
tRFについてさらに詳しく知りたい人のために、ミトコンドリアおよび核tRNAフラグメントのインタラクティブな探索のためのフレームワーク(MINTbase)[65] [66]と転写RNA関連フラグメントのリレーショナルデータベース(tRFdb)[67]の2つのオンラインツールが利用可能です。MINTbaseは、ゲノムに依存しないtRFライセンスプレート(またはMINTコード)と呼ばれるtRFの命名スキームも提供しており、このスキームはRNA配列をより短い文字列に圧縮します。
改変tRNA
アンチコドンやアクセプターステムが改変された tRNA は、遺伝コードを変更するために使用できます。科学者は、コドン (センスコドンと終止コドン) を再利用して、開始 (開始コドンを参照) と伸長の両方においてアミノ酸 (天然および新規) を受け入れることに成功しました。
1990年、tRNAfMet2
CUA(tRNAから改変)fMet2
CAU遺伝子 metY を大腸菌に挿入すると、強力なシャイン・ダルガルノ配列が先行する限り、UAG 終止コドンでタンパク質合成が開始される。開始時には、従来のホルミルメチオニンだけでなく、グルタミル tRNA 合成酵素も新しい tRNA を認識するため、ホルミルグルタミンも挿入される。[68]この実験は 1993 年に繰り返され、今度はメチオニル tRNA ホルミルトランスフェラーゼによって認識されるように改変された伸長 tRNA が使用された。[69]同様の結果がマイコバクテリウムでも得られた。[70]その後の実験では、新しい tRNA は通常の AUG 開始コドンと直交しており、ゲノム再コード化された大腸菌株で検出可能なオフターゲット翻訳開始イベントは見られなかったことが示された。[71]
tRNAの生合成
真核細胞では、tRNAは核内でRNAポリメラーゼIIIによってプレtRNAとして転写される。 [72] RNAポリメラーゼIIIは、5'遺伝子内制御領域(5'-ICR、D制御領域、またはAボックス)とtRNA遺伝子内の3'-ICR(T制御領域またはBボックス)という2つの高度に保存された下流プロモーター配列を認識する。[2] [73] [74]最初のプロモーターは成熟tRNAの+8で始まり、2番目のプロモーターは最初のプロモーターの30〜60ヌクレオチド下流に位置する。転写は4つ以上のチミジン の伸長後に終了する。[2] [74]

プレtRNAは核内で広範囲にわたる修飾を受ける。一部のプレtRNAには、機能的なtRNA分子を形成するためにスプライシングまたは切断されるイントロンが含まれる。 [75]細菌ではこれらは自己スプライシングするが、真核生物と古細菌ではtRNAスプライシングエンドヌクレアーゼによって除去される。[76]真核生物のプレtRNAには、エンドヌクレアーゼによるtRNAイントロンの認識と正確なスプライシングに重要なバルジヘリックスバルジ(BHB)構造モチーフが含まれる。[77]このモチーフの位置と構造は進化的に保存されている。しかし、単細胞藻類などの一部の生物は、BHBモチーフの非標準的な位置や、スプライシングされたイントロン配列の5'末端と3'末端を持っている。[77] 5′配列はRNase Pによって除去され、[78] 3′末端はtRNase Z酵素によって除去される。[79] 注目すべき例外は古細菌 Nanoarchaeum equitansで、 RNase P酵素を持たず、成熟tRNAの5′末端から転写が始まるようにプロモーターが配置されている。[80] テンプレート化されていない3′ CCAテールはヌクレオチジルトランスフェラーゼによって付加される。[81] tRNAがLos1/ Xpo-tによって細胞質に輸出される前に、[82] [83] tRNAはアミノアシル化される。[84] プロセシングイベントの順序は保存されていない。例えば、酵母では、スプライシングは核ではなくミトコンドリア膜の細胞質側で行われる。[85]
歴史
tRNAの存在は、RNAアルファベットをタンパク質アルファベットに翻訳する能力を持つアダプター分子が存在するはずだという仮定に基づく「アダプター仮説」としてフランシス・クリックによって初めて仮説が立てられた。ポール・C・ザメクニック、マロン・ホーグランド、メアリー・ルイーズ・スティーブンソンがtRNAを発見した。[86] [87] [88]構造に関する重要な研究は、1960年代初頭にボストンの2人の研究者、アレックス・リッチとドナルド・カスパー、プリンストン大学のジャック・フレスコのグループ、およびキングス・カレッジ・ロンドンの英国のグループによって行われた。[89] 1965年にコーネル大学のロバート・W・ホーリーが一次構造を報告し、3つの二次構造を提案した。[90] tRNAは、ウィスコンシン州マディソンでロバート・M・ボックによって初めて結晶化された。[91]クローバーリーフ構造はその後の数年にわたる他の研究によって確認され[92] 、最終的に1974年にX線結晶構造解析研究によって確認されました。アレクサンダー・リッチの指導の下で研究していたキム・ソンホウとアーロン・クルーグが率いる英国のグループの2つの独立したグループが、1年以内に同じ結晶構造解析の発見を発表しました。[93] [94]
臨床的関連性
アミノアシル化の阻害は、いくつかの疾患の治療に有用なアプローチとなる可能性がある。癌細胞は、健康な細胞と比較して、アミノアシル化の阻害に対して比較的脆弱である可能性がある。癌やウイルス生物学に関連するタンパク質合成は、多くの場合、特定のtRNA分子に大きく依存している。例えば、肝臓癌の場合、tRNA-Lys-CUUにリジンを充填すると、肝臓癌細胞の増殖と転移が維持されるが、健康な細胞は、細胞生理学を支えるためにこのtRNAへの依存度がはるかに低い。[95]同様に、E型肝炎ウイルスは、感染していない細胞に関連するものとは大幅に異なるtRNAランドスケープを必要とする。[96]したがって、特定のtRNA種のアミノアシル化の阻害は、多数の疾患の合理的治療のための有望な新しい手段であると考えられている。
参照
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外部リンク
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