物件 偽遺伝子は通常、既知の遺伝子との類似性または相同性 と、何らかの機能の喪失の組み合わせによって特徴付けられます。つまり、すべての偽遺伝子は、何らかの機能遺伝子と類似したDNA配列を持っていますが、通常は機能的な最終タンパク質産物を生成することができません。 [ 1 ] 類似性と機能喪失という2つの要件は、生物学的に証明されるのではなく、配列アライメントによって示唆されることが多いため、ゲノム内で偽遺伝子を識別して特徴付けることは難しい場合があります。
相同性は、偽遺伝子と既知の遺伝子のDNA配列間の配列類似性によって示唆されます。2つの配列をアラインメントした後、同一の 塩基対 の割合が計算されます。配列同一性が高いということは、これら2つの配列が共通の祖先配列から分岐した(相同である)可能性が非常に高く、これら2つの配列が独立して進化した可能性が非常に低いことを意味します(収斂進化を 参照)。 機能不全は様々な形で現れる可能性があります。通常、遺伝子は完全に機能するタンパク質を生成するために、転写 、プレmRNAプロセシング 、翻訳 、タンパク質フォールディング といった複数の段階を経る必要があります。これらの段階のいずれかが失敗すると、その配列は機能不全とみなされる可能性があります。ハイスループット偽遺伝子同定において、最も一般的に同定される機能不全は、早期終止コドン とフレームシフト であり、これらはほぼ例外なく機能的なタンパク質産物の翻訳を阻害します。 RNA 遺伝子の偽遺伝子は、翻訳される必要がないため「読み枠」がなく、通常は発見がより困難です。rRNA偽遺伝子の多くは、rDNAアレイ末端の変化に基づいて同定されています。[ 2 ]
偽遺伝子は分子遺伝学的研究を複雑にする可能性がある。例えば、PCR による遺伝子の増幅は、類似した配列を持つ偽遺伝子も同時に増幅してしまうことがある。これはPCRバイアス、あるいは増幅バイアスとして知られている。同様に、偽遺伝子がゲノム 配列において遺伝子として注釈付けされる こともある。
処理された偽遺伝子は、遺伝子予測 プログラムにとって問題となることが多く、実際の遺伝子やエクソンと誤認されることが多い。処理された偽遺伝子の識別は、遺伝子予測方法の精度向上に役立つと提案されている。[ 3 ]
2014年には、140個のヒト偽遺伝子が翻訳されることが示された。[ 4 ] しかし、タンパク質産物の機能(もしあれば)は不明である。
種類と起源 古典的および処理された偽遺伝子形成のメカニズム[ 5 ] [ 6 ] 偽遺伝子には主に4つの種類があり、それぞれ発生機序と特徴が異なります。偽遺伝子の分類は以下のとおりです。
未処理(複製)偽遺伝子が発生する一つの方法 遺伝子重複は 、ゲノムの進化におけるもう一つの一般的で重要なプロセスです。機能的な遺伝子のコピーは、例えば、ミスアラインメントした染色体上の反復SINE配列での 相同組換え によって引き起こされる遺伝子重複イベントの結果として生じ、その後、コピーが元の遺伝子の機能を失う原因となる突然変異を獲得する可能性があります。重複した偽遺伝子は通常、完全な エクソン -イントロン 構造や調節配列など、遺伝子と同じ特性をすべて持っています。完全な機能的なコピーがまだ存在するため、重複した遺伝子の機能が失われても、通常は生物の適応度 にはほとんど影響がありません。いくつかの進化モデルによると、共有された重複偽遺伝子は、ヒトと他の霊長類の進化上の関連性を示しています。[ 16 ] 偽遺伝子化が遺伝子重複によるものである場合、遺伝子が選択圧 を受けていない限り、通常は遺伝子重複後最初の数百万年以内に発生します。[ 17 ] 遺伝子重複は機能的冗長性 を生み出し、通常は2つの同一の遺伝子を持つことは有利ではありません。 2 つの遺伝子のいずれかの構造または機能を阻害する突然変異は有害ではなく、選択プロセスによって除去されません。その結果、突然変異した遺伝子は徐々に偽遺伝子となり、発現しないか機能しなくなります。このような進化の運命は、集団遺伝学モデル [ 18 ] [ 19 ] およびゲノム解析 [ 17 ] [ 20 ] によって示されています。進化の文脈では、これらの偽遺伝子は削除されるか、親遺伝子と非常に異なるため、もはや識別できなくなります。比較的若い偽遺伝子は、配列の類似性によって認識できます。[ 21 ]
多型性偽遺伝子 一部の偽遺伝子は、一部の個体ではそのまま残っていますが、他の個体では不活性化(変異)しています。Abascal らは、これらの偽遺伝子を「多型性」と呼んでいます。[ 25 ] これらは、機能喪失(LoF)変異に関してホモ接合であること が多く、つまり、多くの人では両方のコピーが不活性化しています。多型性偽遺伝子は、必須遺伝子とは対照的に、非必須(または不要)遺伝子を表すことが多く、頻繁な変異は、実際にはそれらを非必須と確立するための基準となっています。[ 26 ] Lopes-Marques らは、多型性偽遺伝子を、LoF アレルを 1% を超える頻度で(世界または特定のサブ集団で)持ち、ホモ接合のときに明らかな病原性の結果がない遺伝子と定義しています。[ 27 ]
転写されるが機能しない偽遺伝子 偽遺伝子の中には明らかに転写されているものもありますが、だからといって機能があるとは限りません。偽遺伝子は機能を持たないと想定されているため、機能が厳密にテストされた偽遺伝子はごくわずかで、ほとんどの場合、それは正しいです。偽遺伝子の一例として、シロイヌナズナ の葉緑体 で発現するリボソームタンパク質 偽遺伝子であるΔrps16があります。Δrps16の欠失変異体は 、さまざまな条件下でテストすると完全に正常であるように見え、これらの変異体では翻訳 全般が変化しません。実際、Δrps16の機能は、機能的なS16タンパク質を葉緑体に供給する核遺伝子コピーによって置き換えられています。[ 28 ]
偽遺伝子機能の例 偽遺伝子の大部分は機能を失っているが、偽遺伝子が元の機能または類似の機能を取り戻したり、新しい機能を獲得したりした例もいくつかある。ヒトゲノムでは、 当初は偽遺伝子として分類されていたが、後に必ずしもタンパク質をコードするわけではないが、機能的な役割を持つことが判明した例が多数確認されている。[ 29 ] [ 30 ]
例としては、以下のようなものがあります。
タンパク質をコードする: "偽偽 遺伝子ショウジョウバエ DNAシーケンシング 技術の急速な普及により、遺伝子予測 技術を用いて多くの偽遺伝子が同定されるようになった。偽遺伝子は、予測されたmRNA配列に早期終止コドン が現れることで同定されることが多く、理論的には、これは元の遺伝子の正常なタンパク質産物の合成( 翻訳 )を阻害するはずである。哺乳類では、このような早期終止コドンの翻訳読み飛ばし が報告されている。上の図で示唆されているように、このような読み飛ばしによって生じたタンパク質産物のごく一部は、依然として認識可能であり、何らかの機能を発揮する可能性がある。もしそうであれば、偽遺伝子は自然選択の対象となる可能性がある。これは、 ショウジョウバエ 種 の進化の過程で起こったと考えられる。
2016年に、複数のショウジョウバエ 種で予測された4つの偽遺伝子が、実際には生物学的に重要な機能を持つタンパク質をコードしていることが報告され、[ 31 ] 「このような『偽偽遺伝子』は広く見られる現象である可能性を示唆している」とされた。例えば、遺伝子Ir75a由来の機能タンパク質(グルタミン酸嗅覚受容体)は ニューロン にのみ存在する。この、 in silico 解析では偽遺伝子として分類される可能性のある組織特異的な生物学的機能遺伝子の発見は、配列データの解析を複雑にする。[ 31 ] ショウジョウバエの 別の偽偽遺伝子はjingweiで あり、[ 32 ] [ 33 ] これは生体内で機能的な アルコール脱水素 酵素をコードしている。[ 34 ]
2012年時点では、ヒトゲノムには約12,000~14,000個の偽遺伝子が存在すると考えられていた。[ 35 ] 2016年のペプチド質量分析法を用いたプロテオ ゲノミクス 解析では、16,271個の遺伝子または遺伝子クラスターから生成される少なくとも19,262個のヒトタンパク質が同定され、これまで偽遺伝子と考えられていた8個の新しいタンパク質コード遺伝子が同定された。[ 36 ] 以前の解析では、これまで偽遺伝子と考えられていたヒトPGAM4 (ホスホグリセリン酸ムターゼ)[ 37 ] が機能的であるだけでなく、変異すると不妊症を引き起こすことも判明した。[ 38 ] [ 39 ]
原核生物にも多数の偽偽遺伝子が発見されており、必須遺伝子における終止コドン置換の一部は保持され、むしろ正の選択を受けているように見える。[ 40 ] [ 41 ]
細菌偽遺伝子 偽遺伝子は細菌 に見られる。[ 51 ] そのほとんどは自由生活性ではない細菌に見られる。つまり、それらは共生生物 か偏性細胞内寄生体 である。そのため、代謝やDNA修復に関連する遺伝子など、自由生活性細菌に必要な多くの遺伝子を必要としない。しかし、機能遺伝子 が最初に失われる順序はない。例えば、らい菌 の最も古い偽遺伝子はRNAポリメラーゼ と二次代謝産物 の生合成 にあるが、赤痢菌 とチフス菌 の最も古い偽遺伝子はDNA複製 、組換え、修復 にある。[ 52 ]
偽遺伝子を持つ細菌のほとんどは共生生物か絶対細胞内寄生体であるため、ゲノムサイズは最終的に縮小します。極端な例として、絶対寄生体でありハンセン病の原因菌であるらい菌 (Mycobacterium leprae )のゲノムが挙げられます。らい菌には1,133個の偽遺伝子があり、転写産物 の約50%を占めていると報告されています。[ 52 ] 偽遺伝子とゲノム縮小の影響は、同じ科の病原菌であるMycobacterium marinumと比較するとさらに明らかになります。Mycobacterium marinumは 宿主 外でも生存できるため、 らい菌 よりもゲノムが大きくなっています。そのため、ゲノムには生存に必要な遺伝子が含まれている必要があります。[ 53 ]
ゲノム縮小は偽遺伝子を 取り除くことで不要な遺伝子に焦点を当てているが、宿主からの選択圧によって保持される遺伝子が変わることがある。Verrucomicrobiota門の共生生物の場合、マンデラリド経路をコードする遺伝子のコピーが7つ追加されている。[ 54 ] 宿主であるLissoclinum 属の種は、防御機構の一部としてマンデラリドを使用している。[ 54 ]
ブフネラ・アフィディコラでは、 エピスタシス と遺伝子喪失のドミノ理論の関係が観察された。ドミノ理論は、細胞プロセスの1つの遺伝子が不活性化されると、関連する他の遺伝子の選択が緩和され、遺伝子喪失につながることを示唆している。[ 52 ] ブフネラ・アフィディコラ と大腸菌 を比較すると、 正のエピスタシスは遺伝子喪失を促進し、負のエピスタシスはそれを妨げることがわかった。
らい菌 と結核菌 のproS遺伝子座。らい菌 には3つの偽遺伝子(十字で示す)があり、これらは結核菌 にも機能的な相同遺伝子が存在する。相同遺伝子は同じ色と細い青色の縦線で示されている。Coleら(2001)[ 55 ]を改変。
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外部リンク 偽遺伝子相互作用データベース、miRNA-偽遺伝子およびタンパク質-偽遺伝子相互作用マップデータベース イェール大学偽遺伝子データベース ホップシゲンデータベース(相同処理済み偽遺伝子) RCPedia - 処理済み偽遺伝子データベース