構造と機能
エンドレプリケーションの問題 DNA複製中の遅延鎖 DNA複製中、DNAポリメラーゼは 親鎖の3'末端 に存在する配列を複製することはできません。これは、DNA合成の一方向性モードの結果です。DNAポリメラーゼは既存の3'末端にのみ新しいヌクレオチドを付加することができ(つまり、合成は5'-3'方向に進行します)、そのため複製を開始するにはプライマー が必要です。リーディング鎖(複製フォーク内で5'-3'方向に配向)では、DNAポリメラーゼは開始点から鎖の末端まで連続的に複製し、その後プライマー(RNA でできている)が切り出されてDNAに置き換えられます。しかし、ラギング鎖は複製フォークに対して3'-5'方向に配向しているため、DNAポリメラーゼによる連続的な複製は不可能であり、開始点からさらに5'方向にプライマーを繰り返し合成する不連続な複製が必要となります(ラギング鎖複製を 参照)。ラギング鎖複製に関与する最後のプライマーは、鋳型の 3' 末端付近 (ラギング鎖の潜在的な 5' 末端に相当) に位置します。当初は、最後のプライマーは鋳型の末端に位置すると考えられており、除去されると、プライマーを DNA に置き換える DNA ポリメラーゼ (真核生物では DNA-Pol δ) [ 注 1 ] は、ラギング鎖の 5' 末端から「置換 DNA」を合成できなくなり、最後のプライマーと対合していた鋳型ヌクレオチドは複製されないと考えられていました。[ 10 ] その後、最後のラギング鎖プライマーが鋳型の 3' 末端に正確に配置されるかどうか疑問視され、培養ヒト細胞の DNA が細胞分裂 ごとに 50~100塩基 対短縮されるという発見と一致する、約 70~100 ヌクレオチド離れた場所に合成されることが実証されました。[ 11 ]
この過程でコード配列が分解されると、重要な遺伝情報が失われる可能性があります。テロメアは、線状染色体の末端に位置する非コード反復配列であり、その背後にあるコード配列の緩衝材として機能します。テロメアは末端配列を「覆い」、DNA複製過程で徐々に分解されます。
「末端複製問題」は線状染色体に特有のものであり、環状染色体にはDNAポリメラーゼが届かない末端は存在しない。そのため、環状染色体に依存するほとんどの原核生物は テロメアを持たない。[ 12 ] しかし、細菌 染色体のごく一部(ストレプトマイ セス、アグロバクテリウム 、ボレリア など)は線状であり、テロメアを持つが、その構造と機能は真核生物の染色体のテロメアとは大きく異なる。細菌テロメアの既知の構造は、線状染色体の末端に結合したタンパク質 、または線状染色体の末端にある一本鎖DNAのヘアピンループの形をとる。[ 13 ]
テロメアの末端とシェルター シェルテリンはテロメアのTループ形成を調整する。 テロメアの3'末端には300塩基対の突出部があり、これがテロメアの二本鎖部分に侵入してTループと呼ばれる構造を形成する。このループは結び目に似ており、テロメアを安定化させ、DNA修復機構がテロメア末端を切断点として認識するのを防ぐ。テロメア末端で非相同末端結合が起こると、染色体融合が起こる。Tループは、シェルテリン複合体と呼ばれる複数のタンパク質によって維持されている。ヒトでは、シェルテリン複合体はTRF1 、TRF2 、TIN2 、POT1 、TPP1 、RAP1 という6つのタンパク質から構成されている。[ 14 ] 多くの種では、配列反復はグアニン に富んでおり、例えば脊椎動物 では TTAGGG である。[ 15 ] これにより、非ワトソンクリック塩基対形成を伴う特殊な DNA 構造であるG 四重鎖が 形成される。一本鎖または二本鎖 DNA の関与などに応じて、さまざまなサブタイプが存在する。繊毛虫( 脊椎動物 に見られるものと同様のテロメア反復配列を持つ) の 3' 突出部が、T ループではなく、それを収容する G 四重鎖を形成するという証拠がある。G 四重鎖は、DNA ポリメラーゼなどの酵素にとって障害となり、複製と転写の調節に関与していると考えられている。[ 16 ]
長さ テロメアの長さは種によって大きく異なり、酵母では約 300塩基対 [ 24 ] 、ヒトでは数キロベースに及び、通常はグアニンに 富む 6 ~ 8 塩基対長の繰り返し配列から構成されています。真核生物のテロメアは通常、 75 ~ 300 塩基の3' 一本鎖 DNA 突出部 で終端しており、これはテロメアの維持とキャッピングに不可欠です。一本鎖および二本鎖テロメア DNA に結合する複数のタンパク質が同定されています。[ 25 ] これらはテロメアの維持とキャッピングの両方に機能します。テロメアは、テロメア ループまたは T ループと呼ばれる大きなループ構造を形成します。ここでは、一本鎖 DNA が長い円状に巻き付いており、テロメア結合タンパク質 によって安定化されています。[ 26 ] Tループの末端では、一本鎖テロメアDNAが、二重らせんDNAを破壊するテロメア鎖と、2本の鎖のうちの1本との塩基対形成によって、二本鎖DNAの領域に保持されています。この三重鎖構造は、置換ループ またはDループと呼ばれます。[ 27 ] 2025年の最近の研究では、ビタミンD摂取量が多い人は、 細胞老化 の速度が遅くなる可能性があることが示唆されています。[ 28 ] この研究では、ビタミンDサプリメントが炎症を 軽減することによって、この短縮を軽減するのに役立つ可能性があることがわかりました。しかし、科学者は、ビタミンDはすべての慢性疾患に影響を与えるようには見えないため、万能薬ではないと警告しています。[ 29 ]
短縮
酸化損傷 Apart from the end replication problem, in vitro studies have shown that telomeres accumulate damage due to oxidative stress and that oxidative stress-mediated DNA damage has a major influence on telomere shortening in vivo . There is a multitude of ways in which oxidative stress, mediated by reactive oxygen species (ROS), can lead to DNA damage; however, it is yet unclear whether the elevated rate in telomeres is brought about by their inherent susceptibility or a diminished activity of DNA repair systems in these regions.[ 30] Despite widespread agreement of the findings, widespread flaws regarding measurement and sampling have been pointed out; for example, a suspected species and tissue dependency of oxidative damage to telomeres is said to be insufficiently accounted for.[ 31] Population-based studies have indicated an interaction between anti-oxidant intake and telomere length. In the Long Island Breast Cancer Study Project (LIBCSP), authors found a moderate increase in breast cancer risk among women with the shortest telomeres and lower dietary intake of beta carotene, vitamin C or E.[ 32] These results [ 33] suggest that cancer risk due to telomere shortening may interact with other mechanisms of DNA damage, specifically oxidative stress.
Association with aging Although telomeres shorten during the lifetime of an individual, it is telomere shortening-rate rather than telomere length that is associated with the human lifespan.[ 34] Critically short telomeres trigger a DNA damage response and cellular senescence .[ 34] Mice have much longer telomeres, but a greatly accelerated telomere shortening-rate and greatly reduced lifespan compared to humans and elephants.[ 35]
Telomere shortening is associated with aging, mortality, and aging-related diseases in experimental animals.[ 8] [ 36] Although many factors can affect human lifespan, such as smoking, diet, and exercise, as persons approach the upper limit of human life expectancy , longer telomeres may be associated with lifespan.[ 37] However, vitamin D3 supplementation has been shown to significantly reduce telomere shortening over four years compared to a placebo, thus preventing nearly three years' worth of cellular aging,[ 38] which may help offset telomere truncation over time.
静脈内間葉系幹細胞(MSC)療法もテロメア伸長と関連付けられています。19症例(18人、年齢34~78歳)の後ろ向き症例研究では、MSC投与後に94%の症例で末梢血テロメア長の測定可能な増加が報告され、平均増加は+2.47 kb/細胞(P<0.001)でした。これは、hTERT mRNAを運ぶMSC由来の細胞外小胞が受容細胞内の内因性テロメラーゼを活性化する可能性があることを示唆しています。[ 39 ]
心理的ストレスの潜在的な影響 メタ分析では、知覚される 心理的ストレス の増加はテロメア長のわずかな減少と関連していることがわかったが、 出版バイアス を考慮すると、これらの関連性は有意な関連性がなくなる。 ストレスや逆境への曝露の統合バイオマーカーとしてのテロメアに関する文献は、横断的研究や相関研究が中心であり、因果関係の解釈が問題となる。[ 33 ] [ 40 ] 2020年のレビューでは、心理社会的ストレスとテロメア長の関係は、子宮内または幼少期に経験したストレスで最も強いようだと主張した。[ 41 ]
延長 平均的な細胞は、細胞死に至るまでに50回から70回分裂します。細胞が分裂するにつれて、染色体の末端にあるテロメアは短くなります。ヘイフリック限界 とは、テロメアが短くなりすぎて細胞分裂が阻害され、細胞が老化状態に入るまでの、細胞分裂回数の理論的な限界値です。 細胞分裂の制限現象は、レオナルド・ヘイフリック によって最初に観察され、現在ではヘイフリック限界 と呼ばれています。[ 42 ] [ 43 ] その後、ジェロン社の創設者マイケル・D・ウェストが ジェロン社 に組織した科学者グループによって、テロメア短縮とヘイフリック限界を結びつける重要な発見がなされました。[ 44 ] テロメラーゼの触媒成分のクローニングにより、テロメア短縮を防ぐのに十分なレベルでテロメラーゼを発現させることでヒト細胞を不死化できるかどうかをテストする実験が可能になりました。テロメラーゼは、1998年にサイエンス誌に掲載された論文で細胞 寿命を延ばすことができることが実証され、現在ではヒト体細胞を不死化できるものとして広く認識されています。[ 45 ]
長寿の海鳥 に関する2つの研究は、テロメアの役割がまだ十分に理解されていないことを示している。2003年、科学者たちはヒメウミツバメ (Oceanodroma leucorhoa )のテロメアが年齢とともに長くなるように見えることを観察した。これはテロメアのこのような挙動が観察された最初の例である。[ 46 ]
ある研究では、異なる哺乳類種のテロメア長は寿命と正の相関ではなく負の相関があることが報告されており、テロメア長が寿命に与える影響は依然として議論の余地があると結論付けられています。[ 47 ] 人間において、テロメア長が重要な認知能力や身体能力に関して正常な老化の重要なバイオマーカーであるという証拠はほとんどありません。[ 48 ]
疾病リスクに関する研究 加齢に伴う疾患リスクは、テロメア短縮、老化細胞 、またはSASP(老化関連分泌表現型 )と関連している可能性がある。[ 34 ] 細胞が分裂するたびに、テロメアは短くなる。十分な分裂の後、テロメアは消失し、細胞は分裂できなくなり、老化につながる。老化細胞は、加齢、癌、およびその他の疾患と関連している。[ 53 ]
測定 真核細胞の平均テロメア長を評価するために、現在いくつかの手法が用いられている。1つの方法は、末端制限断片(TRF)サザンブロット法である。[ 54 ] [ 55 ] TRF画像を処理するソフトウェアであるWebベースのテロメア長アナライザー(WALTER )がある。 [ 56 ] テロメア長のリアルタイムPCR アッセイでは、細胞の平均テロメア長に比例することが示されているテロメア対単一コピー遺伝子(T/S)比を決定する。[ 57 ]
全ゲノムシーケンス (WGS)実験からテロメアの長さを推定するためのツールも開発されています。これらには、TelSeq [ 58 ] 、 Telomerecat [ 59 ] 、telomereHunter [ 60 ] などがあります。WGSからの長さの推定は、通常、テロメアシーケンスリードを区別し、その数のリードを生成したテロメアの長さを推測することによって機能します。これらの方法は、PCR や TRF などの既存の推定方法と相関することが示されています。フロー FISH は 、ヒト白血球のテロメアの長さを定量化するために使用されます。フロー FISH でテロメアの平均長を測定する半自動化された方法は、2006 年に Nature Protocols に掲載されました。[ 61 ]
複数の企業がテロメア長測定サービスを提供しているが、これらの測定が広く臨床や個人で使用できるかどうかは疑問視されている。[ 62 ] [ 63 ] ノーベル賞受賞者で、ある企業の共同創設者であるエリザベス・ブラックバーンは 、テロメア長測定の臨床的有用性を提唱した。[ 64 ]
野生生物において 過去 30 年間、生態進化研究では、野生生物のテロメアに対する生活史特性と環境条件の関連性が調査されてきました。これらの研究のほとんどは恒温動物 、つまり鳥類と哺乳類で行われてきました。テロメア長の遺伝の証拠は提供されてきましたが、遺伝率の 推定値は種内および種間で大きく異なります。[ 65 ] 脊椎動物では、年齢とテロメア長は負の相関関係にあることが多いですが、この減少は分類群によって異なり、テロメア長の推定に使用される方法によって影響を受けます。[ 66 ] 対照的に、入手可能な情報では、脊椎動物全体でテロメア長に性差がないことが示されています。[ 67 ] 系統発生と体サイズや生活のペースなどの生活史特性もテロメアの動態に影響を与える可能性があります。たとえば、鳥類と哺乳類の種全体で説明されています。[ 68 ] メタ分析により、さまざまなストレス要因(病原体感染、競争、繁殖努力、高活動レベルなど)への曝露が、さまざまな動物分類群においてテロメアの短縮と関連していることが確認された。[ 69 ]
変温動物 やその他の非哺乳類生物に関する研究では、テロメア侵食の普遍的なモデルは存在せず、むしろ後生動物全体 で関連する動態に大きなばらつきがあり、さらに小さな分類群内でもこれらのパターンは多様であることが明らかになっている。[ 70 ]
注記 ↑ 複製時には、複数のDNAポリメラーゼが関与する。
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