DNAミスマッチ修復経路の図。最初の列は真核生物におけるミスマッチ修復を示し、2番目の列はほとんどの細菌における修復を示しています。3番目の列は、大腸菌 におけるミスマッチ修復を具体的に示しています。結腸直腸腺癌 におけるDNAミスマッチ修復に伴うMLH1 染色性の消失(画像左)と良性結腸直腸粘膜(画像右)を示す顕微鏡写真。 DNAミスマッチ修復 (MMR )は、 DNA複製 や組換え 中に発生する塩基 の誤った挿入、欠失、誤取り込みを認識して修復するシステムであり、一部のDNA損傷も 修復します 。[ 1 ] [ 2 ]
ミスマッチ修復は鎖特異的である。DNA合成の過程で、新たに合成された(娘)鎖にはエラーが含まれることが多い。修復を開始するには、ミスマッチ修復機構が新たに合成された鎖を鋳型(親)鎖から区別する必要がある。グラム陰性細菌では、一時的なヘミメチル化 によって鎖が区別される(親鎖はメチル化され 、娘鎖はメチル化されない)。しかし、他の原核生物や真核生物では、その正確なメカニズムは明らかになっていない。真核生物では、新たに合成されたラギング鎖DNAに(DNAリガーゼによって結合される前に)一時的にニック が存在し、ミスマッチ校正システムを適切な鎖に誘導するシグナルを提供していると考えられている。これは、これらのニックがリーディング鎖に存在しなければならないことを示唆しており、最近その証拠が見つかっている。[ 3 ] 最近の研究[ 4 ] では、ニックはRFC依存的に複製スライディングクランプである増殖細胞核抗原(PCNA)を特定の方向にロードする部位であり、ドーナツ型のタンパク質の一方の面がニックの3'-OH末端に隣接するようにロードされることが示されています。ロードされたPCNAは、ミスマッチとMutSalphaまたはMutSbetaが存在する場合に、MutLalphaエンドヌクレアーゼ [ 5 ] の作用を娘鎖に向けます。
DNA の超らせん構造 を破壊するような突然変異は、細胞の遺伝的安定性を損なう可能性を秘めている。損傷検出および修復システムが複製機構自体と同じくらい複雑であるという事実は、進化がDNAの忠実性をいかに重要視してきたかを物語っている。
塩基のミスマッチの例としては、G/T または A/C のペアリングが挙げられます(DNA 修復を参照)。ミスマッチは、DNA 複製中の塩基の 互変異性化 によって生じることが一般的です。損傷は、ミスマッチによって生じた変形を認識し、鋳型鎖と非鋳型鎖を決定し、誤って組み込まれた塩基を切除して正しいヌクレオチド に置き換えることによって修復されます。除去プロセスには、ミスマッチしたヌクレオチド自体だけでなく、新しく合成された DNA 鎖の数塩基対から数千塩基対が除去されることもあります。
ミスマッチ修復タンパク質 ミスマッチ修復は、原核生物から 真核生物 まで高度に保存されたプロセスである。ミスマッチ修復の最初の証拠は、肺炎球菌 (hexAおよびhexB遺伝子)から得られた。その後 、大腸菌 に関する研究により、突然変異によって 不活性化されると超変異株を引き起こす多数の遺伝子が特定された。そのため、これらの遺伝子産物は「Mut」タンパク質と呼ばれ、ミスマッチ修復システムの主要な活性成分である。これらのタンパク質のうち3つは、ミスマッチを検出して修復機構をそこに誘導するために不可欠である。MutS 、MutH 、 およびMutL(MutSはHexAのホモログであり、MutLはHexBのホモログである)。
MutSは二量体(MutS 2 )を形成し、娘鎖上のミスマッチ塩基を認識して変異DNAに結合します。MutHは娘DNA上のヘミメチル化部位に結合しますが、その作用は潜在的であり、 MutS-DNA複合体に結合し、MutS 2 とMutHの間の仲介役として働き、後者を活性化するMutL二量体(MutL 2 )との接触によってのみ活性化されます。DNAはループアウトされ、ミスマッチに最も近いd(GATC)メチル化部位を探します。この部位は最大1kb離れている可能性があります。MutS-DNA複合体によって活性化されると、MutHはヘミメチル化部位の近くで娘鎖を切断します。MutLはUvrD ヘリカーゼ (DNAヘリカーゼII)をリクルートし、2本の鎖を特定の3'から5'の極性で分離します。 MutSHL複合体全体は、ミスマッチの方向にDNA上を滑るように移動し、その過程で切除される鎖を遊離させる。複合体の後にはエキソヌクレアーゼが続き、一本鎖DNAの末端を消化する。どのエキソヌクレアーゼが動員されるかは、MutHがミスマッチのどちら側(5'側か3'側か)で鎖を切断するかによって決まる。MutHによって作られたニックがミスマッチの5'側にある場合は、RecJまたはExoVII(いずれも5'から3'方向のエキソヌクレアーゼ)が使用される。しかし、ニックがミスマッチの3'側にある場合は、ExoI (3'から5'方向の酵素)が使用される。
ミスマッチ部位を過ぎると、全過程は終了する。つまり、ミスマッチ部位自体とその周囲のヌクレオチドが完全に切除される。エキソヌクレアーゼによって生じた一本鎖ギャップは、DNAポリメラーゼIII(一本鎖結合タンパク質の助けを借りて)によって修復される。この修復にはもう一方の鎖が鋳型として用いられ、最終的にDNAリガーゼによって結合される。その後、DNAメチラーゼが娘鎖を速やかにメチル化する。
MutSホモログ MutS 2 二量体は結合するとDNA二重らせんを曲げ、約20塩基対を覆い隠す。弱いATPase活性を持ち、ATP の結合によって分子表面に三次構造が形成される。MutSの結晶構造 解析により、極めて非対称な構造であることが明らかになった。活性型は二量体であるが、ミスマッチ部位と相互作用するのは2つの半分のうちの1つだけである。
真核生物では、MutSホモログは2つの主要なヘテロ二量体、Msh2 /Msh6(MutSα)とMsh2 /Msh3(MutSβ)を形成する。MutSα経路は主に塩基置換と小ループミスマッチ修復に関与する。MutSβ経路も小ループ修復に関与するが、大ループ(約10ヌクレオチドのループ)修復にも関与する。ただし、MutSβは塩基置換を修復しない。
MutLホモログ MutLは弱いATPase活性も持ち(移動にATPを利用する)、MutSおよびMutHと複合体を形成することで、DNA上のMutSの結合部位を増加させる。
しかし、UvrDのプロセス性(酵素が解離する前にDNAに沿って移動できる距離)はわずか約40~50 bpです。MutHによって作られたニックとミスマッチ間の距離は平均約600 bpにもなるため、別のUvrDがロードされない場合、ほどかれた部分は相補鎖に再アニーリングすることができ、プロセスが最初からやり直されます。しかし、MutLの助けがあると、 UvrDのロード速度 が大幅に増加します。個々のUvrD分子のプロセス性(およびATP利用)は同じままですが、DNAへの全体的な影響は著しく増大します。各UvrDが40~50 bpのDNAをほどき、解離し、すぐに別のUvrDに置き換えられてプロセスが繰り返されるため、DNAが再アニーリングする機会はありません。これにより、DNAの大きな部分がエキソヌクレアーゼ 消化にさらされ、誤ったDNAの迅速な切除(および後の置換)が可能になります。
真核生物には、MLH1、MLH2、MLH3、PMS1、PMS2と命名された5つのMutLホモログが存在する。これらはヘテロ二量体を形成し、大腸菌 のMutLと同様の働きをする。原核生物のMutLのヒトホモログは、MutLα、MutLβ、MutLγと呼ばれる3つの複合体を形成する。MutLα複合体はMLH1とPMS2サブユニットから構成され、MutLβヘテロ二量体はMLH1とPMS1から構成され、MutLγはMLH1とMLH3から構成される。MutLαは、ミスマッチやその他の必要なタンパク質であるMutSαとPCNAによって活性化されると、娘鎖に鎖切断を導入するエンドヌクレアーゼとして機能する。これらの鎖切断は、ミスマッチDNAを除去するエキソヌクレアーゼ活性の入り口となる。ミスマッチ修復におけるMutLβとMutLγの役割については、まだ十分に解明されていない。
MutH:大腸菌 とサルモネラ菌 に存在するエンドヌクレアーゼMutHは非常に弱いエンドヌクレアーゼ で、MutL(それ自体はMutSに結合している)に結合すると活性化される。非メチル化 DNAとヘミメチル化DNAの非メチル化鎖を切断するが、完全にメチル化されたDNAは切断しない。実験により、どちらの鎖もメチル化されていない場合、ミスマッチ修復はランダムであることが示されている。これらの挙動から、MutHがミスマッチを含む鎖を決定するという仮説が提唱された。MutHには真核生物の相同体は存在しない。そのエンドヌクレアーゼ機能は、5'-3'エキソヌクレアーゼ活性が特殊化されたMutL相同体によって担われている。真核生物において新たに合成された娘鎖からミスマッチを除去する際の鎖バイアスは、複製中に新たに生成された鎖中の岡崎フラグメント の遊離3'末端によってもたらされる可能性がある。
PCNAβスライディングクランプPCNA とβスライディングクランプは、それぞれMutSα/βとMutLと結合する。初期の報告では、PCNA-MutSα複合体がミスマッチ認識を増強する可能性が示唆されていたが[ 6 ] 、最近の研究では[ 7 ] 、PCNAの存在下または非存在下でMutSαのミスマッチに対する親和性に明らかな変化はないことが実証されている。さらに、試験管内で PCNAと相互作用できないMutSαの変異体は、野生型に近いレベルでミスマッチ認識とミスマッチ切除を実行する能力を示す。このような変異体は、5'鎖切断によって誘導される修復反応に欠陥があり、MutSαが反応の切除後の段階で機能することを初めて示唆している。
臨床的意義
ミスマッチ修復遺伝子のエピジェネティックなサイレンシング DNA修復欠損を伴う散発性癌では、DNA修復遺伝子の変異はまれですが、代わりにDNA修復遺伝子の発現を阻害するプロモーターメチル化などのエピジェネティックな変化が生じる傾向があります。 [ 9 ] 大腸癌の約13%はDNAミスマッチ修復に欠損があり、これは一般的にMLH1の喪失(9.8%)によるものですが、MSH2、MSH6、またはPMS2の喪失(いずれも1.5%以下)による場合もあります。[ 10 ] MLH1欠損を伴う散発性大腸癌のほとんどでは、欠損はMLH1プロモーターのメチル化によるものでした。[ 10 ] 他の癌種ではMLH1の喪失頻度が高く(下の表を参照)、これもまた主にMLH1 遺伝子 のプロモーターのメチル化によるものです。 MMR欠損の根底にある別のエピジェネティックメカニズムには、マイクロRNAの過剰発現が関与している可能性があり、例えば、miR-155 レベルは結腸直腸癌におけるMLH1またはMSH2の発現と逆相関している。[ 11 ]
MMRの不具合は、フィールド欠陥において発生する。 フィールド欠損 (フィールド発癌)とは、エピジェネティックまたは遺伝的変化によって前処理され、癌発生の素因となる上皮領域のことである。Rubin が指摘しているように、「変異表現型ヒト大腸腫瘍で発見された体細胞変異の 80% 以上が、最終的なクローン増殖の開始前に発生しているという証拠がある」[ 20 ] [ 21 ] 。同様に、Vogelstein ら[ 22 ] は、腫瘍で同定された体細胞変異の半分以上が、一見正常な細胞の成長中の前腫瘍期(フィールド欠損)で発生したことを指摘している。
腫瘍周囲のフィールド欠損(組織学的に正常な組織)では、MLH1の欠損がよく見られました(上の表を参照)。エピジェネティックにサイレンシングされた、あるいは変異したMLH1は、幹細胞に選択的優位性を与える可能性は低いものの、変異率の上昇を引き起こし、変異した遺伝子のうち1つ以上が細胞に選択的優位性をもたらす可能性があります。その後、欠損したMLH1 遺伝子は、変異した幹細胞がクローンを増殖させる際に、選択的にほぼ中立なパッセンジャー(ヒッチハイカー)遺伝子として運ばれる可能性があります。エピジェネティックに抑制されたMLH1 を持つクローンが継続的に存在すると、さらなる変異が生じ続け、その一部が腫瘍を形成する可能性があります。
MSIと免疫チェックポイント阻害薬への反応 MMRおよびミスマッチ修復変異は、抗PD1に対する反応者を調べた研究において、免疫チェックポイント阻害薬の有効性と関連していることが最初に観察された。[ 23 ] MSI陽性と抗PD1に対する良好な反応との関連性は、その後、前向き臨床試験で検証され、FDAによって承認された。[ 24 ]
MMRと突然変異頻度 ミスマッチやインデルを認識して修復することは細胞にとって重要です。なぜなら、それができないとマイクロサテライト不安定性(MSI)や自然 突然変異率の 上昇(突然変異表現型)につながるからです。他の癌種と比較すると、MMR欠損(MSI)癌は突然変異の頻度が非常に高く、紫外線や突然変異誘発性化学物質への多量の曝露によって引き起こされるメラノーマや肺癌[ 32 ]に近いものです。
非常に高い変異負荷に加えて、MMR欠損はヒトゲノム全体にわたる体細胞変異の異常な分布をもたらします。これは、MMRが遺伝子に富む早期複製ユークロマチン領域を優先的に保護することを示唆しています。[ 33 ] 対照的に、遺伝子に乏しく、後期複製ヘテロクロマチンゲノム領域は、多くのヒト腫瘍で高い変異率を示します。[ 34 ]
活性クロマチンのエピジェネティック マークであるヒストン修飾 H3K36me3 は、MSH2-MSH6(hMutSα)複合体をリクルートする能力を持つ。[ 35 ] 一貫して、H3K36me3レベルが高いヒトゲノム領域では、MMR活性による変異の蓄積が少ない。[ 31 ]
ミトコンドリアでは ミトコンドリアではいくつかのDNA修復経路が報告されているが、現在ではDNAミスマッチ修復経路が最も包括的に記述されている。[ 38 ] ミトコンドリアDNAの維持に関与するタンパク質は核遺伝子によってコードされ、ミトコンドリアに輸送される。[ 38 ] ヒト細胞の ミトコンドリアは、 核のDNAミスマッチ修復経路とは異なる経路を用いてDNA塩基対ミスマッチを修復 する ことができる 。 [ 39 ] このミトコンドリア特有のミスマッチ修復経路には、ミスマッチ修復のミスマッチ結合および認識ステップに関与すると考えられているYボックス結合タンパク質1(YB-1またはYBX1と命名)の活性が含まれる。[ 39 ] ミトコンドリアに特有のDNA修復機構は、ミトコンドリアDNAが酸化リン酸化系に近接していること、ひいてはATP産生に伴って生成されるDNA損傷性活性酸素種に近接していることを反映している可能性がある。[ 40 ]
エージング DNA損傷とは区別される突然変異が老化の主な原因であるという考え方は、実験的に有意な裏付けを得られていないが、広く受け入れられている。mutLホモログPms2に欠陥のあるマウスは、すべて の組織 で突然変異頻度が約100倍上昇しているが、老化が速くなっているようには見えない。[ 41 ] これらのマウスは、早期の発がんと雄の不妊を除いて、ほとんど正常な発達と生活を示す。
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外部リンク DNA修復( 2018年2月12日アーカイブ、 Wayback Machine) 米国国立医学図書館の 医学主題見出し (MeSH)における DNAミスマッチ修復