クラミジア・シッタシは、鳥類の風土病性クラミジア症、他の哺乳類における流行性アウトブレイク、およびヒトにおける呼吸器オウム病を引き起こす可能性のある致死性の細胞内細菌種です。潜在的な宿主は、野生の鳥や家禽のほか、牛、豚、羊、馬などです。C . psittaciは、鳥類間および哺乳類間で吸入、接触、または摂取によって伝染します。鳥類およびヒトにおけるオウム病は、多くの場合、インフルエンザ様症状で始まり、生命を脅かす肺炎になります。多くの株は、ストレスによって活性化されるまで鳥類内で休眠状態にあります。鳥類は、あらゆる種類の感染動物の残骸を餌とし、それらにアクセスできるため、クラミジア感染症の拡散において非常に優れた移動性の高い媒介者です。
鳥類のクラミジア・シッタシは全身性であることが多く、感染は無症状、重症、急性、または断続的な排出を伴う慢性となることがある。[ 2 ] [ 3 ] [ 4 ] 鳥類のC.シッタシ株は、呼吸器系の粘膜上皮細胞とマクロファージに感染する。敗血症が最終的に発症し、細菌はほとんどの臓器、結膜、および消化管の上皮細胞とマクロファージに局在する。卵を介して伝染することもある。ストレスは一般的に重篤な症状の発症を引き起こし、急速な悪化と死に至る。C.シッタシ株は病原性が類似しており、細胞培養で容易に増殖し、16S rRNA遺伝子の差異は0.8%未満であり、8つの既知の血清型に属する。すべてヒトに容易に伝染すると考えられる。
クラミジア・シッタシ血清型Aはオウム類に常在し、ヒト、他の哺乳類、カメ類に散発的な人獣共通感染症を引き起こしている。血清型Bはハトに常在し、七面鳥から分離されており、乳牛の群れの流産の原因としても特定されている。血清型CとDは、食肉処理場の作業員や鳥類と接触する人々にとって職業上の危険である。血清型Eの分離株(Cal-10、MPまたはMNとして知られる)は世界中のさまざまな鳥類宿主から得られており、1920年代から1930年代のヒトにおける流行に関連しているが、血清型Eの特定の宿主は特定されていない。M56およびWC血清型は、哺乳類における流行中に分離された。多くのC. psittaci株はバクテリオファージに感受性がある。

クラミジア・シッタシは、ライフサイクル中にいくつかの形態変化を起こす小型細菌(0.5μm)です。宿主間では基本小体(EB)として存在します。EBは生物学的に活性ではありませんが、環境ストレスに強く、宿主外でも生存できます。EBは、感染した鳥から小さな飛沫に乗って、感染していない鳥や人の肺へと移動し、感染を引き起こします。肺に入ると、EBはエンドソームと 呼ばれる小胞内の細胞に貪食作用によって取り込まれます。しかし、貪食された物質によく見られるように、EBはリソソームとの融合によって破壊されることはありません。代わりに、網状体へと形態変化し、エンドソーム内で複製を開始します。網状体は複製を完了するために、宿主の細胞機構の一部を利用する必要があります。その後、網状体は基本小体へと戻り、宿主細胞を死滅させた後、肺へと放出されます。その後、EBは同一生物内または新たな宿主において、新たな細胞に感染することができる。したがって、C. psittaciのライフサイクルは、新たな宿主に感染することはできるが複製できない基本体と、複製はできるが新たな感染を引き起こすことができない網状体とに分かれている。
C. psittaciによって引き起こされる病気であるオウム病は、1879 年にスイスで 7 人の人が熱帯のペットの鳥に接触した後に肺炎を発症したことが発見されたときに初めて特徴づけられました。原因となる病原体は不明でした。関連する細菌種であるChlamydia trachomatis は 1907 年に記述されましたが、人工培地で培養できなかったため、ウイルスであると想定されていました。1929 年から 1930 年の冬に、オウム病のパンデミックが米国とヨーロッパに広がりました。死亡率は 20% で、妊婦では 80% にも達しました。この病気の蔓延は最終的に、アルゼンチンから輸入されたアマゾンオウムへの接触によるものとされました。C . psittaciは 1930 年にオウム病の原因物質として特定されましたが、1960 年代に電子顕微鏡による検査が行われるまで細菌であるとは判明しませんでした。[ 5 ]
数十年間、クラミジア科にはクラミジア属のみが含まれていました。C . psittaci は、 1960 年代から 1999 年まで、この唯一の属の種として分類されていました。1999 年に、クラミジア目に 2 つの新しい科 (パラクラミジア科とシムカニア科) が割り当てられ、クラミジア科内では、クラミジア属がクラミジア属と新たに指定されたクラミドフィラ属の 2 つの属に分割され、C. psittaci はクラミドフィラ psittaciになりました。[ 1 ]しかし、この再分類は微生物学者の間で「完全に受け入れられたり採用されたりしたわけではなかった」[ 6 ]ため、「単一の元の属であるクラミジア属に戻ることになり、現在ではC. psittaciを含む 9 種すべてを包含しています」。[ 6 ] 2013年に再統合されたクラミジア属に新種が追加され、[ 7 ] 2014年にはさらに2種が追加されました。[ 8 ]
かつては哺乳類固有のC. psittaci abortion、C. psittaci feline、C. psittaci guinea pigに分類されていたものは、1999 年以降、 C. abortus、C. felis、C. caviae の3 つの別々の種となっています。[ 9 ] C. psittaciと考えられていたものの内部から、新しい種が引き続き記載されています。C. psittaci は宿主範囲が非常に広い病原体であるため、他のクラミジアと組み換える機会がたくさんあります。[ 8 ]
C. psittaciの遺伝子型は、免疫学的に関連があり、PCR で増幅できる ompA の部分配列によって定義されます。主なタイプは AF、E/B で、G、G1、G2、1V、6N、Mat116、R54、YP84、CPX0308、I、J は暫定的なものとみなされています。その後、これは 7 つの部分遺伝子 MLST スキームに拡張されました。MLST スキームは技術的には遺伝子型の割り当てとは異なる「配列タイプ」を生成しますが、[ 10 ]通常はいずれにしても遺伝子型のグループを復元します。[ 11 ]
系統樹は、 C. psittaciとC. abortusの間に比較的最近の分岐があることを示している。また、オウムから分離された 84/2334 のように、どちらかの種に属すると明確に定義された株の中間的な位置にある株も多数存在する。[ 11 ]
Vafin ら (2007) は、この中間的な位置は独自の種「C. parapsittaci」であるべきだと考えており、これには遺伝子型 C (株 GD、CT1、Par1)、D (NJ1、92-1293、TT3、7344/2)、G (株 Rostinovo-70、250、PP-87、KC-93)、F (株 VS225、7778B15)、および非グループ株 WC、84/2334、R54 が含まれる。遺伝子型 C、D、F は鳥類から分離され、G は旧ソ連の家畜の流産から分離され、WC は哺乳類から分離された。Rostinovo-70 株については、omp1、omp2、16S、23S、プラスミド (すべて部分) の配列が利用可能である。 G遺伝子型の株はすべて、84/2334と同じプラスミド配列を持ち、遺伝子型Cの3つの株と同じ23S配列を持っています。[ 12 ]
2017年に2つの暫定的な遺伝子型G1、G2が定義されました。これらも中間的な位置を反映していますが、著者はVafinの結果を知らなかったため、VafinのompA配列との比較は行われませんでした。[ 10 ]
2019年に新種C. buteonisが正式に発表された。この種はアカカタノスリから採取されたタイプ株RSHAのみで構成されている。この種は中間的な位置を占めている。[ 13 ]
Longbottom ら (2021) は 84/2334 の全ゲノムをシーケンスした。彼らは、その全ゲノムが、遺伝子型 G1 および G2 のゲノムとともに、プラスミドを持っているにもかかわらず (典型的なC. abortus は持っていない)、 C. psittaciよりもC. abortusに近いことを発見した。7 つの MLST ハウスキーピング遺伝子断片の解析でも、遺伝子型 1V について同じことが見出され、これら 3 つの遺伝子型と 84/2334 をC. abortusに移すという提案につながった。一方、C. buteonis はMSLT 上で C. abortusよりもC. psittaciに近いことが示され、全ゲノム NeighborNet 上では独自の長い枝を持つ中間的な位置づけであった。Vafin の 4 つの株は解析されなかった。WC と遺伝子型 C、D、F は、C. psittaciにしっかりと位置づけられた。[ 11 ]
クラミジア・シッタシ感染症も統合失調症と関連している。他の多くの種類の感染症も統合失調症と関連している。[ 14 ]
他のクラミジアと同様に、C. psittaci は細胞内病原体であり、そのためゲノムが大幅に縮小している。ほとんどのC. psittaciゲノムは 1,000 ~ 1,400 個のタンパク質をコードしている。Read らによって配列決定された 20 株すべてに合計 911 個のコア遺伝子が存在することが判明しており、これは各ゲノムに存在する遺伝子の 90% に相当する。[ 15 ]
症状やクロルヘキシジン(CHX)投与に加え、 補体結合反応、マイクロ免疫蛍光法、ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)検査を用いて診断を確定することができる。
この症状の治療には、テトラサイクリン系抗生物質またはマクロライド系抗生物質が用いられます。投与方法は、薬剤の種類によって静脈内投与または経口投与となります。治療は、発熱が治まってから10~14日間継続する必要があります。ただし、小児や妊婦にはテトラサイクリン系抗生物質は使用しないでください。イブプロフェンまたはアセトアミノフェン、および水分補給も併用されます。大麻やタバコの煙は避けてください。テトラサイクリン服用中は、乳製品の摂取も避けてください。