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| ネッタイシマカ | |
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科学的分類 
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| ドメイン： | 真核生物 |
| 王国： | 動物界 |
| 門: | 節足動物 |
| クラス： | 昆虫類 |
| 注文： | 双翅目 |
| 家族： | カ科 |
| 属: | ネッタイシマカ |
| 亜属： | オクレロタトゥス |
| 種： | A. テニオリンクス
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| 二名法名 | |
| ネッタイシマカ （ヴィーデマン、1821）
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| 同義語[1] [2] | |
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Aedes taeniorhynchus、または黒塩沼蚊は、カ科の蚊です。ベネズエラ馬脳炎[3]を含む脳炎ウイルスのキャリアであり、 Dirofilaria immitis [4]を媒介します。アメリカ大陸に生息し、哺乳類、爬虫類、鳥類を刺すことが知られています。他の蚊と同様に、 Ae. taeniorhynchus の成虫は血液と糖の組み合わせを食べて生き延びますが、メスは一般的に卵を産む前に血液を必要とします。 [5]
この蚊は、その発達、生理学的マーカー、および刺咬、飛翔、群がる行動の周期を含む行動パターンを調査するために研究されてきた。この種は周期的な周期で発達し、光と飛翔パターンに非常に敏感で、特定の羽ばたき周波数をもたらし、種の検出と性別の判別を可能にすることで知られている。[6] [7]
Ae. taeniorhynchusは人間にとって害獣として知られており、Ae. taeniorhynchusの個体数を制御するためのメカニズムが開発されている。米国はAe. taeniorhynchusの制御と封じ込めに数百万ドルを費やしてきた。[8]
分類
ドイツの昆虫学者クリスチャン・ルドルフ・ヴィルヘルム・ヴィーデマンは1821年にAe. ( Ochlerotatus ) taeniorhynchusを記載した。この種の別名にはCulex taeniorhynchus (Wiedemann, 1821)、Ochlerotatus taeniorhynchus (Wiedemann, 1821)、Culex damnosus (Say 1823)などがある。[9] [10]
Aedes niger はAedes portoricensisとしても知られ、 Ae. taeniorhynchusの亜種です。[11]最後の後足根関節が白の縞模様ではなく、大部分が黒色であることで識別できます。[11]フロリダに生息し、95マイル (153 km) も移動することができます。[11]
ガラパゴス諸島に生息するAe. taeniorhynchusの遺伝子に関するマイクロサテライトデータの解析により、沿岸部と高地の蚊の個体群の間に遺伝的差異が見られることがわかった。 [12]データは、両個体群間の遺伝子流動は最小限で、降雨量が多い期間にのみ発生することを示している。[12]遺伝的差異は、生息地の差異が種の適応と分岐を促し、最終的には将来の種分化につながったことを示唆している。[12]高地の蚊は、低いヘテロ接合性と低い対立遺伝子の豊富さとして現れる遺伝的多様性の低さにより、創始者効果の特徴的な個体群特性を示しており、これは乾燥期間中の卵の休眠に起因する可能性がある。 [12]
説明
Ae. taeniorhynchusの成虫は大部分が黒色で、白い縞模様の箇所がある。口吻の中央に1本の白い縞模様があり、脚の関節に続く脚の末端には複数の白い縞模様があり、後脚の最後の関節は完全に白色である。[11] Ae. taeniorhynchusの羽は細長く、鱗状の羽脈がある。[13] Ae. taeniorhynchusの進化的色彩の実験的調査では否定的な結果が得られた。[14] 暗闇、黒、白、または緑の背景に蛍光灯または日光の照明を当てた状態で飼育した蚊では、脂肪体にも頭部嚢、鞍部、または管腔にも色の変化は見られなかった。[14]この隠蔽色の欠如は、種に対する脅威が少ないためであると考えられている。この種の生息地は幼虫の成長に使用される一時的な水源であるため、この一時的な環境には捕食者が少なく、危険が比較的少ない。[14]
オスとメスは触角によって区別できる。オスは羽毛のような触角を持ち、メスは毛がまばらである。[13]
ノイズ検出
Ae. taeniorhynchus の群れは音で検知できる。0.3～3.4 kHz の周波数の騒音は、音量レベル 21 dB で 10～50 m 離れた場所から検知できる。音量レベルが 22～25 dB に上昇すると、蚊 1 匹の音は 2～5 cm 離れた場所からでも聞こえる。[7]蚊のオスとメスは羽ばたきの周波数でも区別でき、オスは 700～800 Hz、メスは 400～500 Hz である。[7]そのため、飛翔音は飛翔活動の判定や群れの性別の判別に利用されている。[要出典]
マイクロバイオーム
ネッタイシマカは、食事の影響を調節する特徴的な微生物叢を持っています。[15]ヒトスジシマカ[16]やネッタイシマカ[ 17 ]などのネッタイシマカでは、微生物叢の構成がオスとメスで異なることが報告されています。つまり、ヒトスジシマカでは、オスは花の蜜を吸って放線菌を獲得しますが、メスは吸血によって引き起こされる酸化還元ストレスのレベルを調節するシュードモナス亜綱（腸内細菌科など）を持っています。 [16]
類似種
Ae. taeniorhynchusと他の種との主な身体的特徴は、Ae . taeniorhynchusの体のいくつかの部分を覆う白い縞模様である。この種は他のネッタイシマカと同様に腹部の基部に縞模様があるが、Ae. taeniorhynchus は先端が白い触肢と口吻の中央に白い輪があるという独特の特徴も持つ。[13]
この種は、幼虫と成虫の微妙な違いを除けば、Aedes sollicitansに似ている。幼虫期には、 Ae. taeniorhynchusは呼吸管が短く、鱗片の先端は尖っておらず丸みを帯びており、鱗片の縁に並ぶ棘は鱗片の基部近くでは小さい。[11]成虫期には、Ae. taeniorhynchusはより小さく、大部分が黒色であるのに対し、Ae. sollicitans は金褐色である。[11]
この種は、その特殊な下肢構造によりTaeniorhynchus亜属に分類されるAedes jacobinaeとも類似しているが、脚の模様がないため別種とみなされている。 [18]同様に、この種は、一般にアジアタイガーモスキートとして知られるAedes albopictusとも区別できる。Ae . taeniorhynchusはAe. albopictusとは異なり、背中に模様がないからである。[19]
分布
Ae. taeniorhynchusは南北アメリカ大陸に広く分布しているが、南部に集中している。[ 20] [21]このハエが最初に発見された当時、この種は沿岸地域に生息していたが、その後徐々にアメリカ大陸の内陸部へと移動した。[18]マイクロサテライトデータから得られた遺伝子流動解析によると、太平洋諸島のガラパゴス諸島に生息する蚊は、距離による隔離に基づいて島々間を頻繁に移動している。[22]港の存在は移動に大きく寄与する要因であり、人為的な輸送が島間の移動に寄与していることを示唆している。[22]
生息地
Ae. taeniorhynchusは一時的な水源がある生息地に生息しており、マングローブや塩性湿地、その他の湿った土壌のある地域は産卵や幼虫の成長に人気の場所です。[23]これらの生息地は非常に多様ですが、多くの場合、塩分濃度が高く、土壌中の可溶性塩分含有量は少なくとも1644 ppmです。[24]
卵の孵化に不利な乾燥と低温の環境条件の場合、卵は何年も休眠状態のままになることがあります。[25]羽化前のA. taeniorhynchusの成長規模を制御する要因は、湿度レベルと温度に一致する環境条件に依存します。南フロリダでは、主な要因は潮の高さと降雨量ですが、[26]カリフォルニアのサイトでは潮の高さのみに依存しています。[27]バージニアでは、これらの要因は降雨量と気温のレベルに限定されています。[28]一般的に好ましい要因は、極端な値になるとマイナスに転じ、生存率の低下を引き起こす可能性があります。過剰な水は蚊の卵を洗い流し[26]、極端に高い気温は水源の蒸発につながる可能性があります。[27]
この種は温度に対して敏感で、一定温度、分割温度、交互温度で違いが見られます。[29] 22、27、32℃の一定温度では、寿命は温度とともに増加しましたが、分割温度では、蚊は生と死に分かれました。[29]異なる温度では、老化率はオスでは独立していましたが、22℃と27℃で生息するメスの方が高かったです。[29]交互温度では、寿命はすべての性別と温度で温度に依存しませんでしたが、メスは22℃と27℃の交互温度を好むという点が異なりました。[29]
Ae. taeniorhynchusの繁殖地は、多くの場合、草地塩性湿地のDistichlis spicata（スパイクグラス）やSpartina patens（塩性牧草地の干し草）、マングローブのBatis maritima（塩性草）やSalicornia属（グラスワート）などの植物と接触しています。[21]この種の蚊は、湿地に生息する他の蚊の近くで見つかります。これらには、Aedes sollicitans（東部塩性湿地蚊）、Anopheles bradleyi、A. atroposが含まれます。[21]
生涯の歴史
観察的野外研究によると、Ae. taeniorhynchusは生涯のさまざまな段階でいくつかの行動傾向を示します。この種の成長と蛹化は、栄養、個体密度、塩分、明暗、温度などの環境要因の影響を受けることがわかりました。[30]
卵
メスは乾燥した地面に卵を産み、雨や洪水などの水の存在によって卵が孵化する。[31]繁殖力の指標となるメスの産卵数は、食性によって異なる。自殖率の低い集団では、稀な自殖メスが30個未満の卵を産むのに対し、自殖メスが大多数を占める集団では産卵数が大幅に多かった。[25]適切な温度と湿度の条件で産み付けられた卵は胚形成を経て、孵化するまで休眠状態となる。[30]
ネッタイシマカのライフサイクルの段階
幼虫期
孵化すると、この種は4つの幼虫齢を経て成長します。最初の3齢は主に温度の影響を受けますが、塩分濃度の影響はわずかです。第4齢はすべての環境要因の影響を受けます。[30]第4齢では、餌が増えると発育時間が早まりますが、密集と塩分濃度は成長を阻害します。[30]
4齢幼虫の好む温度は30℃から38℃の間ですが、平均好む温度は年齢とともに高くなります。[32] 1齢幼虫は平均31.8℃の温度を好み、4齢幼虫前期は34.6℃の温度を好みます。[32]しかし、4齢後期幼虫の好む温度は4齢前期よりも低く、33.0℃です。[32]飢餓幼虫は、より低い温度を中心としたより広い好む温度範囲を持つことがわかりました。[32] 27.0℃で何年も培養された実験室幼虫コロニーは、一貫してより低い温度を好むことがわかりました。[32]
4齢幼虫は海水（100 nL/h）を飲み、直腸から高浸透圧液を分泌することが観察されている。 [33]この液は海水に似ているが、カリウム濃度が18倍高い。[33]分泌液は摂取液との浸透圧バランスが取れないため、研究では肛門乳頭が塩分分泌を助けていることが示唆されている。[33]
蛹
昆虫の日周リズムに関しては、すべての環境要因が蛹化に影響を及ぼします。日周リズムの周期は 21.5 時間です。[30]蛹期間の延長につながる要因には、全暗期または全明期での明暗サイクルの消去、塩分濃度の上昇、および密集が含まれます。これらの傾向は、27 °C または 32 °C 付近の温度が好まれることに引き続き固執しています。[30]蛹は、これらの環境要因により、異なる集合体形成も示します。クラスター型の集合体は、一時的な密集と餌の過剰とともに形成されますが、ボール型の集合体は、一時的な密集と餌の不足から発生する可能性があります。[34] 22 °C と 25 °C のより低い一定温度では、クラスター型の集合体が形成される可能性がありますが、30°C と 32 °C のより高い温度では、集合体形成が抑制されます。[34]集合体により、蛹の乾燥体重がわずかに重くなり、脱皮の発達の同期が促進され、羽化時の移動の可能性が高まります。[34]
成人期
蚊のオスもメスも卵から出てくる方法は似ています。水源に12～24時間留まります。[23]その後、成虫は1～4日かけて産卵場所から離れて移動します。[8]性別によって移動距離に差があり、ほとんどのメスは少なくとも20マイル（32 km）移動しますが、ほとんどのオスは2マイル（3.2 km）以内しか移動しません。[8]メスの移動はランダムなパターンをたどり、移動方向に制限はなく、5日周期で移動します。[8]オスは最初メスと一緒に移動しますが、1～2マイル（1.6～3.2 km）の停止地点に到達し、そこで移動を群れ移動に切り替えます。[8]
飛翔パターンは成虫期に確立され、幼少期の行動パターンの影響を受けない。[6]成虫は4日目に刺咬を開始し、死ぬまで5日周期で刺咬を続ける。雌雄間では、メスの刺咬の強さは4、9、14日齢でピークを迎える。[23]成虫のメスの蚊は死ぬまで3～4週間生き続け、卵を産み続ける。[23]より長く生き残った蚊は刺咬を続けても卵を産まなくなる。[23]
食料資源
血
Ae. taeniorhynchusの卵は、自家成熟と非自家成熟の両方が可能で、自家卵は砂糖を食べて成熟し、非自家卵は吸血を必要とする。[35]これらの食料源は、アラタ体（CA）と内側神経分泌細胞周核（MNCA）からホルモンを産生して成熟を促進するが、非自家成熟にはMNCAホルモンの放出のみが関与している。[35]蚊の幼虫の吸血への依存は、メスが砂糖を食べないようにしたり、その他の食生活の変更を強いたりすることで、蚊の自家成熟を低下させるように影響を与えることができる。[36]
成虫の蚊は血と糖の組み合わせを餌とし、最適な餌は雄には糖、雌には血と糖の両方である。[5]ほとんどのAe. taeniorhynchusは血液を哺乳類や鳥類に依存しており、特にウシ、ウサギ、アルマジロに依存している。[37]ガラパゴス諸島の蚊は哺乳類と爬虫類を同等に好んで餌とするが、鳥類はほとんど餌としない。[38]これはAe . taeniorhynchusの典型的な鳥類に対する餌食とは異なるため、研究ではこの種は最も入手しやすく、簡単にアクセスできる生物をより多く餌とする日和見主義的摂食者であると示唆されている。 [38] Ae. taeniorhynchusは、アホウドリとして知られるDiomedea irrorataの外部寄生虫として働く。 [39]蚊はアホウドリを刺すことで、アホウドリの雛の死亡、コロニーの移動、卵の放棄などを引き起こす病気を直接引き起こしたり、病気を媒介したりします。[39]
実験的研究によると、雌雄ともに糖分のみの食事で2～3か月生き延びることができるが、雌は産卵のために吸血を必要とする。[40]雌の場合、自生蚊に吸血を補給すると産卵数と寿命の両方が増加した。[40]自然界におけるAe. taeniorhynchusの追加の観察研究では、生息地が吸血源の影響を及ぼしていることが示された。マングローブ湿地に生息する雌は吸血がなくても産卵できたが、草の茂った塩性湿地環境に生息する雌はできなかった。[41]しかし、両方の生息地の雌は吸血を与えられると産卵できた。[41]
砂糖
女性の無制限の砂糖摂取を観察した研究では、ショ糖摂取量と貯蔵エネルギーの最大蓄積との間に相関関係が見られました。 [42]対照的に、ショ糖摂取量は活動性の低下や老化の変化とは相関していません。[42]
実験室環境で雌の蚊に炭水化物を与えたところ、生存を助けるのに最も効果的な炭水化物はグルコース、フルクトース、マンノース、ガラクトース、スクロース、トレハロース、メリビオース、マルトース、ラフィノース、メリジトース、デキストリン、マンニトール、ソルビトールであることが示されました。アラビノース、ラムノース、フコース、ソルボース、ラクトース、セロビオース、イヌリン、α-メチルマンノシド、ズルシトール、イノシトールは蚊種によって使用されません。キシロース、グリコーゲン、α-メチルグルコシド、グリセロールは使用されますが、代謝速度は遅く、ソルボースは代謝されませんでした。[43]ブドウ糖を摂取すると飛行速度が最大限に高まりましたが、ペントース、ソルボース、ラクトース、セロビオース、グリコーゲン、イヌリン、α-メチルマンノシド、ズルシトール、イノシトールなどの他の炭水化物は飛行するには不十分であり、摂取後の飛行の遅れによって示されました。[29]
ネクター
羽化が花のある場所で起こった場合、雌雄ともに渡りの前に花の蜜を吸います。[44]フルクトースとグリコーゲン含有量の分析によると、蚊は暗くなってからすぐに花の蜜を吸い、日中は花の蜜をあまり吸いません。[45]
行動
交尾
オスは羽化後約2日で性成熟し、メスは12日齢で性成熟し、1回のみ交尾する予定です。[21]
実験室環境と野外環境の両方で行われた交尾相互作用の観察研究では、蚊の交尾は日没後に起こることが報告されている。結果によると、交尾はメスの年齢に依存し、受精は30～40時間齢のメスで起こることが分かった。[46]研究された両方の環境において、メスは受精を誘発することなく交尾することができ、2回の交尾の可能性があった後でも精子を含んでいたメスはわずか1％であった。[46]交尾は受精の機会を提供するだけでなく、メスのビテロジェニン合成にも寄与する。実験的に男性付属腺液（MAGF）を注射すると、卵巣で心体（CC）刺激因子が放出されることが示されており、これが卵子発達神経分泌ホルモン（EDNH）の研究を刺激している。[47]
この種の他の実験室研究では、交尾と受精が成功するには雌雄ともに年齢依存性があることが指摘されている。[48]交尾は雄によって開始され、雄が最初に脚を離し、雄と雌の性器を端から端まで絡ませ、その後短時間雌からぶら下がるときにのみ発生する。[48]受精は交尾によってのみ発生する。[48]交尾が成功すると、蚊は飛行中につがいになり、着地して数秒間一緒にいる。[48]交尾を終えるには、雄が飛び去るか、雌が雄を運びながら飛んでいき、雄が落ちるまで待つ。[48]
若いメスの多くは交尾を拒否し（非受容性）、交尾したメスの多くは受精を拒否した（不応性）。交尾と受精の受容性（受容性）は、年上のオスの群れにさらされたメスの年齢とともに増加した。[48]非受容性のメスは、突然スピードを上げたり急旋回したりして飛び去ることでオスを避けた。[48]
交尾中、オスは付属腺から分泌される物質をメスに投与することができ、これがメスの生理機能や行動に影響を与える。[49]これらの付属腺の物質はメスの生殖活動を制限したり、改善したりすることができる。[49]制限には、メスの将来の交尾の一時的な阻止、産卵刺激、宿主探索の減少などがあり、改善にはメスの概日リズムや代謝の優先順位の変化が伴い、生殖の可能性が高まる。[49]
親の介護
メスは産卵することが知られており、水分飽和度が70%以上の高湿度の土壌を好みます。[50]メスの産卵数は100～200個で、メス1匹あたり少なくとも1つの産卵が行われます。[21]
卵巣を摘出した雌の蚊を用いた実験的研究では、砂糖を摂取した蚊や吸血した蚊から提供された卵巣を与えられない限り、雌は卵黄タンパク質の前駆体であるビテロジェニンを合成できなかった。[51]提供卵巣がネッタイシマカからのものであった場合でもビテロジェニンの合成は起こり、吸血した蚊から卵巣を誘導すると心体刺激因子が産生されたことから、産卵のためのホルモンプロセスは種特異的ではないことが示された。[51]
Rhizophora mangle L.（赤マングローブ）とAvicennia germinans L.（黒マングローブ）の森林盆地に産み付けられた卵の研究では、卵の発生は標高とデトリタスレベルと相関していた。[52]産卵は黒マングローブ盆地から赤マングローブ盆地へと向かったが、これはおそらく、カタツムリのMelampus coffeus L.が黒マングローブを食むことでデトリタスが減少し、土壌の有機物含有量が減少するためだと考えられる。 [52]卵殻と卵は同じ生息地を共有しているため、卵殻を使って産卵を区別できる可能性があると示唆されている。[52] 34のマングローブ林から卵殻サンプルを分析したところ、森林の地形、土壌、植生に関係なく、すべてのマングローブ盆地の森林でAe. taeniorhynchusの繁殖が成功する可能性があるが、最近洪水が発生した場所が最も最適であることが示された。[53]
さらに、実験室環境では硫酸塩やその他の塩が産卵するメスに有利であると考えられていましたが、野外での硫酸塩濃度は低すぎるため、この影響は有意ではない可能性があります。 [54]基質の質感も産卵に寄与する要因であることが判明しており、砂粒サイズでの産卵に関する研究では、0.33～0.62 mmの砂粒が好まれることが示されています。[55]
飛行サイクル
産卵準備が整った成虫の雌の蚊は、他の成虫の雌とは多くの重要な行動が異なっている。雌は5日周期で7、12、17歳で特別な飛行を行う。[23]食生活の変化は雄と雌の飛行に影響を及ぼし、砂糖だけを与えられた雄は周期的な群れ行動に似た飛行パターンの変化を示し、砂糖だけを与えられた雌は暗闇で40分、明るいところで20分の飛行を4週間周期とする一貫した飛行パターンを示した。砂糖と血を与えられた雌は2週間後に飛行回数が減少し、血だけを与えられた雌は10日以内に飛行した。[40]飢餓状態に置かれた雌は後に血を与えられ、8時間動かずにいた後再び飛翔した。[40]飛翔は花の蜜を集めるために行われ、飛翔距離は風速、風向、地形、花の蜜の入手可能性によって決まる。[21]メスは通常、蜜を求めて2～5マイル飛ぶが、他の飛翔要因の結果として30マイルに及ぶ飛翔が記録されている。[21]血を求める成虫は最大25マイル飛ぶこともある。[19]
これらの蚊の飛行パターンは光に対する感受性と密接に関係しており、飛行パターンは月明かりの強さとともに増加する。メスは三日月では95%、満月では546%に飛行活動を増加させる。[56]オスとメスの成虫の蚊は光に撃退されるため[31]、ライトトラップで蚊を捕まえることができる。[8] [57]しかし、卵を産む準備ができているメスはこの行動を示さない。[23]実験設定では、12時間明：12時間暗の条件下で育てられた蚊は、二峰性交代パターンで、消灯時と点灯時の両方で飛行活動を示すことがわかった。蚊は24～36時間以内に新しい光条件に適応し、消灯が遅れるとパターンがリセットされるが、消灯が早まるとパターンはリセットされない。[6]
成虫の雄は生後4日目から群れを形成し始め、生後2～3週まで続く。[23]これらの群れは毎朝と夕方に決まった場所と時間に形成され[23]、最大30分間続く。[21]フロリダでのAe. taeniorhynchusの野外観察では、朝と夕方の群れは通常、それぞれ薄暮の4分前と4分後には半分終わっていた。[23]群れ行動の初期刺激は不明であるが、群れている時間は個々の雄の群れの原動力に対する感受性と群れのサイズに依存し、小さな群れは12分間続き、大きな群れは27分間続く。[23]これらの群れは一時的な通過群れとして特徴付けられ、雄は常時ではなく一度に1.5分間群れに参加する。[23]オスが群れを形成する行為にもかかわらず、交尾が群れの形成と同時に起こることは観察されていない。[23]
寄生虫
この種の寄生虫には、Ae. taeniorhynchus上で一世代だけ生存するMicrospora属の一種であるAmblyospora polykarya [58]や、蚊の卵巣に影響を与えて卵の成熟を阻止し幼虫を全て死滅させる菌類であるGoelomomyces psorophorae [59]などがある。
ガラパゴス諸島の蚊の血液分析とPCRによる寄生虫スクリーニングにより、この種と、その地域の爬虫類に感染しているヘパトゾーン寄生虫との関係が示唆された。 [38]爬虫類宿主におけるヘパトゾーンの混合集団の発生は、 Ae. taeniorhynchusが一部のヘプタゾーン寄生虫と在来爬虫類との宿主-種関係の崩壊を引き起こしたことを示唆している。 [38]食物網における寄生の位相幾何学的分析では、Ae. taeniorhynchusはCulex tarsalisとともに、捕食者-寄生虫サブウェブ内で最も重要な生物であることが判明した。つまり、マッピングされた生物の中で最も多くの食物網接続を持っていることを意味する。[要出典]
病気の伝染
Ae. taeniorhynchusはウエストナイルウイルス、蚊虹彩ウイルス、[60]東部型および西部型馬脳脊髄炎、[61]ベネズエラ馬脳脊髄炎ウイルス、[3]および黄熱ウイルスのキャリアです。[62]実験的研究では、この種が炭疽菌を機械的に伝播できることも確認されています。[63]リフトバレー熱ウイルスに関する実験的研究では、感染性は温度とは無関係ですが、ウイルスの拡散と伝播は温度が高いほど速くなります。[64]
この種は、犬にフィラリア症を引き起こすフィラリア虫であるDirofilaria immitis を媒介することがある。[4] D. immitisによる感染は、微絨毛の境界を変化させて体液輸送を妨げる過程で、 Ae. taeniorhynchusのマルピーギ管に寄生虫が定着することによって起こる。[65]寄生虫が宿主に定着するまでには最大 48 時間かかるが、宿主が耐性を持っている場合は定着しないことがある。[65]この寄生虫はガラパゴス諸島の飛べないウにも広がっていることが確認されており、遺伝子流動解析により寄生虫感染とAe. taeniorhynchus の移動パターンとの相関関係が示され、Ae. taeniorhynchusが感染の媒介動物である可能性が高いことが示唆されている。[22]
人間との交流
この種の蚊は人間にとって害虫とみなされており、フロリダ州の各地区は1927年以来蚊の駆除を試みており、1951年には昆虫駆除に150万ドルを費やした。[8]パリスグリーンとして知られるアセト亜ヒ酸銅は、有毒な胃毒として作用するため、この種の繁殖地ではAe. taeniorhynchusの幼虫の殺虫剤として使用されている。 [66]別の殺虫剤であるDDTも塩性湿地蚊に有効であると考えられており、過去にAe. taeniorhynchusの治療に使用されたことがある。 [67]この種のためにテストされたトラップと餌の組み合わせは、二酸化炭素、オクテノール、熱を餌とするCDCタイプのトラップがAe. taeniorhynchusの捕獲成功率を高めることを示している。[68]
人間もまた、 Ae. taeniorhynchusの飛翔速度が非常に速く、普通の蚊に比べて血液の吸引が早いため、化学処理された防護服を着用して、 Ae. taeniorhynchusによる刺咬を制限しようとしてきた。ペルメトリン[(3-フェノキシフェニル)メチル (±)シス/トランス3-(2-ジクロロエテニル)2, 2-ジメチルシクロプロパンカルボキシレート]で処理された衣服と皮膚へのディート( N,N-ジエチル-m-トルアミド) の塗布は、1 種類の防護のみ、または防護なしの場合と比較して、蚊に刺されることを大幅に減らすのに効果的であることが示された。 [69]ピレスロイド系殺虫剤メトフルトリンを蒸気として放出する Off! クリップオン蚊よけ装置も、フロリダの 2 か所のフィールドでAe. taeniorhynchusに対して評価され、3 時間にわたって蚊に刺されることを 79% 防ぐことがわかった。[70]
Ae. taeniorhynchusに対する他の毒素も特定されている。Bacillus thuringiensis var. kurstaki (HD-1) は、毒性封入体の形でパラスポラ結晶を生成することができる。[71]パラスポラ結晶から単離されたタンパク質は、k-1型とk-73型の2つの異なるタンパク質を生成したが、そのうち65 kDのタンパク質であるk-1のみがAe. taeniorhynchusの幼虫に対して毒性があることが判明した。[71]
参照
参考文献
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