光化学 同一または異なる核酸塩基間で形成されるピリミジン二量体のうち、2つのチミンを含むものは、光化学的な観点から最も広く研究されている。主要な核酸塩基の二量体化に加えて、5-メチルシトシンなどのエピジェネティック 類似体の光化学も研究されている。[ 25 ]合成核酸は、一本鎖 [ 26 ] [ 27 ] [ 28][ 29 ] [ 30 ] [ 31 ] 、 二本鎖[ 32 ] 、およびグアニン四重鎖 [ 33 ] [ 34 ] における二量体化の根底にある主要 な プロセスを特徴付けるのに適しているが、精製されたゲノムDNAについてもいくつかの研究が行われている。[ 35 ] [ 36 ]
本節で述べた実験研究は、溶液中の核酸を用いて行われた。
直接機構 直接機構によれば、UV光子はピリミジンに吸収され、光反応は主に一重項励起状態から進行する。これらの状態は集団的であり、両方のピリミジンに非局在化している。[ 37 ] [ 38 ] 項間交差によって形成されるチミン三重項状態 を経由して進行するマイナーな経路もCPDについて報告されている。[ 31 ] [ 39 ]
64PPsの場合、直接光化学プロセスにより反応中間体 (オキセタン )が形成され、[ 40 ] その後暗反応により最終的な二量体となる。[ 41 ] [ 42 ] デュワー価異性体[ 43 ] は64PPsを照射すると得られ、反応において主鎖が重要な役割を果たしている。[ 44 ] 時間分解吸収分光法 による研究では、チミン一本鎖ではCPDが1ピコ秒以内に形成されるのに対し、 [ 28 ] オキセタンから64PPsに至る反応は4ミリ秒以内に完了することが明らかになった。[ 45 ]
DNA一本鎖(dT 20 、青)と二本鎖(dA 20 dT 20 、赤)の吸収スペクトル。参考文献[ 30 ]より引用。 二量体化反応の量子収率(Φ)は、吸収された光子あたりに形成される二量体の数として定義され、その照射波長依存性は、これらの研究の中心となる。これらのパラメータは、光子吸収時に占有される電子励起状態の性質と緩和に本質的に関連している。[ 46 ] [ 47 ] 単一の チミン鎖では、Φ CPD は 主吸収帯 全体で一定(0.05)である。対照的に、Φ 64PP は 波長の増加に伴って連続的に減少する。[ 30 ] DNA が弱い吸収を示す UVA 照射では 64PP は検出されないが、CPD は効率は低いものの依然として誘導される(Φ CPD =7 × 10 −4 )。さらに重要なことに、塩基対形成は UVA 照射下での CPD 形成を促進し、Φ CPD は 7 倍高くなるが、UVC 照射では逆の傾向が観察される。[ 48 ]
254 nm で照射された単離精製ゲノム DNA についても、さまざまなピリミジン二量体の形成が定量化された 。CPD (総 Φ CPD =10 −3 ) は 64PP (総 Φ 64PP = 3 × 10 −4 )より豊富である。[ 49 ] また、UVA 光で照射されたこの天然生体分子 についても CPD 形成が報告されている。[ 36 ]
間接的なメカニズム 光増感によるピリミジン二量体形成に関わるメカニズムの簡略図。 間接機構では、三重項状態が重要な役割を果たします。通常、UVA 領域の光子が光増感剤に吸収され、その三重項状態は項間交差 によって生成されます。続いて、電子励起エネルギーがピリミジン三重項状態に移動し、二量化が引き起こされます。CPD と SP の両方がこの経路で形成されます。対照的に、光増感によって 64PP またはそのデュワー価異性体が形成されるという証拠はありません。[ 50 ]
光増感に必要な条件を調べるために、ベンゾフェノン、フタルイミド、フルオロキノロンなどのさまざまな光増感剤がテストされてきた。実際には、それらの三重項エネルギーはピリミジン三重項状態のエネルギーよりも高くなければならず、項間交差の量子収率も十分に高くなければならない。外部因子に加えて、DNAに既に存在する64PPは、ピリミドンの三重項状態を介してCPD形成を光増感する能力を持っている。[ 51 ] 増感は二重らせん内の三重項エネルギー移動に先行する可能性があり、最大105 Åの移動距離が報告されている。[ 52 ]
光学特性 シクロブタンピリミジン二量体(CPD)は、対応する単量体ピリミジンよりもかなり短い波長で吸収します。吸収極大は220 nmより下に位置しますが、正確には決定されていません。[ 53 ] 対照的に、64PPの吸収スペクトルは、損傷を受けていない類似体と比較して大きく赤方偏移しています。ジヌクレオシド一リン酸の場合、吸収極大は307~325 nmの範囲にあります。[ 54 ] デュワー価異性体の形成は、吸収スペクトルの短波長シフトを引き起こしますが、UVA領域では弱い吸収テールが残ります。胞子光生成物(SP)の吸収スペクトルは、初期の損傷を受けていないピリミジンの吸収スペクトルとほぼ同じです。[ 55 ]
様々なピリミジン二量体のうち、64PPのみが測定可能な蛍光 を示し、そのピークは385~400 nm付近にあります。対応する量子収率は10 −2 のオーダーであり、[ 54 ] 損傷を受けていないDNAの固有蛍光 よりも約2桁高い値です。[ 56 ] このため、1970年代にはすでに、その発光がUV誘発DNA損傷を定量化するための内部指標として利用できることが示唆されていました。[ 57 ] ずっと後になって、このアプローチは殺精子ランプの有効性を評価するために提案されました。[ 58 ] しかし、UV放射によって二重らせん内で引き起こされる基本的なプロセスに関する研究によると、400 nm付近の発光はDNA損傷の定量的評価には適していません。[ 59 ]
光反転 ピリミジン二量体化の発見に伴い、これらの損傷が光可逆反応を起こし、元のピリミジン塩基を再生できることが観察された。[ 60 ] この光可逆性は、二量体の吸収帯内で照射すると起こり、CPDに特有のものである。反応は量子収率が非常に高く、ほぼ1に近い。[ 61 ] [ 62 ] その後、損傷を受けていない核酸塩基を選択的に照射すると、DNAオリゴマーにおける別のタイプのCPD光可逆反応が報告された。このいわゆる自己修復機構は、隣接するプリン 塩基からCPD損傷への電子移動に起因するとされた。[ 63 ] [ 64 ] [ 65 ]
生物学的影響
突然変異誘発 突然変異形成の過程である突然変異誘発は、ピリミジン二量体の部位に突然変異を導入することが多い損傷乗り越えポリメラーゼによって大きく影響を受ける。 [ 88 ] これは、原核生物 では突然変異誘発に対するSOS応答 によって、真核生物 では他の方法によって起こる。チミン-チミンCPDはUVによって誘発される最も一般的な損傷であるため、損傷乗り越えポリメラーゼはこれらの二量体の反対側にアデニンを 取り込む傾向があり、正確な複製につながる。しかし、CPDの一部であるシトシンは脱アミノ化 を受けやすく、シトシンからチミンへの遷移を引き起こし、突然変異プロセスに寄与する。[ 89 ]
DNA修復 メラノーマは 皮膚がんの一種です。ピリミジン二量体は、DNA構造 に局所的な立体構造変化を引き起こし、修復酵素による損傷の認識を可能にする。[ 90 ] ほとんどの生物(ヒトなどの胎盤哺乳類を除く)では、 光回復 によって修復される。[ 91 ] 光回復は、光分解 酵素が光化学 反応を用いてCPDを逆転させる修復プロセスである。さらに、一部の光分解酵素は、UV誘発DNA損傷の6-4光産物も修復することができる。光分解酵素は、修復プロセスにおいてフラビンアデニンジヌクレオチド(FAD)を補因子として利用する。 [ 92 ]
野生型酵母細胞の集団を 37% に減少させる UV 線量 (ヒットのポアソン分布を 仮定) は、集団の各細胞に平均 1 つの致死ヒットを引き起こす UV 線量と同じです。[ 93 ] この線量で一倍体 ゲノム あたりに誘導されるピリミジン二量体の数は27,000 と測定されました。[ 93 ] 3 つの既知のピリミジン二量体修復 経路に欠陥のある変異酵母株も UV 感受性についてテストされました。この場合、一倍体ゲノム あたり 1 ~ 2 個の修復されていないピリミジン二量体のみが細胞に致死的です。[ 93 ] これらの結果は、野生型酵母におけるチミン二量体の修復が非常に効率的であることを示しています。[ 94 ]
ヌクレオチド除去修復 (NER)は、「ダーク再活性化」とも呼ばれ、損傷修復のためのより一般的なメカニズムであり、ヒトにおけるピリミジン二量体の最も一般的なDNA修復形態です。このプロセスは、細胞機構を使用して二量体化したヌクレオチドの位置を特定し、損傷を切除することによって機能します。CPDが除去されると、DNA鎖にギャップが生じ、それを埋める必要があります。DNA機構は、損傷を受けていない相補的なDNA 鎖をテンプレートとして使用して、対応するヌクレオチドを合成し、結果として損傷した鎖のギャップを埋めます。[ 95 ]
色素性乾皮症 (XP)は、NERタンパク質をコードする遺伝子が紫外線によって損傷を受けることで、細胞が形成されたピリミジン二量体と戦うことができなくなる、ヒトのまれな遺伝性疾患です。XP患者は、一般人口と比較して皮膚がんを発症するリスクが5,000倍以上高く、がんのリスクも非常に高いです。[ 96 ] XPの一般的な特徴と症状には、紫外線曝露による皮膚の変色や多発性腫瘍の形成などがあります。[ 97 ]
一部の生物は、修復を行うための別の方法を持っている。
ヒトや他の非哺乳類で保存されているもう 1 つの修復メカニズムは、損傷乗り越え合成です。 通常、ピリミジン二量体に関連する損傷は、細胞機構が損傷部位を超えて合成するのを阻害します。しかし、損傷乗り越え合成では、損傷乗り越えポリメラーゼが CPD を超えて複製できるため、複製と転写機構の両方が損傷を超えて継続できます。特定の損傷乗り越え DNA ポリメラーゼであるDNA ポリメラーゼ η は、 色素性乾皮症の 患者で欠損しています。[ 99 ]
技術的応用 ピリミジン二量体は、DNA光損傷剤としての役割に加え、人工材料における機能性光化学モチーフとしても研究されてきた。このようなシステムでは、制御された二量体形成と切断を利用して、空間分解能をもって材料特性を調節する。
20世紀後半、ポリマーフィルムに組み込まれたチミン部分が紫外線照射により可逆的な光二量化を起こすことが示された。[ 100 ] [ 101 ] これらの研究により、ピリミジン光二量化が光応答性ポリマーおよび光記録材料の架橋 機構として確立された。
その後の研究により、光増感間接機構を介して石英基板上に堆積した固体膜中でピリミジン二量体形成が達成できることが実証された。[ 102 ] 部位特異的なチミン二量体化は、DNAナノテクノロジーにも応用されている。例えば、DNAナノ構造内のあらかじめ定義されたチミジン部位間にシクロブタンピリミジン二量体が形成されると、構造の剛性と安定性が向上し、水環境下での取り扱いと移送が容易になる。[ 24 ] 他の研究者は、このプロセスを使用して光スイッチ可能な両親媒性システムを作成している。[ 103 ]
2020年代には、グラフト共重合体中の可逆的なチミン光二量化が、 太陽光発電 用途向け材料を含む自己修復コーティングの開発に利用された。[ 104 ] 二量体形成と光逆反応を促進する光増感剤を組み込むことで、硬質膜 やコーティングにおける光誘起修復の効率がさらに向上した。[ 105 ]
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