ChIPシーケンスのワークフロー ChIPシーケンスワークフロー
チップ ChIPは、生 細胞 内で特定のタンパク質に結合したDNA配列を選択的に濃縮する強力な方法です。しかし、この方法の普及は、濃縮されたすべてのDNA配列を同定するのに十分な堅牢な方法がないことによって制限されてきました。ChIPウェットラボプロトコルには、ChIPとハイブリダイゼーションが含まれます。ChIPプロトコル[ 7 ] は基本的に5つの部分から構成されており、ChIPの全体的なプロセスをよりよく理解するのに役立ちます。ChIPを実行するには、最初のステップは、ホルムアルデヒド と大量のDNAを使用して架橋 [ 8 ] を行い、有用な量を得ることです。架橋は、タンパク質とDNAの間だけでなく、RNAと他のタンパク質の間にも行われます。2番目のステップは、クロマチン断片化プロセスであり、クロマチンを分解して、最終的にChIP分析用の高品質のDNA断片を得ます。これらの断片は、ゲノムマッピングで最良の結果を得るために、それぞれ500塩基対[ 9 ]未満になるように切断する必要があります。
3 番目のステップはクロマチン免疫沈降法[ 7 ] と呼ばれ、 ChIP の略称です。ChIP プロセスでは、目的のタンパク質に対する抗体 を使用して特定の架橋 DNA-タンパク質複合体を強化し、インキュベーションと遠心分離によって免疫沈降物を得ます。免疫沈降ステップでは、非特異的な結合部位を除去することもできます。4 番目のステップは DNA の回収と精製[ 7 ] で、DNA とタンパク質間の架橋に逆の効果を与えて分離し、抽出によって DNA を精製します。5 番目の最終ステップは、qPCR 、ChIP-on-chip (ハイブリッドアレイ)、または ChIP シーケンスによる ChIP プロトコルの分析ステップです。次に、目的のタンパク質に結合した短い DNA 断片にオリゴヌクレオチドアダプターを追加して、 大規模並列シーケンス を可能にします。分析により、配列は、タンパク質が結合した遺伝子または領域によって識別および解釈されます。[ 7 ]
シーケンス解析 サイズ選択後、得られたすべてのChIP-DNA断片はゲノムシーケンサーを使用して同時にシーケンスされます。1回のシーケンスランで高解像度でゲノム全体の関連性をスキャンできるため、染色体上の特徴を正確に特定できます。一方、ChIP-chipでは、解像度が低いため、多数のタイリングアレイ が必要です。[ 10 ]
このシーケンスステップでは、多くの新しいシーケンス手法 が用いられています。配列を解析する技術の中には、固体フローセル基板上でアダプターを連結したChIP DNA断片の クラスター増幅 を利用して、それぞれ約1000個のクローンコピーからなるクラスターを作成するものがあります。フローセル表面上の高密度テンプレートクラスターアレイは、ゲノム解析プログラムによってシーケンスされます。各テンプレートクラスターは、新規の蛍光標識可逆ターミネーターヌクレオチドを用いて、合成によるシーケンスを 並行して行います。テンプレートは、各リードで塩基ごとにシーケンスされます。その後、データ収集および解析ソフトウェアが、サンプル配列を既知のゲノム配列にアラインメントして、ChIP-DNA断片を特定します。
品質管理 ChIP-seqは迅速な解析を可能にするが、得られた結果の信頼性を確保するためには品質管理を実施する必要がある。
非冗長部分 :低複雑性領域は情報がなく、参照ゲノム のマッピングを妨げる可能性があるため、除去する必要があります。[ 11 ] ピーク内のフラグメント: ピーク内に位置するリードとピークのない場所に位置するリードの比率。[ 11 ]
感度 この技術の感度は、シーケンスランの深度(つまり、マッピングされたシーケンスタグの数)、ゲノムのサイズ、およびターゲット因子の分布に依存します。シーケンス深度はコストと直接相関しています。大きなゲノムに豊富に存在する結合因子を高感度でマッピングする必要がある場合、膨大な数のシーケンスタグが必要になるため、コストが高くなります。これは、コストが感度と相関しないChIP-chipとは対照的です。[ 12 ] [ 13 ]
マイクロアレイ ベースのChIP法とは異なり、ChIP-seqアッセイの精度は、あらかじめ決められたプローブの間隔によって制限されません。多数の短いリードを統合することで、非常に正確な結合部位の局在が得られます。ChIP-chipと比較して、ChIP-seqデータを使用すると、実際のタンパク質結合部位から数十塩基対以内の結合部位を特定できます。結合部位のタグ密度は、タンパク質とDNAの結合親和性の良い指標であり、[ 14 ] これにより、タンパク質と異なるDNA部位の結合親和性を定量化して比較することが容易になります。[ 15 ]
現在の研究 STAT1 DNAとの関連: ChIP-seqは、細胞集団の解析に使用されるHeLa株のクローンであるHeLa S3細胞における STAT1 標的の研究に使用された。 [ 16 ] 次に、ChIP-seqの性能は、代替のタンパク質-DNA相互作用法であるChIP-PCRおよびChIP-chipと比較された。[ 17 ]
プロモーターのヌクレオソーム構造: ChIP-seqを用いて、酵母遺伝子には RNAポリメラーゼが 転写を開始できる150bpの最小限のヌクレオソームフリープロモーター領域があることが判明した。 [ 18 ]
転写因子の保存性: ChIP-seqを用いて、胚マウスの前脳 と心臓組織における転写因子の保存性を比較した。著者らは転写エンハンサー の心臓における機能性を同定および検証し、同じ発生段階において、心臓の転写エンハンサーは前脳の転写エンハンサーよりも保存性が低いことを明らかにした。[ 19 ]
ゲノムワイドChIP-seq:線虫 C. elegans でChIPシーケンスを実施し、22種類の転写因子のゲノムワイドな結合部位を調べた。注釈付き候補遺伝子の最大20%が転写因子に割り当てられた。いくつかの転写因子は非コードRNA 領域に割り当てられ、発生や環境要因の影響を受ける可能性がある。いくつかの転写因子の機能も特定された。転写因子の中には、他の転写因子を制御する遺伝子を調節するものもある。これらの遺伝子は他の因子によって調節されない。ほとんどの転写因子は、他の因子の標的と調節因子の両方として機能し、調節ネットワークを示している。[ 20 ]
制御ネットワークの推論: ヒストン修飾 のChIP-seqシグナルは、RNAレベルと比較して、プロモーターの転写因子モチーフとより相関していることが示されています。[ 21 ] したがって、著者は、ヒストン修飾ChIP-seqを使用することで、発現に基づく他の方法と比較して、遺伝子制御ネットワークのより信頼性の高い推論が得られると提案しました。
ChIP-seqはChIP-chipの代替手段となる。STAT1の実験的ChIP-seqデータは、同じタイプの実験で得られたChIP-chipの結果と高い類似性を示し、64%以上のピークが共通のゲノム領域に存在する。データはシーケンスリードであるため、リードマッピングに使用できる高品質のゲノム配列があり、ゲノムにマッピングプロセスを混乱させる反復配列がない限り、ChIP-seqは迅速な解析パイプラインを提供する。また、ChIP-seqは結合部位配列の変異を検出する可能性があり、これはタンパク質結合や遺伝子制御における観察された変化を直接的に裏付ける可能性がある。
計算解析 多くのハイスループットシーケンス手法と同様に、ChIP-seq は非常に大きなデータセットを生成するため、適切な計算解析手法が必要です。ChIP-seq のリードカウントデータから DNA 結合部位を予測するために、ピークコール 手法が開発されています。最も一般的な手法の 1 つはMACS であり、ChIP-Seq タグのシフトサイズを経験的にモデル化し、それを使用して予測される結合部位の空間分解能を向上させます。[ 22 ] MACS は高解像度のピークに最適化されていますが、もう 1 つの一般的なアルゴリズムである SICER は、より広いクロマチン領域を探索するために、キロベースからメガベースにわたるより広いピークを呼び出すようにプログラムされています。SICER は、遺伝子本体にまたがるヒストンマークに特に有効です。より数学的に厳密な手法である BCP (Bayesian Change Point) は、より高速な計算速度で、シャープなピークと広いピークの両方に使用できます。[ 23 ] Thomasら (2017)による ChIP-seq ピークコールツールのベンチマーク比較を参照してください。 [ 24 ]
もう一つの関連する計算上の問題は、異なる生物学的条件からの 2 つの ChIP-seq シグナルの有意差を特定する差分ピーク検出です。差分ピーク検出ツールは、2 つの ChIP-seq シグナルをセグメント化し、隠れマルコフモデル を使用して差分ピークを特定します。2 段階差分ピーク検出ツールの例としては、ChIPDiff [ 25 ] と ODIN [ 26 ]があります。
ChIP-seq からの偽陽性部位を減らすために、複数の実験コントロールを使用して IP 実験から結合部位を検出できます。Bay2Ctrls は、IP の DNA 入力コントロール、モック IP、およびそれに対応する DNA 入力コントロールを統合するベイズ モデルを採用し、IP からの結合部位を予測します。[ 27 ] このアプローチは、モデル生物全体などの複雑なサンプルに特に効果的です。さらに、分析によると、複雑なサンプルでは、サンプルの活性ゲノムのためか、モック IP コントロールが DNA 入力コントロールを大幅に上回っています。[ 27 ]
関連項目
同様の方法 PB-seqは 、クロマチンフリーDNAの優先結合部位を特定するためのChIP-seqのin vitroバリアントである[ 28 ]。 Sono-Seqは 、ChIP-Seqと同一であるが、免疫沈降ステップを省略したものである。ChIP-exoは 、ラムダエキソヌクレアーゼを用いて高解像度で架橋部位を特定する、ChIP-seqの塩基対解像度版である。SELEXは 、コンセンサス結合配列を見つけるための方法である。Calling Cardsは 、転写因子が結合する配列をマークするためにトランスポザーゼを使用します。[ 29 ] CUT&RUNシーケンスは 、ChIPの代わりにミクロコッカスヌクレアーゼによる抗体標的制御切断を行うことで、シーケンス中のシグナル対ノイズ比を向上させる。CUT&Tagシーケンスは 、ChIPの代わりにトランスポザーゼTn5による抗体標的制御切断を行うことで、シーケンス中のシグナル対ノイズ比を向上させる。HITS-CLIP [ 30 ] [ 31 ] ( CLIP-Seq とも呼ばれる) は、DNA ではなく RNA との相互作用を見つけるためのものです。PAR-CLIPは 、細胞内RNA結合タンパク質(RBP)の結合部位を特定するための別の方法である。RIP-Chipは 、同じ目標と最初のステップを踏みますが、クロスリンク法を使用せず、シーケンスの代わりにマイクロアレイを使用します。競合的ChIP法は 、DNA上の相対的な置換動態を測定するために用いられる。ChiRP-Seqを用い てRNAに結合したDNAおよびタンパク質を測定する。DRIP-seqは 、S9.6抗体を用いて、Rループと呼ばれる3本鎖のDND:RNAハイブリッドを沈殿させる。TCP-seqは 、mRNA翻訳ダイナミクスを測定するための、基本的に同様の手法である。
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