蛍光寿命イメージング顕微鏡法 (FLIM)は、試料中の 蛍光色素 から放出される光子の指数関数的減衰 率の違いを利用したイメージング技術です。共焦点顕微鏡 、二光子励起顕微鏡 、多光子トモグラフィーなどのイメージング技術として利用できます。
FLIMでは、蛍光体の強度ではなく蛍光寿命(FLT)を使用して画像を作成します。蛍光 寿命は蛍光体の局所的な微小環境に依存するため、光源の明るさの変化、背景光強度、または限定的な光退色による蛍光強度の誤った測定を排除できます。この技術には、厚いサンプル層での光子散乱の影響を最小限に抑えるという利点もあります。微小環境に依存するため、寿命測定はpH [ 1 ] 、粘度 [ 2 ] 、および化学種の濃度 [ 3 ] [ 4 ] の指標として使用されてきました。
測定 蛍光寿命イメージングでは、各ピクセルの強度が以下のように決定される画像が得られます。τ {\displaystyle \tau } これにより、蛍光減衰速度が異なる材料間のコントラストを観察することができ(たとえそれらの材料がまったく同じ波長で蛍光を発する場合でも)、 FRETイメージング などの他の減衰経路の変化を示す画像も生成できます。
パルス照明 蛍光寿命は、パルス光源を用いることで時間領域において測定できる。蛍光色素群が超短パルスまたはデルタ パルスの光で励起されると、時間分解蛍光は上述のように指数関数的に減衰する。しかし、励起パルスまたは検出応答が広い場合、測定される蛍光 d(t) は純粋な指数関数にはならない。装置応答関数 IRF(t) は、減衰関数 F(t) と畳み込みまたは混合される。
d ( t ) = 私 R F ( t ) ⊗ F ( t ) {\displaystyle {d}(t)={IRF}(t)\otimes {F}(t)}
光源、検出器、および電子回路の機器応答は、通常、散乱励起光を用いて測定できます。減衰関数(および対応する寿命)を復元するには、分母がゼロに近い場合に周波数領域での除算で大きなノイズが発生する傾向があるため、さらなる課題が生じます。
TCSPC 時間相関単一光子計数法(TCSPC )は、光源強度と単一光子パルス振幅の変動を補正するため、一般的に用いられます。市販のTCSPC装置を使用すると、蛍光減衰曲線を405 fsまでの時間分解能で記録できます。[ 6 ] 記録された蛍光減衰ヒストグラムはポアソン統計 に従い、これはフィッティング時の適合度を 決定する際に考慮されます。より具体的には、TCSPCは 、励起レーザーパルスに対して、高速単一光子検出器(通常は光電子増倍管(PMT )または単一光子アバランシェフォトダイオード(SPAD))によって個々の光子が検出された時間を記録します。複数のレーザーパルスに対して記録が繰り返され、十分な数のイベントが記録された後、これらの記録されたすべての時間点にわたるイベント数のヒストグラムを作成できます。このヒストグラムは、関心のある指数関数的寿命減衰関数を含む指数関数にフィッティングすることができ、それに応じて寿命パラメータを抽出できます。16 個 から 64個の素子を備えたマルチチャンネルPMTシステムが市販されているが、最近実証されたCMOSシングルフォトンアバランシェダイオード(SPAD)-TCSPC FLIMシステムは、さらに多くの検出チャンネルと追加の低コストオプションを提供できる。[ 8 ]
ゲーティング法 この方法では、パルス励起が引き続き使用されます。パルスがサンプルに到達する前に、光の一部がダイクロイックミラーで反射され、フォトダイオード で検出されます。フォトダイオードは、CCD検出器の前にあるゲート付き光増強器(GOI)を制御する遅延発生器をアクティブにします。GOIは、遅延後に開いている時間の割合のみ検出を許可します。したがって、調整可能な遅延発生器を使用すると、サンプルの蛍光減衰の時間範囲を包含する複数の遅延時間後の蛍光発光を収集できます。[ 9 ] [ 10 ] 近年、統合型イメージインテンシファイア付きCCDカメラが市場に登場しました。これらのカメラは、イメージインテンシファイア、CCDセンサー、および統合型遅延発生器で構成されています。最短のゲーティング時間が200ps、遅延ステップが10psのICCDカメラにより、サブナノ秒分解能のFLIMが可能になります。この技術は、内視鏡と組み合わせて、脳腫瘍の術中診断に使用されます。[ 11 ]
位相変調 蛍光寿命は、位相変調法によって周波数領域で決定できます。この方法は、 LED、ダイオードレーザー、連続波光源など、パルスまたは高周波(最大 500 MHz)で変調された光源と、 電気光学変調器 または音響光学変調器 を組み合わせたものを使用します。蛍光は (a) 復調され、(b) 位相シフトされます。これらの量はどちらも蛍光体の特性減衰時間に関係しています。また、励起および蛍光正弦波の y 成分も変調され、これらの y 成分の変調比から寿命を決定できます。したがって、位相変調法から寿命の 2 つの値を決定できます。寿命は、これらの実験パラメータのフィッティング手順によって決定されます。PMT ベースまたはカメラベースの周波数領域 FLIM の利点は、寿命画像の取得が高速であるため、生細胞研究などのアプリケーションに適していることです。[ 12 ]
分析 解析アルゴリズムの目標は、測定された減衰から純粋な減衰曲線を抽出し、寿命を推定することです。後者は通常、単一または多重指数関数をフィッティングすることによって達成されます。この問題を解決するために、さまざまな方法が開発されてきました。最も広く使用されている手法は、残差の重み付き和の最小化に基づく最小二乗反復再畳み込みです。この手法では、理論的な指数減衰曲線が、別途測定される機器応答関数と畳み込まれ、最小値が見つかるまでさまざまな入力に対する残差の反復計算によって最適なフィッティングが見つかります。一連の観測に対して、d ( t 私 ) {\displaystyle d({{t}_{i}})} 時間ビン i における蛍光信号の寿命推定は、以下の式を最小化することによって行われます。
χ 2 = ∑ 私 [ d 私 ( t 私 ) − d 0 私 ( t 私 、 1 、 τ ) ] 2 {\displaystyle {{\chi }^{2}}=\sum \limits _{i}{{\left[{{d}_{i}}({{t}_{i}})-{{d}_{0i}}({{t}_{i}},a,\tau )\right]}^{2}}}
波長依存の機器応答関数を含む実験上の困難に加えて、反復デコンボリューション問題の数学的処理は容易ではなく、処理速度も遅いため、FLIMの初期にはピクセルごとの解析には実用的ではありませんでした。非フィッティング法は、寿命推定に非常に高速なソリューションを提供するため魅力的です。このカテゴリーにおける主要かつ簡便な手法の1つが、高速寿命決定(RLD)法です。RLDは、減衰曲線を等しい幅の2つの部分に分割することにより、寿命とその振幅を直接計算します。 δ {\displaystyle \delta } t. 解析は、減衰曲線を等間隔の時間で積分することによって行われます。δ {\displaystyle \delta } t:
D 0 = ∑ 私 = 1 K / 2 私 私 δ t D 1 = ∑ 私 = K / 2 K 私 私 δ t {\displaystyle {\begin{matrix}{{D}_{0}}=\sum \limits _{i=1}^{K/2}{{{I}_{i}}\delta t}&{{D}_{1}}=\sum \limits _{i=K/2}^{K}{{{I}_{i}}\delta t}\\\end{matrix}}}
Iiはi番目のチャネルで記録された信号であり、Kはチャネル数である。寿命は以下を用いて推定できる。
τ = δ t / ln ( D 0 / D 1 ) {\displaystyle \tau =\delta t/\ln({{D}_{0}}/{{D}_{1}})}
多重指数関数的減衰の場合、この式は平均寿命を示します。この方法は二重指数関数的減衰の解析にも拡張できます。この方法の大きな欠点の1つは、測定機器の応答効果を考慮できないことです。そのため、測定された減衰曲線の初期部分は解析において無視する必要があります。これは、信号の一部が破棄されることを意味し、短い寿命を推定する精度が低下します。
畳み込み定理の興味深い特徴の一つは、畳み込みの積分が、その積分を構成する因子の積になることです。変換空間で機能するいくつかの手法は、この性質を利用して、測定された曲線から純粋な減衰曲線を復元します。ラプラス変換とフーリエ変換、およびラゲール・ガウス展開は、変換空間での寿命を推定するために使用されてきました。これらのアプローチは、逆畳み込みに基づく方法よりも高速ですが、切り捨てとサンプリングの問題を抱えています。さらに、ラゲール・ガウス展開のような方法の適用は、数学的に複雑です。フーリエ法では、単一の指数減衰曲線の寿命は次のように与えられます。
τ = 1 n ω A n B n {\displaystyle \tau ={\frac {1}{n\omega }}{\frac {{A}_{n}}{{B}_{n}}}}
どこ:
A n = ∑ t d ( t ) 罪 ( n ω t ) ∑ t 私 R F ( t ) 罪 ( n ω t ) = ω τ 1 + ω 2 τ 2 、 B n = ∑ t d ( t ) コス ( n ω t ) ∑ t 私 R F コス ( n ω t ) = 1 1 + n ω 2 τ 2 、 ω = 2 π T {\displaystyle {\begin{matrix}{{A}_{n}}={\frac {\sum \limits _{t}{d(t)\sin(n\omega t)}}{\sum \limits _{t}{IRF(t)\sin(n\omega t)}}}={\frac {\omega \tau }{1+{{\omega }^{2}}{{\tau }^{2}}}},&{{B}_{n}}={\frac {\sum \limits _{t}{d(t)\cos(n\omega t)}}{\sum \limits _{t}{IRF\cos(n\omega t)}}}={\frac {1}{1+n{{\omega }^{2}}{{\tau }^{2}}}},&\omega ={\frac {2\pi }{T}}\\\end{matrix}}}
ここで、nは高調波次数、Tは検出の全時間範囲である。
アプリケーション FLIMは、生物学において、細胞や腫瘍中の光増感剤の検出法として、また比率測定イメージング が困難な場合のFRET法として主に用いられてきた。この技術は1980年代後半から1990年代前半にかけて開発され(ゲーティング法:Bugielら 1989、König 1989、[ 13 ] 位相変調:Lakowiczら 1992、[ 14 ] [ 15 ] )、1990年代後半に広く応用されるようになった。細胞培養においては、EGF受容体 シグナル伝達[ 16 ] や輸送[ 17 ] の研究に用いられてきた。 時間領域FLIM(tdFLIM)は、核膜上の異なるホモポリマーにおける核中間径フィラメントタンパク質であるラミンAとB1の2種類の相互作用を示すためにも用いられており、これらはさらに高次構造で互いに相互作用する。[ 18 ] FLIMイメージングは、脳組織による光散乱が比率イメージングに問題となるニューロンにおいて特に有用である。[ 19 ] ニューロンでは、パルス照明を用いたFLIMイメージングがRas 、[ 20 ] CaMKII 、Rac 、およびRan [ 21 ] ファミリータンパク質の研究に用いられてきた。FLIMは、臨床多光子断層撮影において、皮内癌細胞や医薬品および化粧品化合物の検出に用いられてきた。
最近では、FLIMは植物細胞中のフラバノールを検出するためにも使用されている。 [ 22 ]
FRETイメージング 蛍光体の蛍光寿命は、放射過程(すなわち蛍光)と非放射過程(すなわち消光、FRET)の両方に依存するため、ドナー分子からアクセプター分子へのエネルギー移動はドナーの寿命を短縮します。したがって、FLIM を使用した FRET 測定は、蛍光体の状態/環境を区別する方法を提供できます。[ 25 ] 強度ベースの FRET 測定とは対照的に、FLIM ベースの FRET 測定は蛍光体の濃度にも影響を受けないため、サンプル全体で濃度と発光強度の変動によって生じるアーティファクトをフィルタリングできます。
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