| ブラディリゾビウム | |
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| 大豆( Glycine max 'Essex')の根粒の断面。Bradyrhizobium japonicum が根に感染し、窒素固定共生を確立します。この高倍率画像は、共生ソーム内に単一のバクテロイドを含む細胞の一部を示しています。 | |
| 科学的分類 | |
| ドメイン: | 細菌 |
| 門: | シュードモナドタ |
| クラス: | アルファプロテオバクテリア |
| 注文: | ヒポミクロバイオレ |
| 家族: | ニトロバクター科 |
| 属: | ブラディリゾビ ウム ジョーダン 1982 |
| タイプ種 | |
| ブラディリゾビウム・ジャポニカム | |
| 種 | |
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テキストを参照 | |
| 同義語 | |
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Bradyrhizobiumはグラム陰性 土壌細菌の属で、その多くは窒素を固定します。窒素固定は窒素循環の重要な部分です。植物は大気中の窒素 (N 2 ) を使用できないため、硝酸塩などの窒素化合物を使用する必要があります。
特徴
Bradyrhizobium属は、単一の亜極性または極性鞭毛を持つグラム陰性桿菌(桿菌)である。これらは一般的な土壌生息性微生物であり、マメ科植物と共生関係を形成し、植物からの炭水化物と引き換えに窒素を固定する。他の根粒菌と同様に、この属の多くのメンバーは、大気中の窒素を他の生物が容易に利用できる形に固定する能力を有する。Bradyrhizobium属は森林土壌微生物群集の主要構成要素でもあり、これらの土壌から分離された株は通常、窒素固定や根粒形成ができない。[3]これらは、成長が速い根粒菌であると考えられているRhizobium属とは対照的に、成長が遅い。液体培地では、 Bradyrhizobium属は中程度の濁度を作るのに3~5日、個体数が2倍になるのに6~8時間かかる。これらは、ペントースを炭素源として最もよく成長する傾向がある。[4]一部の菌株(例えばUSDA6やCPP)は好気的に一酸化炭素を酸化することができる。[5]
分類
受け入れられる種
ブラディリゾビウムは以下の種から構成される: [6]
- B. agreste Klepa et al . 2021年[7]
- B.アルジェリアセンセ Ahnia et al . 2019
- B. americanum Ramírez-Bahena et al . 2017年
- B. アンフィカルパ エア ブロムフィールドら2019
- B. arachidisワングら2013
- B. アーキタイプ Helene et al . 2020年
- B. australiense ヘレン他2020
- B. betae Rivas et al . 2004
- B. cajani Araújoら2017年
- B. canariense Vinuesa et al . 2005年
- B.セントローズマチス ・コルリグ。ラミレス・バヘナら。 2017年
- B. cosmicum Wasai-Hara et al . 2020年
- B. cytisi Chahbourne et al . 2011年
- B. daqingense Wang JY et al . 2012年
- B. デニトリフィカンス (Hirsch および Müller 1986) van Berkum et al。 2011年
- B. diazoefficiens Delamuta他2013
- B. diversitatis Serenato Klepa et al . 2021年[7]
- B. elkanii Kuykendallら1993年
- B. embrapense Delamuta et al. 2015年
- B. erythrophleiヤオら2015
- B. ferriligni Yao et al . 2015年
- B. frederickii de Oliveira Urquiaga et al . 2019年
- B. ganzhouense Luら。 2014年
- B. glycinis Serenato Klepa et al . 2021年[7]
- B. guangdongense Li et al . 2015
- B. guangxiense Liら。 2015年
- B. ヒッポネンセ Rejili et al . 2020年
- B. huanghuaihaiense Zhang et al . 2012年
- B. icense Durán et al . 2014
- B. ingae da Silva et al . 2014年
- B. イリオモテ ンセ イスラム他2010
- B. ivorense Fossouら。 2020年
- B. japonicum (Kirchner 1896) ジョーダン 1982
- 共生亜綱ゲニステアルム[8]
- 共生亜綱グリシナラム[8]
- B.ヒカマエ・ ラミレス・バヘナら。 2009年
- B. kavangense Lasse gronemeyer et al. 2015年
- B. lablabi Chang et al . 2011
- B. liaoningense Xu et al . 1995年
- B. lupini Peix et al . 2015
- B. マナウセンス Silva et al . 2014年
- B. mercantai Helene et al . 2017年
- B. マードチ ヘレン他2020
- B. namibiense Grönemeyer et al . 2017年
- B. nanningense Li et al . 2020年
- B.ネオトロピカール Zilli et al . 2014年
- B. ニフタリ クレパ他2019
- B. ニトロレデューセン Jang et al . 2020年
- B. oligotrophicum (Ohta and Hattori 1985) Ramírez-Bahena et al . 2013年
- B. オタワエンセ ユウ他2014
- B. pachyrhizi Ramírez-Bahena et al . 2009年
- B. paxllaeriデュランら2014年
- B. retamae Guerrouj et al . 2013年
- B. rifense Chahboune et al . 2012年
- B. ripae ブンガーら2018
- B. シェウェンセ・ アセルスら。 2018年
- B. stylosanthis Marçon Delamuta et al . 2016年
- B. subterraneum Gronemeyer et al . 2015年
- B. symbiodeficiens ブロムフィールドら2020
- B. tropiciagri Delamuta et al. 2015年
- B. vignae Grönemeyer et al . 2016年
- B. viridifuturi ヘレン他 2015
- B. ユンミンセンス ・ヤオら。 2002年
暫定種
以下の種は公表されているが、細菌学規約に従って検証されていない。[6]
- 「B. brasilense」Martins da Costa et al . 2017年
- 「B. campsiandrae」Cabral Michel et al . 2021
- 「B. centrolobii」Michel et al . 2017年
- 「B.フォレスタリス」Martins da Costa et al . 2018年
- 「B. guangzhouense」Li et al . 2019年
- 「B. macuxiense」Michel et al . 2017年
- 「B.サッカリ」デ・マトスら。 2017年
- 「フォトリゾビウム・トムプソニアヌム」イーグルシャムら1990 [2]
- 「B. uaiense」カブラル・ミシェル他。 2020年
- 「B. valentinum」Durán et al . 2014年
- 「B. zhanjiangense」Li et al . 2019年
系統発生
現在受け入れられている分類法は、命名法上の原核生物名リスト(LPSN)に基づいています。[6]系統発生は全ゲノム解析に基づいています。[9]
結節形成
結節形成
根粒は、細菌が生息するマメ科植物の根にできる成長物です。植物の根は、アミノ酸と糖を根圏に分泌します。根粒菌は根に向かって移動し、根毛に付着します。次に植物はフラボノイドを放出し、これが細菌内の根粒遺伝子の発現を誘導します。これらの遺伝子の発現により、根粒因子と呼ばれる酵素が生成され、根毛の巻き上がりが始まります。この過程で、根粒菌は根毛とともに巻き上がります。根粒菌は、根毛を通って主根に伸びる感染糸で根毛細胞に侵入します。これにより、感染細胞が分裂して根粒を形成します。これで根粒菌は窒素固定を開始できます。
うなずく遺伝子
55以上の遺伝子が根粒形成に関連することが知られています。[10] NodDは他のnod遺伝子の発現に不可欠です。[11] 2つの異なるnodD遺伝子は、nodD 1とnodD 2です。根粒形成を成功させるにはnodD 1のみが必要です。[10]
窒素固定
ブラディリゾビウムやその他の根粒菌は大気中の窒素をアンモニア(NH 3)またはアンモニウム(NH 4 +)に固定します。植物は大気中の窒素を利用することはできません。そのため、窒素の結合した形または固定された形を使用する必要があります。光合成に次いで、窒素固定(または吸収)は植物の成長と発達にとって最も重要なプロセスです。[12]植物のウレイド窒素のレベルは、植物が吸収する固定窒素の量と相関しています。[13]
遺伝子
Nifおよびfix は、ブラディリゾビウム属の窒素固定に関与する重要な遺伝子である。Nif遺伝子は、自由生活性のジアゾ栄養菌であるクレブシエラ・ニューモニエに見られる遺伝子と非常に類似している。ブラディリゾビウム属の遺伝子は、 K. ニューモニエに見られる遺伝子と機能および構造が類似している。Fix遺伝子は共生窒素固定に重要であり、最初に根粒菌属で発見された。nifおよびfix遺伝子は、染色体上の少なくとも 2 つの異なるクラスターに存在する。クラスター I には、窒素固定遺伝子のほとんどが含まれる。クラスター II には、nod遺伝子の近くに位置する3 つのfix遺伝子が含まれる。[14]
多様性
この属の細菌は、特異的共生関係または一般的共生関係を形成することができ、[4]あるブラディリゾビウム属の種は、1種類のマメ科植物にしか根粒を形成できないが、他のブラディリゾビウム属の種は、複数のマメ科植物に根粒を形成できる可能性がある。リボソームRNAはこの微生物群で高度に保存されているため、ブラディリゾビウム属を種の多様性の指標として使用することは非常に困難である。代わりにDNA-DNAハイブリダイゼーションが使用され、より多様性が示されている。しかし、表現型の違いはほとんど見られないため、多くの種は命名されていない。
いくつかの菌株は光合成を行い、これらのブラディリゾビウムは半水生のエスキーノメネマメ科植物の茎に根粒を形成することが多く、アフリカの野生イネOryza breviligulataの節根にも見つかっている。[15]
意義
穀物マメ科植物は、年間約150万km2の土地で栽培されています。[12]窒素固定量は世界中で年間約4,400万~6,600万トンで、農業で使用される窒素のほぼ半分を供給しています。[16]ブラディリゾビウムの接種剤は市販されています。
ブラディリゾビウムはDNA抽出キットの試薬や超純水システムの汚染物質としても特定されており、微生物叢やメタゲノムデータセットに誤って表示される可能性があります。[17]窒素固定細菌が汚染物質として存在するのは、貯蔵タンク内の微生物の増殖を抑制するために超純水製造時に窒素ガスが使用されているためである可能性があります。[18]
注目すべき種
- Bradyrhizobium betaeはテンサイの腫瘍のような根の変形から分離されましたが、共生関係にあるかどうかは不明です。 [19]
- Bradyrhizobium elkanii、 Bradyrhizobium diazoefficiens、 Bradyrhizobium liaoningenseは大豆と共生関係にある。 [19]
- Bradyrhizobium japonicumは大豆、ササゲ、緑豆、シラトロに根粒を形成する。 [19]
- Bradyrhizobium yuanmingenseはLespedezaに根粒を形成する。 [19]
- Bradyrhizobium canarienseはカナリア諸島固有のマメ科植物に根粒を形成する、西オーストラリアや南アフリカのルピナスやセラデラの根粒にも見られる。 [19]
参考文献
- ^ ラミレス=バヘナ、M.-H.;チャーボーン、R.ペイクス、A.ベラスケス、E. (2012)。 「Agromonas oligotrophicaをBradyrhizobium oligotrophicum combとしてBradyrhizobium属に再分類。11 月」。系統的および進化的微生物学の国際ジャーナル。63 (Pt 3): 1013–6。土井:10.1099/ijs.0.041897-0。PMID 22685107。
- ^ ab Eaglesham AR、Ellis JM、Evans WR、Fleishman DE、Hungria M、Hardy KW (1990)。「最初の光合成窒素固定根粒菌:特徴」。Gresshoff PM、Koth LE、Stacey G、Newton WE (編)。窒素固定:成果と目的。ボストン、マサチューセッツ州: Springer。pp . 805–811。doi :10.1007/ 978-1-4684-6432-0_69。ISBN 978-1-4684-6434-4。
- ^ VanInsberghe, David; Maas, Kendra; Cardenas, Erick; Strachan, Cameron; Hallam, Steven; Mohn, William (2015). 「非共生Bradyrhizobium生態型が北米の森林土壌を支配」ISMEジャーナル. 9 (11): 2435–2441. doi :10.1038/ismej.2015.54. PMC 4611507. PMID 25909973 .
- ^ ab P. Somasegaran (1994).根粒菌ハンドブック: マメ科植物と根粒菌の技術方法. ニューヨーク: Springer-Verlag. pp. 1–6, 167. ISBN 978-0-387-94134-9。
- ^ Gary, King (2003). 「好気性一酸化炭素酸化剤の 多様性に関する分子および培養ベースの分析」.応用環境微生物学. 69 (12): 7257–7265. doi :10.1128/aem.69.12.7257-7265.2003. PMC 309980. PMID 14660374.
- ^ abc 「命名法で認められている原核生物名の一覧 - Bradyrhizobium」 。 2021年5月23日閲覧。
- ^ abc Klepa MS、Ferraz Helene LC、O'Hara G、Hungria M (2021)。「西オーストラリア州のグリシン属の生物多様性ホットスポットから分離されたBradyrhizobium agreste sp. nov.、Bradyrhizobium glycinis sp. nov.、およびBradyrhizobium diversitatis sp. nov.」。Int J Syst Evol Microbiol。71 ( 3)。doi : 10.1099 / ijsem.0.004742。PMC 8375429。PMID 33709900。
- ^ ab Kalita, M; Małek, W (2010). 「ポーランドのGenista tinctoria微小共生菌はBradyrhizobium japonicum bv. genistearumの新メンバーである」。系統的および応用微生物学。33 (5): 252–9。doi :10.1016/j.syapm.2010.03.005。PMID 20452160 。
- ^ Hördt, Anton; López, Marina García; Meier-Kolthoff, Jan P.; Schleuning, Marcel; Weinhold, Lisa-Maria; Tindall, Brian J.; Gronow, Sabine; Kyrpides, Nikos C.; Woyke, Tanja; Göker, Markus (2020年4月7日). 「1,000以上のタイプ株ゲノムの分析により、アルファプロテオバクテリアの分類が大幅に改善」. Frontiers in Microbiology . 11 : 468. doi : 10.3389/fmicb.2020.00468 . PMC 7179689. PMID 32373076.
- ^ ab Stacey, Gary (1995). 「Bradyrhizobium japonicum 根粒形成遺伝学」FEMS Microbiology Letters . 127 (1–2): 1–9. doi : 10.1111/j.1574-6968.1995.tb07441.x . PMID 7737469.
- ^ Stacey, G; Sanjuan, J.; Luka, S.; Dockendorff, T.; Carlson, RW (1995). 「Bradyrhizobiumと大豆の共生におけるシグナル交換」.土壌生物学と生化学. 27 (4–5): 473–483. doi :10.1016/0038-0717(95)98622-U.
- ^ ab Caetanoanolles, G (1997). 「マメ科植物における根粒共生の分子的解析と改善」.畑作物研究. 53 (1–3): 47–68. doi :10.1016/S0378-4290(97)00022-1.
- ^ van Berkum, P.; Sloger, C.; Weber, DF; Cregan, PB; Keyser, HH (1985). 「グリシンマックス(L.)メルの温室およびフィールド研究におけるウレイド窒素および窒素固定、地上窒素蓄積、アセチレン還元、および根粒質量の関係」。Plant Physiol . 77 (1): 53–58. doi :10.1104/pp.77.1.53. PMC 1064455. PMID 16664027 .
- ^ Hennecke, H (1990). 「Bradyrhizobium japonicum–大豆共生に関与する窒素固定遺伝子」. FEBS Letters . 268 (2): 422–6. doi : 10.1016/0014-5793(90)81297-2 . PMID 2200721. S2CID 43001831.
- ^ Chaintreuil, Clémence; Giraud, Eric; Prin, Yves; Lorquin, Jean; Bâ, Amadou; Gillis, Monique; de Lajudie, Philippe; Dreyfus, Bernard (2000年12月). 「光合成性根粒菌はアフリカ野生イネOryza breviligulataの天然内生菌である」.応用環境微生物学. 66 (12): 5437–5447. Bibcode : 2000ApEnM..66.5437C. doi : 10.1128/AEM.66.12.5437-5447.2000 . PMC 92479. PMID 11097925. 2021年5月7日閲覧。
- ^ Alberton, O; Kaschuk, G; Hungria, M (2006). 「大豆 およびインゲン豆に関連する根粒菌の遺伝的多様性の評価に対するサンプリングの影響」。土壌生物学および生化学。38 (6): 1298–1307。doi :10.1016/ j.soilbio.2005.08.018。
- ^ Salter, S; Cox, M; Turek, E; Calus, S; Cookson, W; Moffatt, M; Turner, P; Parkhill, J; Loman, N; Walker, A (2014). 「試薬汚染はシーケンスベースのマイクロバイオーム分析に重大な影響を及ぼす可能性がある」。bioRxiv 10.1101 /007187。
- ^ Kulakov, L; McAlister, M; Ogden, K; Larkin, M; O'Hanlon, J (2002). 「工業システムにおける超純水を汚染する細菌の分析」.応用環境微生物学. 68 (4): 1548–1555. Bibcode :2002ApEnM..68.1548K. doi :10.1128/AEM.68.4.1548-1555.2002. PMC 123900. PMID 11916667 .
- ^ abcde Rivas, Raul; Martens, Miet; De Lajudie, Philippe; Willems , Anne (2009). 「 Bradyrhizobium属の多座配列解析」。系統的および応用微生物学。32 (2): 101–10。doi : 10.1016 /j.syapm.2008.12.005。PMID 19201125 。
