動物の代謝は、閉鎖回路または開放回路の呼吸測定システムで、個々の動物の二酸化炭素 生成速度(VCO 2 )と酸素 消費速度(VO 2 )を測定することによって推定されます。通常、標準代謝率(SMR)または 基礎代謝率 (BMR)と最大酸素摂取量(VO2max )の2つの測定値が得られます。SMRは、特定の実験室条件(温度、水分補給)および被験者固有の条件(例:サイズまたはアロメトリー [ 1 ] )、年齢、繁殖状態、食物の熱効果 を避けるための食後吸収)の下で、動物が安静状態(睡眠状態ではない)にあるときに測定されます。[ 2 ] VO 2 maxは通常、生理学的限界またはその近傍での有酸素運動中に測定されます。[ 3 ] 一方、野外代謝率(FMR)は、自然界で拘束されていない活動的な動物の代謝率を指します。[ 4 ] 動物全体の代謝率は、体重補正なしのこれらの測定値を指します。 SMRまたはBMRの値を動物の体重で割ると、その値は体重比と呼ばれます。種間の比較でよく耳にするのは、この体重比の値です。[ 5 ]
開放型呼吸測定法 開放系の場合、設計上の制約には、動物チャンバーの洗浄特性とガス分析装置の感度が含まれます。[ 7 ] [ 8 ] しかし、基本原理は同じです。入ったものは出なければなりません。開放系と閉鎖系の主な違いは、開放系ではチャンバーに空気が流れる(つまり、ポンプで空気が押し出されたり引き込まれたりして、動物によって消費されたO 2を常に補充し、動物によって生成された CO 2 と水蒸気を除去する速度であることです。体積流量は、 動物がチャンバー内の酸素をすべて消費しないように十分に高くなければなりませんが、同時に、動物が検出に十分な O 2 を 消費するように十分に低くなければなりません。20 g のマウス の場合、 500 ml の容器を通して約 200 ml/分の流量で 良好なバランスが得られます。この流量では、約 40 ml の O 2 がチャンバーに供給され、チャンバー内の空気の全量が 5 分以内に交換されます。その他の小型動物の場合、チャンバーの容積ははるかに小さく、流量も調整されます。ただし、恒温動物 (鳥類 や哺乳類 )の場合は、代謝率が高いため、チャンバーのサイズや流量はそれに合わせて選択されます。
計算 VO 2 および/または VCO 2 の速度を計算するには、チャンバーへの流入および流出流量、ならびに動物チャンバーへの流入および流出ガス混合物の分率濃度を知る必要があります。一般に、代謝速度は定常状態条件から計算されます (つまり、動物の代謝速度は一定であると仮定されます[ 9 ] [ 10 ] )。酸素 消費速度を知るには、流量計が動物チャンバーに対してどの位置にあるか (チャンバーの前に配置されている場合は流量計は「上流」、チャンバーの後ろに配置されている場合は流量計は「下流」)、および反応性ガス (たとえば、CO 2 、水 、メタン 、不活性ガス を参照) が存在するかどうかを知る必要があります。
上流に流量計があり、酸素 分析計の前に水(例えば無水硫酸カルシウム )とCO2が 除去された開放系の場合、適切な式は次のようになる。
ナレーション 2 = FR ⋅ ( F で O 2 − F 元 O 2 ) 1 − F 元 O 2 {\displaystyle {\ce {VO2={\frac {{\mathit {FR}}\cdot ({\mathit {F}}_{in}O2-{\mathit {F}}_{ex}O2)}{1-{\mathit {F}}_{ex}O2}}}}} 下流に流量計があり、酸素 分析計の前に水とCO2が除去される開放 系の場合、適切な方程式は次のようになります。
ナレーション 2 = FR ⋅ ( F で O 2 − F 元 O 2 ) 1 − F で O 2 {\displaystyle {\ce {VO2={\frac {{\mathit {FR}}\cdot ({\mathit {F}}_{in}O2-{\mathit {F}}_{ex}O2)}{1-{\mathit {F}}_{in}O2}}}}} どこ
FRは、STP( 標準温度および圧力条件を 参照)に調整された体積流量です。F in O 2は、 現在 の空気流中に存在する酸素の割合(ベースラインまたは基準) であり、F ex O 2は、 呼気 流中に存在する酸素の割合(動物が単位時間あたりにベースラインと比較して消費した酸素量)です。例えば、20gの マウス(Mus musculus )の基礎代謝率(BMR)の値は、FR = 200 mL/分、酸素分析計による酸素分圧の測定値は、 F in O 2 = 0.2095、F ex O 2 = 0.2072とします。計算された酸素消費速度は、0.58 mL/分または35 mL/時間です。 酸素の燃焼エンタルピーを 1 ミリリットルあたり20.1ジュール と仮定すると、マウスの熱産生(したがって代謝)は703.5 J/hと計算されます。
呼吸測定装置 開放型フローシステムの場合、機器や部品のリストは閉鎖型システムに比べて長くなりますが、開放型システムの最大の利点は、代謝率を連続的に記録できることです。また、開放型システムでは低酸素症のリスクもはるかに低くなります。
空気の流れをポンプで送る
真空ポンプ :ポンプは、動物チャンバーおよび呼吸測定フローシステムに空気を送り込む(上流側)か、空気を吸い込む(下流側)ために必要です。サブサンプルポンプ:分析装置を通して空気を吸引するために、小型で安定性と信頼性に優れたポンプが使用されます。 流量計 および流量制御装置
バブル流量計:流量を測定するシンプルかつ非常に正確な方法は、既知の体積の目盛りの間をガラス管を上昇する石鹸膜の泡の移動時間を計測することです。 [ 11 ] ガラス管は、底部(プッシュシステムの場合)または上部(プルシステムの場合)で空気流に接続されます。管の底部に取り付けられた小さなゴム製ピペット バルブは、石鹸の泡の貯蔵庫と供給システムの両方として機能します。操作は簡単です。まず、泡が移動する経路に沿ってガラス表面を濡らします(たとえば、バルブを押して大量の石鹸が空気の流れによってガラスを上昇するようにします)。これにより、ほぼ摩擦のない表面ができます。次に、バルブをつまんで、きれいな泡を1つ作ります。ストップウォッチを持って、泡がガラスの目盛りの間を移動するのに必要な時間を記録します。上側の目盛りに記録された体積(たとえば、125 = 125 ml)を記録し、その体積を目盛りの間を移動するのに必要な時間で割ると、流量(ml/s)が得られます。これらの器具は様々な供給元から購入できるが、適切なサイズのガラス製容量ピペット から自作することもできる。 アクリル製流量計 :流量が多い状況では、 代謝チャンバー内の流量を制御するために、シンプルなアクリル製流量計(0~2.5リットル/分)を使用する場合があります。流量計は代謝チャンバーの上流側に設置します。流量計は使い方は簡単ですが、呼吸測定システムで使用する場合は、1日に2回校正する必要があります。1回目は記録開始前(ただし、動物をチャンバー内に密閉した後)、2回目は記録終了時(動物をチャンバーから取り出す前)です。アクリル製流量計の校正マークは概算値に過ぎないため、校正は気泡式流量計で行う必要があります。流量を適切に校正するには、流量計を通過する空気の気圧と温度(室温とみなします)の両方を記録する必要があることを覚えておいてください。 質量流量計 :酸素消費量または二酸化炭素生成量の計算に必要な式は、チャンバーへの流入量と流出量が正確に分かっていることを前提としています。当社では、温度や気圧に依存しない流量が得られるという利点を持つ質量流量計を使用しています。したがって、これらの流量は標準条件(標準温度圧力)に補正されているとみなすことができます。流量の測定と制御は、チャンバーの下流側の1箇所のみで行います。そのため、流入量と流出量が同一であると仮定する必要があります。ただし、呼吸測定システムの構築中は、流量の完全性を確認するために、すべてのステップ、すべての接続部で流量を測定する必要があります。ニードルバルブ:質量流量計は、流量を設定できる 質量流量コントローラー 付きで購入できます。ただし、これらは高価です。呼吸測定研究では、一度に複数の動物を測定することがよくあり、そのためには動物ごとに1つのチャンバーが必要となり、各チャンバーを通る流量を制御する必要があります。流量を制御するためのより費用対効果の高い代替方法は、ステンレス鋼または炭素鋼のニードルバルブを使用することです。ニードルバルブと質量流量計を組み合わせることで、目的の流量を費用対効果の高い方法で実現できます。バルブの価格は約20ドルです。チューブとチャンバー
チューブと接続部 :呼吸測定システムの構成要素を動物チャンバーに接続するために、さまざまな種類のチューブを使用できます。システムの特性に応じて、さまざまな種類のフレキシブルチューブを使用できます。酸化性雰囲気が低い(例えば、オゾンがバックグラウンドレベルのみ)システムの領域では、アセチル、Bev-A-Line、Kynar、ナイロン、Tygonのチューブとコネクタを使用できます。オゾンに対して不活性なテフロン チューブは、かなりの量のオゾンが存在することが予想される場合に推奨されます。テフロンチューブは高価で、柔軟性に欠けます。 代謝チャンバー:チャンバーは、蓋にゴム栓が付いたガラス瓶、小動物や昆虫用の注射器の筒、またはプレキシガラス 製のものがあります。理想的には、チャンバーは不活性材料で作られるべきです。たとえば、アクリル樹脂はO 2 を吸収する可能性があり、非常に小さな昆虫の呼吸測定には適さない場合があります。[ 12 ] チャンバーは、チャンバー内でガスが迅速に混合されるように作られる必要があります。小型脊椎動物用の最も単純な代謝チャンバーは、栓付きのガラス瓶かもしれません。栓には2つのポートが取り付けられており、ライン接続用に短いテフロンチューブの延長部が設けられています。テフロンチューブの延長部を隔壁に通し、テフロンチューブの延長部の基部に小さなホースクリップを取り付けてライン接続を完了します。さらに、瓶内の入口ポートに延長部を設ける必要があります。これにより、動物の呼気ガスが流入流によって洗い流されないことが保証されます。動物は内部に密閉され、ゴム栓はベルクロ ストラップで固定されます。上流システムを使用する場合、代謝チャンバーからの漏れは動物の空気の損失につながり、その結果、動物の代謝率の過小評価につながります。代謝チャンバー内に動物を閉じ込める際には、シールに注意を払う必要があります。蓋を閉める前にしっかりと密閉されていることを確認するには、ストッパーを容器にしっかりと押し込み、均等になっていることを確認します。ストラップを1~2本(2本が望ましい)使用し、しっかりと引っ張ります。アクリル(プレキシガラス)製のチャンバーは用途によっては製造されますが、適切な装着を確保するには精密な設計が必要です。ガスケットが役立ち、ぴったりとフィットするクランプを適切に使用することで漏れを最小限に抑えることができます。 スクラビングチューブ: 動物チャンバーの前後の水は除去する必要があります。 1 つの構成では、流入する気流を乾燥させるために上流 (プッシュポンプの前、動物チャンバーの前) にDrierite (8メッシュ (スケール) 、つまり比較的粗い) の大きなアクリルカラムを使用し、動物チャンバーの後に水を除去するためにより細かいメッシュ (10〜20、つまり比較的細かい) Drierite のチューブをいくつか使用します。 スクラビングチューブを準備するには、分析装置に塵粒子が移動しないように、チューブの両端に少量の綿があることを確認してください。 綿は、チューブ内に塵が入らないようにするのに十分な量、例えば 0.005 g 程度で少量を使用します。 綿の量が多いと、湿ったときに空気の流れが妨げられます。 漏斗を使用して Drierite をチューブに注ぎ、チューブをベンチに軽く叩いて粒子をしっかりと詰めます (表面積を増やすため。空気と水は緩い Drierite を通過するため、スクラバーを頻繁に交換する必要があります)、少量の綿で蓋をします。動物チャンバーの前後で二酸化炭素を除去するために、Ascarite II を使用します (Ascarite II は Arthur H. Thomas Co. の登録商標です)。Ascarite II には腐食性の NaOH が含まれています (皮膚に付着させないようにし、水から遠ざけてください)。スクラビング チューブは、チューブの端に少量の綿を入れ、10~20 メッシュの Drierite を 3 分の 1 まで入れ、少量の綿を加え、さらにチューブの 3 分の 1 まで Ascarite II を入れ、綿をもう 1 層入れ、さらに Drierite を入れ、チューブを少量の綿で閉じて準備します。各層を追加するたびにチューブをベンチに軽く叩いて、粒子を詰めます。注: Drierite は (オーブンで加熱した後) 何度も使用できますが、表示 Drierite は繰り返し乾燥すると色が薄くなります。Ascarite II は 1 回使用し、有害廃棄物 とみなされます。 分析装置
二酸化炭素 分析計:CO₂分析計 は通常、赤外線検出方式を採用しています。これは、CO₂が赤外線を吸収し、わずかに長い波長の光を再放出するという性質を利用したものです。 分析計のパネルメーターには、0.01~10%のCO₂濃度範囲が表示され、データ記録のために CO₂ 濃度に比例した電圧出力も生成されます。酸素 分析装置:呼吸測定に適した酸素分析装置には、ガルバニック (「周囲温度」)、常磁性 、ポーラログラフィー(クラーク 型電極)、ジルコニウム (「高温」)センサーなど、さまざまな酸素センサーが使用されます。ガルバニック O2 分析装置は、酸性電解質 、重金属アノード 、薄いガス透過膜を含む燃料電池 を使用します。アノード付近のO2分 圧はゼロであるため、 O2は周囲の O2 分圧に比例した速度で膜を介してアノード に拡散 します。燃料電池は、膜におけるO2 分圧に比例した電圧を生成します。キャビネットの温度が安定しており、燃料電池を通過する空気の流れが安定していて範囲内であれば、応答は、サポートする電子機器、ソフトウェア、およびその他の考慮事項に応じて、0.01%以下になります。最後に、コンピュータによるデータ収集 および制御システムが、システムを完成させるための典型的な追加要素となります。チャートレコーダーの代わりに、コンピュータに接続された アナログ-デジタル変換器 を用いて、酸素消費量や二酸化炭素生成量の連続記録を行います。ソフトウェアは、実験者のニーズに合わせて信号をキャプチャ、フィルタリング、変換、表示します。呼吸測定分野には、さまざまな企業や個人がサービスを提供しています(例:Sable Systems 、Qubit Systems、Warthog Systemsも参照)。
体内では酸素が細胞に運ばれ、細胞内ではミトコンドリア に運ばれ、そこで酸素が消費されて生物が必要とするエネルギーの大部分が生成されます。ミトコンドリア呼吸測定法は、生きた動物全体を対象とすることなくミトコンドリアによる酸素消費量を測定するもので、ミトコンドリア機能を研究するための主要なツールです。[ 13 ] このような呼吸測定研究には、3種類のサンプルが対象となります。単離されたミトコンドリア(細胞培養、動物、または植物由来)、透過処理された細胞(細胞培養由来)、および透過処理された繊維または組織(動物由来)です。後者の2つのケースでは、化学物質の添加によって細胞膜が透過性になり、ミトコンドリア膜は選択的に無傷のままになります。そのため、通常は細胞膜 を通過できない化学物質がミトコンドリアに直接影響を与えることができます。細胞膜の透過処理により、細胞は生きた明確な生物として存在しなくなり、ミトコンドリアだけが機能的な構造として残ります。動物全体の呼吸測定とは異なり、ミトコンドリア呼吸測定は溶液中で行われる。つまり、試料は培地に懸濁される。現在、ミトコンドリア呼吸測定は主に密閉チャンバー方式で行われている。
密閉チャンバーシステム 適切な培地に懸濁したサンプルを密閉された代謝チャンバーに入れる。基質または阻害剤を順次添加することで、ミトコンドリアを特定の「状態」にする。ミトコンドリアは酸素を消費するため、酸素濃度が低下する。この酸素濃度の変化は、チャンバー内の酸素センサーによって記録される。酸素濃度の低下率(酸素拡散補正を考慮)から、ミトコンドリアの呼吸速度を計算することができる。 [ 13 ]
装置 通常の装置には、密閉可能な代謝チャンバー、酸素センサー、データ記録、撹拌、温度調節、およびチャンバーへの化学物質導入のための装置が含まれます。動物全体の呼吸測定について上述したように、材料の選択は非常に重要です。[ 13 ] プラスチック材料は酸素貯蔵能力があるため、チャンバーには適していません。プラスチック材料が避けられない場合(たとえば、Oリング、撹拌機のコーティング、またはストッパーの場合)、酸素透過性が非常に低いポリマー(たとえばPTFE ではなくPVDF など)を使用できます。チャンバー材料へのまたはチャンバー材料からの残留酸素拡散は、測定された酸素フラックスを装置の酸素バックグラウンドフラックスで補正することによって対処できます。上述のコンポーネントで構成される装置全体は、しばしばオキシグラフと呼ばれます。上述の動物全体の呼吸測定装置を提供する企業は、通常、ミトコンドリア呼吸測定には関与していません。このコミュニティは、Oroboros Instruments、Hansatech、Respirometer Systems & Applications、YSI Life Sciences、Strathkelvin Instrumentsといった企業によって、価格帯や機能の面で非常に多様なサービスを受けている。
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