Myxococcus xanthus は、グラム陰性の 桿菌 (または棒状)の粘液細菌 の一種で、通常は土壌の最上層に生息しています。これらの細菌は鞭毛を持たず、代わりに線毛を 使って運動します。 [ 1 ] M. xanthus は 、他の微生物に対する捕食行動でよく知られています。これらの細菌は、糖ではなく脂質から炭素を供給します。環境の合図に応じて、さまざまな形態の自己組織化行動を示します。食物が豊富な通常の条件下では、スウォームと呼ばれる捕食性の腐生性単一種バイオフィルムとして存在し、 [ 2 ] これら の細菌 にとって細胞 間 コミュニケーション が重要であることを示しています。飢餓状態では、多細胞発達サイクルを経ます。 [ 3 ]
微生物学
形態学 M. xanthus は、 鞭毛を持た ないグラム陰性桿菌として現れる。[ 4 ] これらの桿菌は平均長さが 7 マイクロメートル、幅が 0.5 マイクロメートルである。[ 5 ] IV 型線毛 (T4P) を利用して表面を這うように「滑走」して移動する。[ 1 ] コロニーまたは群れとして、M. xanthus は 薄い波紋の層として現れ、しばしば獲物に向かって移動する。胞子形態では、細菌は厚い外膜を持つ球状になる。この胞子は黄橙色で、M. xanthus の 名前 (xanthós、古代ギリシャ語で「黄金」を意味する) の由来となっている。[ 4 ]
環境 M. xanthus は通常、土壌の最上層に生息し、細菌や真菌 などの他の微生物を「群れ」で捕食します。[ 6 ] 中性菌であり、pH 7.2~8.2 で最もよく生育します。[ 7 ] この細菌は 中温菌 であり、34~36 °C の温度範囲で最もよく生育します 。他のMyxococcus 属 細菌と同様に、偏性好気性菌 であり、細胞機能を維持するために好気呼吸に酸素を必要とします。[ 8 ]
M. xanthusは化学有機従属栄養細菌です。 酸化還元 反応からエネルギーを得て、電子と炭素の両方を有機分子から得ます。この細菌は分岐したグルコースポリマーであるグリコーゲンを生成および消費しますが、 Embden-Meyerhof-Parnas経路を介してグルコースをピルビン酸に完全に変換することはできません。各酵素の 相同体が ゲノムに存在するにもかかわらず、この経路を通るフラックスは不完全です。このため、M. xanthus は 成長のために糖に依存することができません。不完全な解糖経路が脂質代謝に必要な基質を生成すると仮説が立てられています。[ 9 ]
M. xanthus は炭素源として 脂質代謝 に依存している。この細菌は、特に脂質同化作用 において、多様な脂質反応を示す。真核生物 によく見られるエーテル脂質を生成するが、原核生物にはあまり見られない。これらの反応では、リン脂質は 極性頭部、グリセロール 、および 2 つの脂肪酸に分解される。脂肪酸は、カルボキシル末端でのβ 酸化によって分解される。M . xanthus は 多種多様な脂肪酸を発現する。細胞には少なくとも 18 種類の異なる脂肪酸が含まれており、これはほとんどのプロテオバクテリア に見られる 3 ~ 5 種類の脂肪酸と比較して多い。脂肪酸伸長酵素と脱飽和酵素の冗長性が、この脂肪酸の多様性に寄与している可能性がある。[ 9 ]
M. xanthus は、 捕食した生物からプリン塩基とピリミジン塩基を回収して核酸を生成する。アミノ酸も同様に処理され、大部分は必要に応じて他の経路で使用するためにさらに触媒される。[ 9 ]
進化 M. xanthus が 集合して茎のような構造、すなわち子実体を形成するという独自の能力の進化は、主に水平遺伝子伝達 (LGT) と垂直遺伝子伝達という 2 つの遺伝子伝達メカニズムに起因すると考えられます。粘液細菌の場合、LGT は遺伝子の獲得が他の細菌種から来ることを示唆しており、 M. xanthus の 子実体という形質は他の細菌由来の遺伝子なしでは不可能であるという事実によって裏付けられています。 [ 10 ] LGT は、ゲノムを少なくとも 1.4 Mb 拡大させる原因であることが示されています。[ 11 ] M. xanthus に存在する進化メカニズムについてはほとんど知られていません。しかし、M. xanthus は、大腸菌 を含むさまざまな獲物と汎食性の捕食者 関係を確立できることが発見されています。この捕食者と被食者の関係では、ゲノムと表現型の変化を通じて両種の並行進化が観察され、次世代では一方の種のより優れた適応が他方の種の進化によって相殺され、赤の女王仮説として知られる共進化モデルに従います。しかし、 M. xanthus に存在するこの並行進化を生み出す進化メカニズムはまだ不明です。 [ 12 ]
2003年、科学者のヴェリサーとユーは、M. xanthus ゲノムの特定の部分を削除した。この削除により、細胞は軟寒天上 で効果的に群泳することができなくなった。分離されたコロニーはクローン化され、進化させられた。64週間後、進化した集団のうち2つは、通常の野生型 コロニーとほぼ同じくらい効果的に外側に群泳し始めた。しかし、群泳のパターンは野生型細菌のものとは非常に異なっていた。これは、細胞が新しい移動方法を発達させたことを示唆しており、ヴェリサーとユーは、新しい集団が線毛 を作る能力を取り戻していないことを示すことでこれを確認した。この研究は、長年科学者を悩ませてきた個々の細胞間の協力の進化 に関する疑問に取り組んだ。 [ 13 ]
遺伝学 M. xanthus のゲノムは 、複製起点 1 つとプラスミド を持たない環状染色体 1 つから構成されている。2001 年に、株 DK1622 のゲノムは 9.14 Mb であることが確認された。ゲノムサイズは他のプロテオバクテリア よりもかなり大きいが、これは系統特異的な遺伝子重複によるものと考えられる。ゲノムの 90% 以上はタンパク質をコードする遺伝子を含んでいる。[ 14 ]
2023年に、 M. xanthus のR31分離株の全ゲノムシーケンス が行われ、9.25Mbに達した。R31分離株のゲノムは、約55%のコアタンパク質、25%のアクセサリタンパク質、13%の特異的タンパク質、および分離株に特異的な10%のタンパク質をコードしている。株特異的遺伝子は、他の株には見られない進化および捕食の側面に関連していると考えられる。R31ゲノム内には、18の異なるゲノムアイランドと11のプロファージが見つかった。ゲノムアイランドは 水平遺伝子伝達 によってM. xanthus ゲノム に組み込まれ、細菌の適応性を変化させた。[ 15 ]
株 ミクソコッカス・キサンタス DK1622ミクソコッカス・キサンタス DZ2 v2Myxococcus xanthus DZ2 v1Myxococcus xanthus DZF1Myxococcus xanthus NewJersey2ミクソコッカス・ザンサス DSM16,526 T ミクソコッカス・キサンタス R31ミクソコッカス・キサンタス KF4.3.9c1ミクソコッカス・ザンサス ATCC 27,925ミクソコッカス・キサンタス GH3.5.6c2ミクソコッカス・キサンタス MC3.5.9c15ミクソコッカス・キサンタス MC3.3.5c16ミクソコッカス・キサンタス GH5.1.9c20 ミクソコッカス・キサンタス KF3.2.8c11 Myxococcus xanthus DK1622pDPO ミクソコッカス・キサンタス AB023ミクソコッカス・キサンタス AM005ミクソコッカス・キサンタス CA029ミクソコッカス・ザンサス AM003 [ 15 ] 全ゲノム比較により、M. virescensは M. xanthus と同じ種であることが示されています。[ 16 ] M. virescens は 1892 年に初めて記載されたため、先行性があります。[ 17 ]
複雑な行動
集団行動 M. xanthus の群れは 、非中央集権的な方法で互いにコミュニケーションをとる数百万個の細菌を含む分散システムです。コロニーのメンバー間の単純な協力行動パターンが組み合わさって、「スティグマーギー 」として知られるプロセスで複雑な集団行動を生み出します。たとえば、ある細胞が他の細胞と直接接触している場合にのみ滑走 する傾向があるため、コロニーは「オオカミの群れ」 と呼ばれる群れを形成し、その幅は数インチにも達することがあります。この行動は、細菌によって分泌される細胞外消化酵素 の濃度を高め、捕食を容易にするため、群れのメンバーにとって有利です。M . xanthus は 、広範囲の細菌と一部の真菌の死んだバイオマスを餌とし、生細胞と死細胞を区別し、必要に応じて細胞死と溶解 を引き起こします。[ 2 ] [ 18 ]
ストレス条件下では、細菌は約 10 万個の細胞が集まって、約 24 時間かけて子実体と呼ばれる構造を形成するプロセスを実行します。 [ 19 ] このプロセスの開始時には、細胞は低い運動性を示します。数時間後、細胞は突然、細胞密度を高めるために「流れ」を形成し、子実体を発達させるための層を形成し始める急速な運動期に入ります。[ 19 ] 子実体の内部では、棒状の細胞が球形で厚い壁を持つ胞子に 分化します。形態変化と並行して、新しい タンパク質 の合成と細胞壁 の変化が起こります。これらの凝集の間、密集した細胞の隆起が波紋のように動き、5 時間かけて強弱を繰り返します。[ 20 ]
運動性 社会的移動性により、細胞は多くのクラスターを形成し、孤立した単一細胞は少なくなるという空間分布となる。 M. xanthus は 、A 運動性と S 運動性として知られる 2 つの主要なタイプの運動性を示します。A 運動性 (冒険的)、別名「滑走」[ 21 ] は、鞭毛の助けなしに固体表面上で単一細胞が前進することを可能にする移動方法です。[ 22 ] A 運動性システムには 37 個以上の遺伝子が関与しています。この運動形態は、細胞膜内の Glt 複合体によって促進され、Agl と呼ばれる分子モーターによって駆動されます。M . xanthusの分子モーターは、H + イオン勾配によって駆動されます。各細菌細胞は、細胞体に沿ってモーターの配列を持ち、細胞膜内のペリプラズム空間に局在していますが、細胞壁のペプチドグリカン層に結合しています。モーターは、らせん状の細胞骨格フィラメント上を移動すると仮定されています。[ 23 ]
Glt複合体とAglモーターの組み合わせにより、焦点接着が可能になり、外膜内を自由に移動して基質と接触することができます。細胞外多糖類スライムは、表面上を滑走する動きを助けます。これらの細菌は前進運動に限定されており、動きに抵抗する後端の遅れ棒を持っています。[ 23 ]
M. xanthus は 、2 種類目の運動性を使用する能力を持っています。この運動性は社会運動性 (S-運動性) と呼ばれ、個々の細胞は移動せず、互いに近い細胞が移動します。これにより、多くのクラスターと少数の孤立した単一細胞からなる細胞の空間分布が実現します。[ 22 ]この運動性は、IV 型線毛 [ 24 ]と多様な多糖類 [ 25 ] [ 26 ] の存在に依存します。
S運動は、細胞の先端極を貫通するIV型線毛 の伸長と収縮によって媒介されるため、トゥイッチング運動の一種であると考えられる。S運動システムの遺伝子は、他の細菌におけるトゥイッチング運動の 生合成 、組み立て、および機能に関与する遺伝子の相同遺伝子であると思われる。[ 27 ] [ 28 ]
細胞分化、子実体形成、胞子形成餌(ここでは大腸菌)が存在する場合、M. xanthus 細胞は自己組織化して、波紋と呼ばれる周期的な進行波の帯を形成します(左側)。餌が存在しない領域では、M. xanthus 細胞は栄養不足に陥り、その結果、子実体と呼ばれる干し草の山のような形をした胞子で満たされた構造を形成します(右側、黄色の盛り上がり)。 飢餓に応答して、細胞は資源を種特異的な多細胞子実体の形成に向け、捕食のための社会的協力に役立てます。[ 10 ] 均一な細胞の群れから始まり、一部は子実体に集合し、他の細胞は栄養状態のままです。子実体の形成に関与する細胞は、棒状から球状の耐熱性粘液胞子に変化しますが、周辺細胞は棒状のままです。[ 29 ] 粘液胞子はバチルス 内生胞子 ほど環境の極限に耐性はありませんが、乾燥 や凍結に対する相対的な耐性により、粘液細菌は季節的に厳しい環境で生き残ることができます。栄養源が再び利用可能になると、粘液胞子は発芽し、胞子殻を脱ぎ捨てて棒状の栄養細胞になります。1つの子実体から数千個の粘液胞子が同期して発芽することで、新しい粘液細菌コロニーのメンバーはすぐに協力して摂食することができます。[ 30 ]
M. xanthus 細胞は、飢餓とは無関係に環境耐性胞子に分化することもできます。このプロセスは、化学誘導胞子形成として知られており、高濃度のグリセロールやその他の化学物質の存在によって引き起こされます。[ 31 ] この胞子形成プロセスの生物学的意義は、自然環境でそのような高濃度の化学誘導物質が見つかる可能性が低いことから、数十年にわたって議論されてきました。[ 32 ] [ 33 ] しかし、抗真菌化合物アンブルチシンが土壌中に存在すると予想される濃度で強力な天然誘導物質として作用するという発見は、化学誘導胞子形成がアンブルチシン産生粘液細菌Sorangium cellulosum との競合とコミュニケーションの結果であることを示唆しています。[ 34 ]
環境信号を感知する
盗聴する能力 M. xanthusの 群れは、捕食する細菌が産生する細胞外シグナルを傍受し、群れの行動を変化させて捕食者としての効率を高めることが示されている。他の獲物に向けて獲物が産生するシグナルであるアシルホモセリンラクトンが存在すると、 M. xanthusは 粘液胞子ではなく、より栄養的な捕食細胞へと変化する。これにより、高度に適応した生理機能が実現し、粘液細菌がほぼ普遍的に分布していることに貢献したと考えられる。これらの細菌は、獲物が死ぬと放出されるホスファチジルエタノールアミンと呼ばれる化学誘引物質にも反応する。この化学誘引物質はより多くのM. xanthusを引き寄せ、 獲物細胞の完全な溶解を可能にする。M. xanthusが 盗聴するためには、獲物間で発信される信号が高濃度である必要があり、これはホスファチジルエタノールアミンが放出され、より多くの獲物を引き寄せるときに起こり得る。[ 35 ]
細胞間コミュニケーション 細胞は子実体形成と胞子形成の過程でコミュニケーションをとっている可能性が非常に高い。なぜなら、飢餓状態の細胞群が子実体内で粘液胞子を形成するからである。[ 36 ] 細胞間シグナル伝達は、胞子形成が適切な場所と適切なタイミングで起こることを保証するために必要であると思われる。[ 37 ] 研究は、発生遺伝子発現と完全な子実体形成に必要な細胞外シグナルであるA因子の存在を支持している。[ 38 ] このシグナル伝達機構は、周囲の凝集体の大きさを測定することもできる。[ 19 ]
発達上の不正行為 M. xanthus では社会的不正行為が一般的です。突然変異体が一般的ではなく、胞子を生成するという集団にとって有益な機能を果たすことができない限り、突然変異体は集団全体の利益を享受します。研究によると、4 種類のM. xanthus 突然変異体は、混合物中の初期頻度に比べて胞子の中で過剰に存在することで、発生中に不正行為の形態を示しました。[ 39 ]
研究における重要性 粘液細菌の複雑な生活環は、遺伝子制御 や細胞間相互作用の研究において非常に魅力的なモデルとなっています。M . xanthus の特性は研究が非常に容易であるため、研究対象として重要です。M . xanthusの実験室株は振とう培養で浮遊性増殖が可能であるため、大量に培養することが容易です。M . xanthus では、古典遺伝学および分子遺伝学のツールが比較的よく開発されています。[ 40 ]
M. xanthus の子実体は、 Stigmatella aurantiaca や他の粘液細菌が生成する精巧な構造に比べると比較的原始的ですが、発生に関与することが知られている遺伝子の大部分は種を超えて保存されています。[ 41 ] M. xanthus の寒天培養物を子実体に成長させるには、細菌を飢餓培地に塗布するだけで済みます。 [ 42 ] グリセロールやさまざまな代謝産物などの化合物を培地に添加することで、子実体の形成を介さずに粘液胞子の生成を人工的に誘導することも可能です。[ 43 ] このようにして、発生サイクルのさまざまな段階を実験的に分離することができます。
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外部リンク モデル生物データベース アイオワ大学のジョン・カービー スタンフォード大学デール・カイザー研究室 社会行動の進化を観察する Myxococcus xanthusの分類学的情報 Bac Dive (細菌多様性メタデータベース)におけるMyxococcus xanthus のタイプ株
動画 大腸菌コロニーを捕食するミクソコッカス・キサンタス ミクソコッカス・キサンタスの 子実体形成ミクソコッカス・キサンタスによる 波紋 – 捕食捕食性細菌のクラウドソーシング