凍結 精液の凍結保護剤 として最も一般的に使用されているのはグリセロール (培養培地中10%)です。グリセロール溶液には、ショ糖 やその他の二糖類 、三糖類 が添加されることがよくあります。凍結保護培地には、卵黄または大豆レシチンが添加されることがありますが、運動性、形態、試験管内でのヒアルロン酸への結合能、解凍後のDNAの完全性に関して、両者の間に統計的に有意な差はありません。[ 1 ]
追加の凍結保護剤を使用することで、凍結後の精子の生存率と受精率を高めることができます。凍結保存前にヘパリン結合タンパク質で精子を処理すると、凍結損傷とROSの生成が減少しました。[ 2 ] 神経成長因子を凍結保護剤として添加すると、解凍後の精子細胞死率が低下し、運動性が向上します。[ 3 ] 凍結前にシクロデキストリンを使用してコレステロールを精子細胞膜に組み込むと、精子の生存率も向上します。[ 4 ]
精液サンプルを凍結保存するには、いくつかの異なる方法があります。
ブロック凍結(低速):まずサンプルを洗浄し、凍結保護剤を添加します。凍結および融解中に起こりうる損傷から精子を保護するために、凍結保護剤溶液を精子に添加します。この溶液は、細胞膜を損傷し、精子の生存率に影響を与える可能性のある氷結晶の形成を防ぐのに役立ちます。精子は分注され、少しずつ凍結された後、液体窒素に浸され、精子バンク に保管されます。これは時間のかかる手順です。 錠剤凍結(急速):手順は同じですが、今度はCO₂錠剤の形で保存します。 その後、錠剤を分注し、N₂に封入して保存 します。 これは、精液サンプルが貴重であると判断される場合、例えば、サンプルが顕微授精(ICSI)や体外受精(IVF)を希望する人のものである場合などに行われます。この方法では、サンプルを少しずつ解凍できるため、精液の最適化が可能になります。
ガラス化(超高速):非常に高価な処置です。精子ガラス化は、液体窒素に直接曝露させる超高速凍結保存法です。この方法により、細胞内水の結晶化や凍結損傷を回避でき、変異原性リスクを伴う可能性のある透過性凍結保護剤を使用する必要もありません。 氷結晶の形成を防ぎ、取り返しのつかない劣化や細胞死の主な原因を防ぎます。この方法により、サンプルが受精能力を維持し、新鮮なサンプルと同様の挙動を示すことが保証されます。ガラス化により、解凍後の運動性と凍結生存率が向上。[ 5 ] この現在の技術は日本人によって発明され、世界中の最高のセンターで使用されています。非常に高速(-23000℃/分)であるため、結果として小さな氷結晶の発生を防ぎ、「ナイフ」効果を防ぎます。
包装方法 包装方法は、熱安定性、保存容量、およびサンプルの解凍効率に直接影響するため、凍結保存プロセスにおいて非常に重要な要素です。精子の凍結保存にはいくつかの包装技術が用いられており、それぞれに長所と短所があります。
クライオトップ(クライオバイアルまたはクライオチューブ) 利点:
試料識別に適した表面を提供する。 プロセス中の熱安定性を向上させる。 デメリット:
窒素が保管物と接触する可能性がある。 より多くのストレージ容量が必要です。 凍結速度の均一性が低下する。 ゴブレット 利点:
低コスト。 サンプルを部分的に解凍してください。 均一に凍結するようにしてください。 デメリット:
窒素が試料と接触する。 これらの装置に保管された錠剤は、温度変化に対してより敏感である。 ストロー 利点:
必要な保管スペースが少なくて済む。 より均一な凍結速度を実現する。 急速解凍してください。 デメリット:
温度変化に対してより敏感である。 識別用の表面積を小さくする。 充填・密封装置のコストは高い。
解凍 40 °C (104 °F) での解凍は、精子の運動性を最適にするようです。一方、正確な解凍温度は、精子の生存率、先体状態、ATP 含有量、および DNA にわずかな影響しか与えないようです。[ 6 ] 凍結と同様に、解凍プロセスについてもさまざまな技術が開発されており、Di Santo らによって両方とも議論されています。[ 7 ]
参考文献 ↑ Reed, ML; Ezeh, PC; Hamic, A; Thompson, DJ; Caperton, CL (2009). "大豆レシチンは、ヒト精子の凍結保存において卵黄の代わりに用いられ、解凍後の運動性、形態、精子DNAの完全性、またはヒアルロン酸への精子結合に悪影響を及ぼすことなく保存される" . Fertility and Sterility . 92 (5): 1787– 1790. doi : 10.1016/j.fertnstert.2009.05.026 . PMID 19539916 . ↑ Patel, M; Gandotra, VK; Cheema, RS; Bansal, AK; Kumar, A (2016). "精液血漿ヘパリン結合タンパク質は、雄牛精液の凍結保存中の酸化ストレスを軽減することにより精液の質を向上させる" . Asian-Australasian Journal of Animal Sciences . 29 (9): 1247– 1255. doi : 10.5713/ajas.15.0586 . PMC 5003984 . PMID 26954172 . ↑ サエドニア、S;バハドラン、H;アミディ、F;アサディ、MH;ナジ、M;ファラヒ、P;ネジャド、NA (2015)。 「ヒト精液中の神経成長因子: 凍結保存プロセス中の正常精子症男性に対する神経成長因子の影響」 。 イラン基礎医学ジャーナル 。 18 (3): 292–299 。 土井 : 10.22038/IJBMS.2015.4134 。 PMC 4414996 。 PMID 25945243 。 ↑ Purdy, PH; Graham, JK (2004). "コレステロールを負荷したシクロデキストリンが雄牛精子の凍結生存に及ぼす影響". Cryobiology . 48 (1): 36– 45. doi : 10.1016/j.cryobiol.2003.12.001 . PMID 14969680 . ↑ Vutyavanich, T; Piromlertamorn, W; Nunta, S (2010). "ヒト精子の急速凍結と緩慢プログラム凍結の比較" . Fertility and Sterility . 93 (6): 1921– 1928. doi : 10.1016/j.fertnstert.2008.04.076 . PMID 19243759 . ↑ Calamera, JC; Buffone, MG; Doncel, GF; Brugo-Olmedo, S; de Vincentiis, S; Calamera, MM; Storey, BT; Alvarez, JG (2010). "凍結保存したヒト精子の運動性回復に対する解凍温度の影響" . Fertility and Sterility . 93 (3): 789– 794. doi : 10.1016/j.fertnstert.2008.10.021 . hdl : 11336/14695 . PMID 19059590 . ↑ Di Santo, M; Tarozzi, N; Nadalini, M; Borini, A (2012). "ヒト精子凍結保存:技術の最新情報、DNA完全性への影響、ARTへの示唆" . Advances in Urology . 2012 854837. doi : 10.1155/2012/854837 . PMC 3238352 . PMID 22194740 . ↑ Thomson, LK; Fleming, SD; Barone, K; Zieschang, JA; Clark, AM (2010). "ヒト精子DNA断片化に対する繰り返し凍結融解の影響" . Fertility and Sterility . 93 (4): 1147– 1156. doi : 10.1016/j.fertnstert.2008.11.023 . PMID 19135665 . 1 2 Kopeika, J.; Thornhill, A.; Khalaf, Y. (2014). "配偶子および胚のゲノムに対する凍結保存の影響:凍結生物学の原理と証拠の批判的評価" . Human Reproduction Update . 21 (2): 209– 227. doi : 10.1093/humupd/dmu063 . PMID 25519143 .