真核生物翻訳開始因子4E ( eIF4E とも呼ばれる)は、ヒトではEIF4E 遺伝子 によってコードされるタンパク質である。[ 5 ] [ 6 ] eIF4Eは翻訳開始 において中心的な役割を果たし、タンパク質合成の調節に関与している。そのmRNAキャップ結合活性は、さまざまな生物学的プロセスや疾患状態に影響を与えるため、特に異常なタンパク質産生を特徴とする疾患において、治療開発の重要な標的となっている。
発見 eIF4Eは、1976年にFilipowiczら[ 7 ] によって翻訳に関与する細胞質メッセンジャーRNA キャップ結合タンパク質として発見されました。 2年後の1978年、Sonenbergら[ 8 ] は、同じ実験を繰り返し、mRNA-タンパク質複合体の安定性を高めるために架橋剤を加えることで、Filipowiczらの発見を確認しました。これが、真核生物のキャップ依存性翻訳開始の理解の基礎となりました。これらの発見は、多くの科学者によって確認され、eIF4EがmRNAキャップに結合して真核生物の翻訳開始を促進することを確認した多くの論文でレビューされています。
関数
キャップ依存性翻訳開始 真核生物の翻訳開始因子eIF4Eは、リボソームを mRNAの5'キャップ構造に誘導し、効率的なタンパク質合成を促進する中心的な役割を果たしている。eIF4Eが5' mRNAキャップに結合することによって促進されるキャップ依存性開始は、真核生物の翻訳開始の律速段階と考えられている。[ 9 ] 多くの細胞性mRNAは、タンパク質への翻訳にeIF4Eに依存している。この役割において、eIF4EはeIF4F複合体の一部として機能し、翻訳開始に必要なeIF4G、eIF4A、およびその他の因子をリクルートする。しかし、一部のウイルスは、eIF4Gを切断してeIF4E結合ドメインを除去することでこのメカニズムを回避し、ウイルスRNAのキャップ非依存性翻訳を可能にする。同様に、熱ショックタンパク質をコードするものなど、一部の細胞性mRNAは、内部リボソーム進入部位 (IRES)要素やeIF3dなどの他の開始因子による直接結合など、代替的な翻訳開始戦略を利用している。[ 20 ] [ 21 ]
eIF4Eがバイパスまたは阻害される状況では、eIF3D、eIF3I、PARN、核キャップ結合複合体(CBC)などの他のキャップ結合タンパク質が特殊な翻訳経路を媒介することができる。[ 22 ] [ 23 ] [ 24 ]
mRNAの輸出 eIF4Eは細胞質機能に加えて、核内でも明確な役割を担っています。3'UTRに50ヌクレオチドのeIF4E感受性エレメント(4ESE)を含む特定のmRNAの核外輸送を促進します。この輸送機構は、eIF4Eのキャップ結合能、CRM1/XPO1輸送経路、およびeIF4Eと4ESEを含む転写産物を橋渡しするアダプタータンパク質LRPPRCに依存しています。[ 25 ] [ 26 ]
RNAプロセシング 核内eIF4Eは、選択的スプライシング、3'末端切断、m7Gキャッピング などのRNAプロセシングイベントにも影響を与える。核内eIF4E活性の上昇は、いくつかの癌、特に急性骨髄性白血病(AML)における癌遺伝子再プログラミングと関連付けられている[ 27 ] [ 28 ] [ 29 ]。RNA 輸出と翻訳における複合的な役割を通じて、eIF4Eは遺伝子発現の全体的な調節因子として機能し、「キャップシャペロン」タンパク質と呼ばれることもある。
規制
翻訳抑制 翻訳開始因子eIF4Eは、シナプスにおける特定のmRNAの翻訳を制御する脆弱X精神遅滞タンパク質( FMRP )によって厳密に制御されている。FMRPは CYFIP1 と相互作用し、CYFIP1はEIF4EBP1、EIF4EBP2、EIF4EBP3などの典型的な4E結合タンパク質に見られるドメインと構造的に類似したドメインでeIF4Eに直接結合する。この相互作用はeIF4Gの結合を競合的に阻害し、それによって真核生物の翻訳開始複合体の組み立てを阻害し、翻訳 を抑制する。[ 30 ] FMRP–CYFIP1–eIF4E複合体は、樹状突起に局在するBC1などの非コードRNAによってさらに安定化され、これらのRNAはFMRP-CYFIP1相互作用を強化し、特定の標的mRNAへのリクルートメントを媒介する。[ 30 ]
この抑制複合体は神経刺激に反応する。シナプス活動はCYFIP1とeIF4Eの解離を促進し、それによってeIF4Gが結合して翻訳を開始できるようになる。このメカニズムにより、シナプスにおけるタンパク質合成の動的かつ活動依存的な調節が可能になり、シナプス可塑性や学習などのプロセスに寄与する。[ 30 ]
eIF4Eは比較的存在量の少ない開始因子であるため、eIF4Eは複数のレベルで制御される可能性がある。[ 31 ] [ 32 ] eIF4Eの制御は、転写、RNA安定性リン酸化、細胞内局在、およびパートナータンパク質のレベルで達成される可能性がある。[ 33 ]
遺伝子発現とRNA安定性 eIF4Eの転写調節に関わるメカニズムは完全には解明されていません。しかし、いくつかの報告では、細胞周期中のmycレベルとeIF4E mRNAレベルの間に相関関係があることが示唆されています。[ 34 ] この関係の根拠は、eIF4E遺伝子のプロモーター領域にある2つのmyc結合部位(CACGTG Eボックスリピート)の特性解析によってさらに確立されました。[ 35 ] この配列モチーフは、mycの他の生体内標的と共通しており、eIF4EのEボックスリピートの変異はプロモーター領域を不活性化し、その結果、発現が減少します。
最近の研究では、eIF4E レベルは NFkB および C/EBP によって転写レベルで制御できることが示されています。[ 36 ] [ 37 ] 初代 AML 細胞に IkB-SR を導入すると、eIF4E mRNA レベルの低下だけでなく、eIF4E タンパク質の再局在化も起こりました。[ 18 ] eIF4E mRNA の安定性は、HuR および TIAR タンパク質によっても制御されます。[ 38 ] [ 39 ] eIF4E 遺伝子増幅は、頭頸部癌および乳癌検体の一部で観察されています。[ 40 ]
リン酸化 細胞増殖を促進するホルモン、成長因子、分裂促進因子などの刺激は、eIF4Eをリン酸化することによって翻訳速度も向上させる。[ 41 ] eIF4Eのリン酸化と翻訳速度は必ずしも相関しているわけではないが、細胞周期全体を通してeIF4Eのリン酸化のパターンは一貫しており、G0期とM期にはリン酸化が低く、G1期とS期にはリン酸化が高いことが観察される。 [ 42 ]この 証拠は 、eIF4Eの結晶構造によってさらに裏付けられており、セリン残基209のリン酸化がキャップ付きmRNAに対するeIF4Eの親和性を高める可能性があることを示唆している。
eIF4Eのリン酸化は、細胞株で最初に示されたように、RNA輸出を抑制する能力や発癌性にも関連している。[ 43 ]
パートナータンパク質 eIF4F複合体の組み立ては、eIF4E結合タンパク質(4E-BP)と呼ばれるタンパク質によって阻害されます。4E-BPは、キャップ依存性翻訳を阻害する小型の耐熱性タンパク質です。[ 33 ] リン酸化されていない4E-BPはeIF4Eと強く相互作用し、翻訳を阻害します。一方、リン酸化された4E-BPはeIF4Eに弱く結合するため、翻訳の過程を妨げません。[ 44 ] さらに、4E-BPの結合は、eIF4EのSer209のリン酸化を阻害します。[ 45 ] 注目すべきことに、4E-BP1は核と細胞質の両方に存在するため、核内のeIF4Eの機能も調節している可能性が高いです。[ 46 ] 最近の研究では、4E-BP3がeIF4E依存性mRNAの核細胞質輸送を調節することが示されました。[ 47 ] また、4E-BP1と同じ部位に結合するeIF4Eの細胞質調節因子も多数存在する。
ホメオドメイン含有タンパク質である HoxA9、Hex/PRH、Hox 11、Bicoid、Emx-2、Engrailed 2 など、eIF4E の活性を刺激または抑制できる他の多くのパートナータンパク質が見つかっています。[ 48 ] [ 18 ] [ 49 ] [ 50 ] [ 51 ] HoxA9 は eIF4E の mRNA 輸出および翻訳活性を促進しますが、Hex/PRH は eIF4E の核機能を阻害します。[ 18 ] [ 52 ] [ 53 ] RNA ヘリカーゼ DDX3 は eIF4E に直接結合し、翻訳を調節し、P ボディおよび mRNA 輸出において潜在的な機能を持っています。[ 54 ] [ 25 ]
RINGドメインもeIF4Eに結合します。前骨髄球性白血病タンパク質PMLは、eIF4Eの核RNA輸出と発癌活性の両方を強力に抑制します。PMLのRINGドメインは、その背側表面でeIF4Eに直接結合し、eIF4Eの発癌活性を抑制します。さらに、PMLとeIF4Eの核小体の一部は共局在します。[ 55 ] [ 17 ] [ 56 ] [ 16 ] [ 18 ] [ 57 ] RNA-eIF4E複合体はPML小体では観察されません。これは、PMLがeIF4Eのm7Gキャップ結合機能を抑制するという観察と一致しています。[ 17 ] [ 56 ] [ 57 ] 構造研究によると、関連するアレナウイルスRINGフィンガータンパク質であるラッサ熱Zタンパク質も同様に背側表面でeIF4Eに結合できます。[ 56 ] [ 58 ] [ 59 ]
eIF4Eの核内移行は、インポーチン8との直接的な相互作用によって媒介され、インポーチン8はeIF4Eのm7Gキャップ結合部位と結合する。[ 60 ] 実際、インポーチン8レベルの低下は、eIF4E過剰発現細胞の癌原性ポテンシャルとRNA輸出機能を低下させる。インポーチン8はeIF4Eのキャップ結合部位に結合し、NMRで観察されるように、過剰なm7Gキャップ類似体によって競合される。eIF4E はまた、インポーチン8 RNAのRNA輸出を刺激し、それによってより多くのインポーチン8タンパク質を生成する。細胞の種類によっては、この役割を果たす追加のインポーチンが存在する可能性がある。最初の研究では、eIF4E輸送タンパク質4E-T(eIF4ENIF1)が核内移行を促進すると示唆されたが、その後の研究では、この因子はむしろeIF4Eの細胞質処理体(P体)への局在を変化させ、翻訳を抑制することが示された。[ 61 ]
ポティウイルスのウイルス性タンパク質ゲノム結合タンパク質(VPg)は、eIF4Eのキャップ結合部位に直接結合することがわかった。VPgはゲノムRNAに共有結合しており、この相互作用によりVPgは「キャップ」として機能することができる。[ 62 ] [ 63 ] [ 24 ] [ 64 ] ポティウイルスのVPgは、ポリオウイルスなどの他のVPgとは配列または構造上の相同性がない。試験管内では、VPg-RNA複合体はm7Gキャップ 付きRNAと同様の効率で翻訳され、VPgがeIF4Eに結合して翻訳機構を活性化することを示している。一方、遊離VPg(結合RNAがない場合)は、細胞内でeIF4Eのすべてのキャップ依存性活性と競合し、翻訳とRNA輸出を阻害する。[ 64 ]
細胞内局在 eIF4E の機能を調節するいくつかの因子は、eIF4E の細胞内局在も調節します。たとえば、PRH/Hex の過剰発現は、eIF4E の細胞質保持につながり、その結果、mRNA 輸出活性が失われ、形質転換が抑制されます。[ 18 ] PML の過剰発現は、eIF4E を PML とともに核小体に隔離し、RNA を含む eIF4E 核小体の減少につながり、これは eIF4E 依存性 mRNA 輸出の抑制と相関し、ストレスによって調節される可能性があります。[ 17 ] [ 16 ] [ 18 ] LRPPRC の過剰発現は、核内での eIF4E と PML の共局在を減少させ、eIF4E の mRNA 輸出活性の増加につながります。上記のように、インポーチン 8 は eIF4E を核内に運び込み、その過剰発現は細胞株で eIF4E のRNA 輸出および癌化形質転換 活性を刺激します。初代AML細胞にIkB-SRを導入すると、eIF4E mRNAレベルの低下だけでなく、eIF4Eタンパク質の再局在化も起こった。[ 18 ]
がんにおける役割 Lazaris-Karatzasら[ 65 ] は、eIF4Eの過剰発現が線維芽細胞の腫瘍形成性形質転換を引き起こすことを発見した。この最初の観察以来、多くのグループが異なる細胞株でこれらの結果を再現している[ 66 ] 。その結果、eIF4E活性は、乳がん、肺がん、前立腺がんを含むいくつかの癌に関与している。実際、転移性ヒト腫瘍の転写プロファイリングにより、eIF4Eが一貫して上方制御されていることが知られている独特の代謝シグネチャーが明らかになった[ 67 ]。
eIF4E レベルは、急性骨髄性白血病 (AML)、多発性骨髄腫、乳児 ALL、びまん性大細胞型 B 細胞リンパ腫、乳がん、前立腺がん、頭頸部がんなど多くの癌で上昇しており、その上昇は一般的に予後不良と相関しています。[ 29 ] [ 68 ] [ 70 ] [ 71 ] [ 72 ] [ 73 ] [ 74 ] AML などの多くの癌では、eIF4E は核に豊富に存在し、キャッピング、スプライシング、RNA 輸出、翻訳など、eIF4E のいくつかの活性が患者の原発検体で上昇していることがわかっています。
eIF4E を標的とした最初の臨床試験では、古い抗ウイルス薬であるリバビリンが m7G キャップ競合薬として使用され、eIF4E の調節異常に関連する癌細胞株や動物モデルでかなりの活性を示しました。[ 75 ] [ 76 ] [ 77 ] [ 78 ] [ 79 ] [ 80 ] [ 72 ] [ 81 ] [ 82 ] [ 83 ] [ 84 ] [ 85 ] [ 74 ]現在までに PubMed の検索により、30 以上のグループがリバビリンが eIF4E 活性を標的としていることを発見した一方、2 つのグループはそうではないこと を 明らかにしました。eIF4Eを 標的とした最初の試験では、リバビリン単剤療法が eIF4E 活性を阻害し、AML 患者の完全寛解を含む客観的な臨床反応をもたらすことが実証されました。[ 29 ] 興味深いことに、eIF4E の核から細胞質への再局在化は臨床的寛解と相関しており、その核内活性が疾患進行に関係していることを示唆している。[ 29 ] 抗白血病薬と併用した AML におけるその後のリバビリン試験では、寛解や eIF4E の分子標的化を含む客観的な臨床反応が再び示された。[ 70 ] [ 86 ] これらの AML 研究では、臨床反応は核内 eIF4E の減少と相関し、臨床的再発は核内 eIF4E の再出現と、その RNA 輸出活性と相関していた。リバビリンを併用した他の研究では、頭頸部癌で同様の有望な結果が示された。[ 73 ] リバビリンは、これまでに調べられた eIF4E のすべての活性 (スプライシング、キャッピング、RNA 輸出、翻訳) を阻害する。したがって、eIF4E はヒトにおいて治療標的として成功しているが、リバビリンに対する薬剤耐性は、長期的な疾患制御にとって新たな問題となっている。[ 79 ] [ 70 ] [ 86 ]
eIF4Eはアンチセンスオリゴヌクレオチドの標的にもなっており、マウスの前立腺癌モデルでは非常に強力であったが[ 87 ] 、ヒトでの単剤療法試験では、マウスと比較してヒトでのeIF4Eレベルの低下効率が低いためか、臨床的利益は得られなかった[ 88 ] 。ナノ粒子送達の最近の進歩により、この戦略が改善される可能性がある。また、キャップ結合部位と背側表面の間に結合するeIF4Eのアロステリック阻害剤も実験的に使用されている[ 89 ] 。
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