アフィニティークロマトグラフィーは、生体分子と他の物質との間の非常に特異的な高分子結合相互作用に基づいて、混合物から生体分子を分離する方法です。結合相互作用の具体的なタイプは、対象となる生体分子によって異なります。抗原と抗体、酵素と基質、受容体とリガンド、またはタンパク質と核酸[ 1 ]の結合相互作用は、さまざまな生体分子の分離によく利用されます。アフィニティークロマトグラフィーは、他のクロマトグラフィー法と比較して、高い選択性と分離分解能を持つため有用です[ 2 ] [ 3 ]。
アフィニティークロマトグラフィーは、目的の分析物(通常は移動相に溶解)と結合パートナーまたはリガンド(固定相に固定化)との間の特異的な結合相互作用という利点があります。典型的なアフィニティークロマトグラフィー実験では、リガンドは固体で不溶性のマトリックス(通常はアガロースやポリアクリルアミドなどのポリマー)に結合し、リガンドが反応して安定な共有結合を形成できる反応性官能基を導入するように化学的に修飾されます。 [ 4 ]まず、固定相をカラムにロードし、そこに移動相を導入します。リガンドに結合する分子は固定相に結合したままになります。次に、洗浄バッファーを適用して、固定相との弱い相互作用を破壊することにより、非標的生体分子を除去しますが、目的の生体分子は結合したままになります。その後、いわゆる溶出バッファーを適用して、結合した標的生体分子とリガンドとの相互作用を破壊することにより、標的生体分子を除去できます。このようにして、標的分子は溶出液中に回収されます。[ 5 ]
アフィニティークロマトグラフィーでは、分析対象物の分子量、電荷、疎水性、その他の物理的特性を知る必要はありませんが、その結合特性に関する知識は分離プロトコルの設計に役立ちます。[ 5 ]アフィニティークロマトグラフィー手順で一般的に利用される結合相互作用の種類を以下の表にまとめます。


固相への結合は、カラムクロマトグラフィーによって達成できる。この方法では、固相媒体をカラムに充填し、まず初期混合物をカラムに通して沈降させ、次に洗浄バッファーをカラムに通し、続いて溶出バッファーをカラムに添加して回収する。これらの工程は通常、常圧下で行われる。あるいは、バッチ処理を用いて結合を達成することもできる。例えば、容器内の固相に初期混合物を加え、混合し、固相を分離し、液相を除去し、洗浄し、再遠心分離し、溶出バッファーを添加し、再遠心分離して溶出物を除去する。
場合によっては、バッチ法で結合を行い、目的分子が結合した固相をカラムに充填し、カラム上で洗浄と溶出を行うハイブリッド法が用いられる。
アフィニティークロマトグラフィーで使用されるリガンドは、有機および無機の両方の供給源から得られます。生物学的供給源の例としては、血清タンパク質、レクチン、抗体などがあります。無機供給源としては、モロン酸、金属キレート、トリアジン染料などがあります。[ 7 ]
上記2つの方法の利点を組み合わせた第3の方法として、膨張床吸収法も開発されている。固相粒子をカラム内に配置し、液相を底部から注入して上部から排出する。粒子の重力により、固相が液相とともにカラムから排出されることはない。
アフィニティークロマトグラフィーカラムは、塩濃度、pH、pI、電荷、イオン強度を直接変化させるか、勾配を用いて溶出させることで、目的の粒子を分離することができる。
近年では、複数のカラムを直列に接続した装置が開発されている。単一カラム装置と比較した利点は、非結合生成物が新鮮なカラム材料を備えた次のカラムに直接送られるため、樹脂材料を完全にロードできることである。これらのクロマトグラフィープロセスは、周期向流クロマトグラフィー(PCC)として知られている。したがって、生産される製品量あたりの樹脂コストを大幅に削減できる。一方のカラムを常に溶出および再生している間に、もう一方のカラムにロードできるため、すでに2つのカラムで利点を最大限に活用できる。[ 8 ]追加のカラムを使用すると、追加の装置と樹脂コストがかかるものの、溶出および再生時間に柔軟性がさらに高まる。
アフィニティークロマトグラフィーは、核酸の精製、無細胞抽出物からのタンパク質の精製[ 9 ]、血液からの精製など、多くの用途に使用できます。
アフィニティークロマトグラフィーを用いることで、特定の断片に結合するタンパク質と、その特定の断片に結合しないタンパク質を分離することができる。[ 10 ]この精製技術は、必要なタンパク質の生物学的特性に依存しているため、有用な技術であり、タンパク質を1回のステップで何倍も精製することができる。[ 11 ]
さまざまな用途に対応する多くの異なる親和性媒体が存在する。[ 12 ] [ 9 ] [ 13 ] 簡単に言うと、それらは(一般的に)活性化/機能化されており、機能的なスペーサー、サポートマトリックスとして機能し、毒性試薬の取り扱いを排除する。
アミノ酸培地は、様々な血清タンパク質、タンパク質、ペプチド、酵素、ならびにrRNAおよびdsDNAに使用されます。アビジンビオチン培地は、ビオチン/アビジンおよびその誘導体の精製プロセスに使用されます。
糖鎖結合は、糖タンパク質やその他の糖鎖含有物質に最もよく用いられます。糖鎖は、レクチン、糖タンパク質、またはその他の糖鎖代謝産物タンパク質に用いられます。色素リガンド媒体は非特異的ですが、生物学的基質やタンパク質を模倣します。グルタチオンは、GSTタグ付き組換えタンパク質の分離に有用です。ヘパリンは汎用的な親和性リガンドであり、血漿凝固タンパク質、核酸酵素、リパーゼの分離に最も有用です。
疎水性相互作用媒体は、遊離カルボキシル基やタンパク質を標的とするために最も一般的に使用される。
免疫親和性媒体(詳細は後述)は、抗原と抗体の高い特異性を利用して分離します。固定化金属親和性クロマトグラフィーは、さらに後述で詳しく説明しますが、金属イオンとタンパク質(通常は特殊なタグが付けられている)との相互作用を利用して分離します。ヌクレオチド/補酵素は、脱水素酵素、キナーゼ、トランスアミナーゼの分離に用いられます。
核酸は、mRNA、DNA、rRNA、およびその他の核酸/オリゴヌクレオチドを捕捉する働きをする。プロテインA/G法は、免疫グロブリンの精製に用いられる。
特殊培地は、特定のクラスまたはタイプのタンパク質/補酵素向けに設計されています。このタイプの培地は、特定のタンパク質または補酵素を分離するためにのみ機能します。
この手法のもう一つの用途は、血清からの抗体の親和性精製です。血清に特定の抗原に対する抗体が含まれていることが分かっている場合(例えば、血清が当該抗原に対して免疫された生物由来の場合)、その血清を用いて抗原の親和性精製を行うことができます。これは免疫親和性クロマトグラフィーとも呼ばれます。例えば、生物がGST融合タンパク質に対して免疫された場合、融合タンパク質に対する抗体、そして場合によってはGSTタグに対する抗体も産生されます。その後、このタンパク質をアガロースなどの固体支持体に共有結合させ、免疫血清からの抗体精製における親和性リガンドとして使用することができます。
徹底的な精製のため、GSTタンパク質とGST融合タンパク質はそれぞれ別々に結合させることができます。まず、血清をGSTアフィニティーマトリックスに結合させます。これにより、融合タンパク質のGST部分に対する抗体が除去されます。次に、血清を固相担体から分離し、GST融合タンパク質マトリックスに結合させます。これにより、抗原を認識する抗体が固相担体上に捕捉されます。目的の抗体の溶出は、多くの場合、グリシンpH 2.8などの低pH緩衝液を用いて行われます。溶出液は、中性トリス緩衝液またはリン酸緩衝液に回収され、低pH溶出緩衝液を中和し、抗体活性の劣化を阻止します。これは、アフィニティー精製を用いて、最初のGST融合タンパク質を精製し、血清から不要な抗GST抗体を除去し、目的の抗体を精製する良い例です。
モノクローナル抗体は、タンパク質に非常に特異的に結合するように選択することもでき、その場合、タンパク質は比較的穏やかな条件下で放出されます。これは、将来のさらなる研究に役立つ可能性があります。[ 14 ]
ペプチド抗原に対する抗体を精製するために、簡略化された戦略がよく用いられる。ペプチド抗原を合成的に作製する場合、ペプチドのN末端またはC末端に末端システイン残基を付加する。このシステイン残基にはスルフィドリル官能基が含まれており、これによりペプチドをキャリアタンパク質(例えば、キーホールリンペットヘモシアニン(KLH))に容易に結合させることができる。同じシステイン含有ペプチドは、システイン残基を介してアガロース樹脂に固定化され、その後、抗体の精製に用いられる。
ほとんどのモノクローナル抗体は、細菌由来の免疫グロブリン特異的タンパク質Aまたはタンパク質Gに基づくアフィニティークロマトグラフィーを使用して精製されている。 [ 15 ]
モノリシックカラムに固定化されたモノクローナル抗体を用いた免疫親和性クロマトグラフィーは、EVの表面に存在するテトラスパニンやインテグリンを標的とすることで、ヒト血漿から細胞外小胞(例えば、エクソソームやエクソマー)を捕捉するために成功裏に使用されてきた。[ 16 ] [ 17 ]
免疫親和性クロマトグラフィーは、患者ケアにおける迅速な診断手段を提供する免疫クロマトグラフィー検査(ICT)ストリップの基礎でもあります。ICTを使用すると、検査技師は検査室を必要とせずに患者のベッドサイドで判定を行うことができます。[ 18 ] ICT検出は、感染症を引き起こす微生物に対して非常に特異的です。[ 19 ]
免疫親和性クロマトグラフィーは、抗体機能化固定相を用いて、リンパ球や特定のタンパク質などの血液由来成分を選択的に分離するために応用されてきた。[ 20 ]血液痕の付着からの時間(TSD)を推定するためのルーチン法ではないが、TSD研究で使用される標的分子分析(プロテオミクス、メタボロミクス、核酸プロファイリングなど)では、低存在量のバイオマーカーの感度を向上させるために、免疫親和性に基づく濃縮ステップが組み込まれている可能性がある。[ 21 ] [ 22 ]抗体ベースの検出法は、法医学血清学でも血液を識別し、基質上での時間の経過に伴う血液の持続性を評価するために使用されており、法医学体液分析における免疫学的特異性のより広範な役割を示している。[ 23 ]
固定化金属イオンアフィニティークロマトグラフィー(IMAC)は、アミノ酸、特にヒスチジンと金属との特異的な配位共有結合に基づいています。この技術は、金属イオンに対する親和性を持つタンパク質を、固定化された金属イオンを含むカラムに保持させることで機能します。例えば、ヒスチジン含有タンパク質やペプチドの精製にはコバルト、ニッケル、銅、リン酸化タンパク質やペプチドの精製には鉄、亜鉛、ガリウムなどが用いられます。多くの天然タンパク質は金属イオンに対する親和性を持たず、そのため、組換えDNA技術を用いて、関連する遺伝子にそのようなタンパク質タグを導入することができます。目的のタンパク質を溶出させる方法としては、pHの変更や、イミダゾールなどの競合分子の添加などが挙げられます。[ 24 ] [ 25 ]

アフィニティークロマトグラフィーの最も一般的な用途は、組換えタンパク質の精製です。既知のアフィニティーを持つタンパク質は、精製を容易にするためにタンパク質タグが付けられます。タンパク質は、アフィニティー結合を選択できるように遺伝子改変されている場合があり、これは融合タンパク質として知られています。タンパク質タグには、ヘキサヒスチジン(His)、グルタチオン-S-トランスフェラーゼ(GST)、マルトース結合タンパク質(MBP)、およびコリシンE7変異体CL7タグなどがあります。ヒスチジンタグは、固定相に組み込まれたキレート剤と配位共有結合を形成することによって固定化されたニッケル、コバルト、亜鉛、銅、鉄イオンに対する親和性を持っています。溶出には、イミダゾールなどの金属イオン配位子として作用できる化合物の過剰量が使用されます。GSTはグルタチオンに対する親和性を持ち、市販のグルタチオンアガロースとして固定化されています。溶出中、過剰量のグルタチオンを使用してタグ付きタンパク質を置換します。 CL7は免疫タンパク質7(Im7)に対する親和性と特異性を持ち、Im7アガロース樹脂として市販されている。溶出には、活性部位特異的プロテアーゼをIm7樹脂に適用して、タグのないタンパク質を遊離させる。[ 26 ]
レクチンアフィニティークロマトグラフィーは、レクチンを用いてサンプル中の成分を分離するアフィニティークロマトグラフィーの一種です。コンカナバリンAなどのレクチンは、特定のα-D-マンノースおよびα-D-グルコース糖分子に結合できるタンパク質です。レクチンアフィニティークロマトグラフィーで使用される一般的な糖分子には、Con A-セファロースやWGA-アガロースなどがあります。[ 27 ]レクチンの別の例としては、DN-アセチルグルコサミンに結合するコムギ胚芽凝集素があります。[ 28 ]最も一般的な用途は、糖タンパク質を非糖化タンパク質から分離すること、またはある糖鎖型を別の糖鎖型から分離することです。[ 29 ]レクチンアフィニティークロマトグラフィーを実行する方法は様々ですが、目的は目的のタンパク質の糖リガンドを抽出することです。[ 27 ]
アフィニティークロマトグラフィーのもう1つの用途は、特定のタンパク質に特有のゲルマトリックスを使用して特定のタンパク質を精製することです。たとえば、大腸菌β-ガラクトシダーゼの精製は、アフィニティーマトリックスとしてp-アミノベニル-1-チオ-β-D-ガラクトピラノシルアガロースを使用したアフィニティークロマトグラフィーによって行われます。p-アミノベニル-1-チオ-β-D-ガラクトピラノシルアガロースは、大腸菌β-ガラクトシダーゼの良好な基質アナログとして機能するガラクトピラノシル基を含むため、アフィニティーマトリックスとして使用されます。この特性により、酵素はアフィニティーマトリックスの固定相に結合し、β-ガラクトシダーゼはカラムに塩の濃度を上げて添加することによって溶出されます。[ 30 ]
大腸菌由来のアルカリホスファターゼは、 DEAE-セルロースマトリックスを用いて精製することができる。A.ホスファターゼはわずかに負電荷を帯びているため、マトリックス中の正電荷を帯びたアミン基に弱く結合する。その後、高塩濃度の緩衝液を加えることで酵素を溶出させることができる。[ 31 ]
ボロネートアフィニティークロマトグラフィーは、ホウ酸またはボロネートを用いて糖タンパク質を溶出および定量するものである。臨床応用では、このタイプのクロマトグラフィーを、糖化ヘモグロビンの分析による糖尿病患者の長期評価に利用している。[ 28 ]
アルブミンとマクログロブリンの混入物のアフィニティー精製は、質量分析を行う際に、過剰なアルブミンとα2-マクログロブリンの混入物を除去するのに役立ちます。血清アルブミンのアフィニティー精製では、血清タンパク質を収集または吸着するために使用される固定相として、シバクロンブルーセファロースを使用できます。その後、チオシアン酸塩(SCN− )を含む緩衝液を使用して、血清タンパク質を吸着剤から溶出できます。 [ 32 ]
弱親和性クロマトグラフィー[ 33 ](WAC)は、創薬開発における親和性スクリーニングのための親和性クロマトグラフィー技術である[ 34 ] [ 35 ] 。WACは、固定化された標的に対する異なる弱い親和性に基づいて化学化合物を分離する親和性ベースの液体クロマトグラフィー技術である。化合物が標的に対して高い親和性を持つほど、分離ユニット内に長く留まり、これは保持時間の長さとして表される。親和性の測定と親和性の順位は、分析された化合物の得られた保持時間を処理することによって達成できる。親和性クロマトグラフィーは、ケモプロテオミクスに基づく創薬標的の同定に使用されるより広範な技術群の一部である。
WAC技術は、プロテアーゼ、キナーゼ、シャペロン、タンパク質間相互作用(PPI)標的など、さまざまなタンパク質標的に対して実証されています。WACは、フラグメントベースのスクリーニングの確立された方法よりも効果的であることが示されています。[ 35 ]
アフィニティークロマトグラフィーは、ペドロ・クアトレカサスとメイル・ウィルチェクによって考案され、最初に開発されました。[ 36 ] [ 37 ]
アフィニティークロマトグラフィーは、CuatrecasasとWilchekによって考案された新しい技術である。