スプリット遺伝子理論は、真核生物の イントロン の起源を説明する。[ 1 ] [ 2 ] [ 3 ] この理論は、ランダムな原始DNA 配列では、ストップコドンが頻繁に存在するため、短い(600bp未満)オープンリーディングフレーム (ORF)しか形成されないことを示唆している。短いORFには、真核生物の遺伝子に見られる短いタンパク質コードエクソンが含まれていた可能性があり、多数のストップコドン を含む介在配列は 、長い非コードイントロンを形成した可能性がある。このイントロン優先の枠組みでは、エクソンをより長いタンパク質コード配列に結合する必要性からスプライソソーム機構が進化し、イントロンの喪失によって、スプリット真核生物遺伝子からイントロンのない細菌遺伝子が派生した。この理論は、ペリアナナン・セナパシー によって提唱された。
この理論は、エクソン、イントロン、スプライス接合部、分岐点など、遺伝子の分裂構造がランダムな遺伝子配列からどのように生じたのかを説明する。また、前生物化学からスプライソソーム機構、核境界、真核細胞がどのように生じたのかについても、可能性のある解決策を提供する。
この理論は、真核生物のDNAにおけるスプライス部位を検出するための方法論を提供するシャピロ・セナパシーアルゴリズム につながり、数百もの疾患を引き起こすスプライス部位の変異を発見するために使用されてきた。
分裂遺伝子説は、細菌の細胞内共生による真核細胞の形成に関する科学的コンセンサスと矛盾する。1994年、セナパシーはこの説のこの側面について著書『生物の独立誕生』を出版した。 この本では、複数の真核生物ゲノムが、分裂遺伝子の原始的なプールから独立して発生したと提唱している。オランダの生物学者ゲルト・コルトホフは、独立起源説では説明できない様々な問題を提起することで、この説を批判した。彼は、様々な真核生物は養育を必要とすることを指摘し、これを「ブーツ問題」と呼んだ。つまり、最初の真核生物でさえ親の世話を必要としたということである。コルトホフは、真核生物の大部分が寄生生物であることを指摘している。セナパシーの説では、それらの存在を説明するには偶然の一致が必要となる。[ 4 ] [ 5 ] セナパシーの理論は、共通祖先に関する強力な証拠 (相同性 、普遍的な遺伝暗号、発生学 、化石記録 )を説明できない。[ 6 ]
背景 真核生物遺伝子の転写、スプライシング、翻訳。 真核生物遺伝子は、プロモーター、エクソン、イントロン、およびポリA付加部位から構成されます。RNAポリメラーゼ酵素によって、一次RNA転写産物(またはpre-mRNA)に転写されます。このRNAは、スプライソソームによる編集を受け、イントロンが正確に除去され、エクソンが結合されてmRNA分子が生成されます。このmRNAには、リボソームによって遺伝子によってコードされたタンパク質に翻訳される、中断する終止コドンのない完全なコード配列が含まれています。図ではイントロンの長さは短く描かれていますが、実際には非常に長く、平均でエクソンの20倍、場合によっては50万塩基にも達します。エクソンは通常短く、平均で約120塩基、最大で約600塩基です。[ 1 ] また、ヒトリボヌクレオチド還元酵素サブユニットM2 Bのタンパク質構造の例(PDB ID: 2VUX )も示されている。細菌を除くすべての生物の遺伝子は、長い配列(イントロン)によって中断された短いタンパク質コード領域( エクソン )から構成されています。[ 1 ] [ 7 ] 遺伝子が発現すると、そのDNA配列はRNAポリメラーゼ という酵素によって「一次RNA」配列にコピーされます。次に、「スプライソソーム」機構がスプライシングの過程によって遺伝子のRNAコピーからイントロンを物理的に除去し、連続して連結した一連のエクソンだけが残ります。これがメッセンジャーRNA (mRNA)になります。このmRNAは リボソーム によって読み取られ、コードされたタンパク質が生成されます。したがって、イントロンは遺伝子から物理的に除去されるわけではありませんが、遺伝子の配列はイントロンが存在しないかのように読み取られます。
エクソンは通常短く、平均長さは約 120 塩基です (ヒト遺伝子の場合)。イントロンの長さは 10 から 500,000 まで大きく変動しますが、エクソンの長さはほとんどの真核生物で約 600 塩基の上限があります。エクソンはタンパク質配列をコードしているため、細胞にとって重要ですが、配列の約 2% しか占めていません。対照的に、イントロンは配列の 98% を占めますが、まれなケースのエンハンサー配列や発生調節因子を除いて、重要な機能はほとんどないようです。[ 8 ] [ 9 ]
1977年にフィリップ・シャープ [ 10 ] [ 11 ] とリチャード・ロバーツ [ 12 ]が真核生物の遺伝子内にイントロン [ 13 ] を発見するまで、すべての遺伝子のコード配列は常に1つの長いORFで区切られた1つの領域にあると考えられていました。イントロンの発見は大きな驚きであり、イントロンがどのように、なぜ、いつ真核生物の遺伝子に入り込んだのかという疑問がすぐに生じました。
やがて、典型的な真核生物の遺伝子は多くの箇所でイントロンによって分断され、コード配列が多数の短いエクソンに分割されていることが明らかになった。さらに驚くべきことに、イントロンは数十万塩基にも及ぶ長いものであった。これらの発見は、なぜ一つの遺伝子内に多くのイントロンが存在するのか(例えば、ヒトのTTN遺伝子には約312個のイントロンが存在する)、なぜイントロンは長いのか、そしてなぜエクソンは短いのか、といった疑問を生じさせた。
また、スプライソソーム機構は、約300個のタンパク質と複数のSnRNA 分子からなる巨大で複雑な構造であることが判明した。疑問はスプライソソームの起源にまで及んだ。イントロンの発見後まもなく、エクソンとイントロンの接合部には、スプライソソーム機構を正確な塩基位置に誘導する特異的な配列が存在することが明らかになった。これらのスプライス接合シグナルがどのように、そしてなぜ生じたのかは、もう一つの重要な疑問であった。
歴史 イントロンの発見と真核生物遺伝子の分裂構造は、真核生物学の新たな時代を切り開いた。真核生物遺伝子がなぜ断片化された遺伝子構造を持つのかという疑問は、ほぼ即座に憶測と議論を巻き起こした。
フォード・ドゥーリトルは1978年に論文を発表し、ほとんどの分子生物学者が真核生物のゲノムは、大腸菌 のゲノムによく似た「より単純で原始的な」原核生物のゲノムから生じたと想定していると述べた。[ 14 ] しかし、この種の進化には、細菌遺伝子のコード配列にイントロンが導入される必要がある。この要件に関して、ドゥーリトルは「情報的に無関係な配列が、有害な影響なしに既存の構造遺伝子に導入される方法を想像するのは非常に難しい」と述べた。彼は「少なくとも『断片化された遺伝子』として現れる構造の側面においては、真核生物のゲノムは実際には原始的な元の形態であると主張したい」と述べた。
ジェームズ・ダーネルは1978年に同様の見解を表明した。彼は、「真核生物と 原核生物 におけるメッセンジャーRNA形成の生化学的差異は非常に大きく、原核生物から真核生物への連続的な細胞進化は考えにくいことを示唆している。最近発見された真核生物DNA中のメッセンジャーRNAをコードする非連続配列は、DNAにおける新しい情報分布ではなく、むしろ古代の情報分布を反映している可能性があり、真核生物は原核生物とは独立して進化してきたと考えられる。」[ 15 ]
しかし、進化においてRNAがDNAに先行したという考えや、古細菌 、細菌、真核生物の3つの進化系統の概念と調和させようとする明らかな試みの中で、ドゥーリトルとダーネルは1985年の共同論文で当初の推測から逸脱した。[ 16 ] 彼らは、3つの生物群すべての祖先である「プロジェノート 」は断片的な遺伝子構造を持ち、そこから3つの系統すべてが進化したと示唆した。彼らは、前細胞段階にはイントロンを持つ原始的なRNA遺伝子があり、それが逆転写されてDNAになり、プロジェノートを形成したと推測した。細菌と古細菌はイントロンを失うことによってプロジェノートから進化し、「ウルカリオテ」はイントロンを保持することによってそこから進化した。その後、真核生物は核を進化させ、細菌からミトコンドリアを 取り込むことによってウルカリオテから進化した。その後、多細胞生物は真核生物から進化した。
これらの著者らは、原核生物と真核生物の相違は非常に大きく、原核生物から真核生物への進化はあり得ず、起源も異なると予測した。しかし、前細胞RNA遺伝子にはイントロンがあったに違いないという推測を除けば、イントロンの起源という重要な問題には触れなかった。エクソンが短くイントロンが長い理由、スプライス接合部がどのように発生したのか、スプライス接合部の構造と配列が何を意味するのか、そして真核生物のゲノムが大きい理由などについて、何の説明もなされなかった。
ドゥーリトルとダーネルが真核生物の遺伝子のイントロンは古代から存在していた可能性があると示唆したのとほぼ同時期に、コリン・ブレイク[ 17 ] とウォルター・ギルバート [ 18 ] [ 19 ] は、イントロンの起源に関する見解をそれぞれ独立して発表した。彼らの見解では、イントロンはスペーサー配列として起源し、異なる機能ドメインをコードするエクソンの容易な組換えとシャッフリングを可能にし、それによって新しい遺伝子が進化した。つまり、新しい遺伝子は、祖先生物のゲノムに存在する遺伝子から機能ドメイン、折り畳み領域、または構造要素をコードするエクソンモジュールから組み立てられ、それによって新しい機能を持つ遺伝子が進化した。彼らはエクソンやイントロンがどのように起源したかを具体的に説明しなかった。さらに、長年の時を経て、数千のタンパク質と遺伝子の広範な分析によって、想定されるエクソンシャッフリング 現象を示す遺伝子は極めてまれであることが示された。[ 20 ] [ 21 ] さらに、分子生物学者は、純粋に進化論的な観点から、方法論的および概念的な理由からエクソンシャッフリングの提案に疑問を呈し、長期的にはこの理論は生き残らなかった。
仮説 イントロンが発見された頃、セナパシーは遺伝子そのものがどのようにして生まれたのかという疑問を抱いていた。彼は、いかなる遺伝子も発生するためには、遺伝子配列(RNAまたはDNA)が生命誕生以前の環境に存在していなければならないと推測した。彼が提起した基本的な疑問は、最初の細胞が誕生した時点で、原始的なDNA配列からタンパク質をコードする配列がどのようにして生じたのか、ということだった。
この問いに答えるために、彼は2つの基本的な前提を置いた。
自己複製細胞が出現する前に、DNA分子はテンプレートの助けなしに4つのヌクレオチドをランダムに添加することによって原始スープで合成され、 タンパク質をコードするヌクレオチド配列は、原始スープの中に存在していたこれらのランダムなDNA配列の中から選択されたものであり、より短いコード配列から構築されたものではない。 彼はまた、コドンは最初の遺伝子の起源以前に確立されていたに違いないと推測した。もし原始的なDNAがランダムなヌクレオチド配列を含んでいたとすれば、彼はこう問いかけた。コーディング配列の長さには上限があったのか、そしてもしあったとすれば、この上限は遺伝子の起源における遺伝子の構造的特徴の形成に決定的な役割を果たしたのか、と。
彼の論理はこうだった。真核生物や細菌を含む生物のタンパク質の平均長は約400アミノ酸である。しかし、真核生物と細菌の両方において、10,000~30,000アミノ酸よりも長いタンパク質も存在する。[ 22 ] したがって、細菌の遺伝子では、数千塩基のコード配列が単一の領域に存在する。対照的に、真核生物のコード配列は、タンパク質の長さに関係なく、約120塩基のエクソンの短いセグメントにのみ存在する。ランダムDNA配列のコード配列ORFの長さが細菌のそれと同じくらい長ければ、ランダムDNAでは長い連続したコード遺伝子が可能になる。ランダムDNA配列のORFの長さの分布は研究されたことがなかったので、これは知られていなかった。
コンピュータ上でランダムなDNA配列を生成できることから、セナパシーはこれらの疑問をコンピュータ上で 検証し、実験を行うことができると考えた。さらに、彼がこの問題の研究を始めた1980年代初頭には、国立生物医学研究財団(NBRF)のデータベースに十分なDNAおよびタンパク質配列情報が存在していた。
仮説の検証
イントロン/分裂遺伝子の起源ランダムな DNA 配列における終止コドンのクラスター化は、まれな長い ORF をもたらします。 ランダムな配列における ORF の長さの負の指数頻度分布は、線形配列では、ORF が短いほど頻度が高く、ORF が長いほど頻度が低くなることを示しています。したがって、配列のほとんどの場所で終止コドンがクラスター化する傾向があり、そのため、最大長が約 600 塩基の範囲内であっても、長い ORF はまれになります。セナパシーは、利用可能な長い ORF からコーディング配列セグメントをエクソンとして選択し、終止コドンのクラスターを含む介在配列をイントロンとして指定して、一次 RNA 転写産物から削除することで、分割された遺伝子構造が得られると考えました。 セナパシーはまず、コンピューターで生成されたランダムなDNA配列におけるORF長の分布を分析した。驚くべきことに、この研究により、ORF長の上限は約200コドン(600塩基)であることが明らかになった。最も短いORF(長さ0塩基)が最も頻繁に出現した。ORF長が増加するにつれて、その頻度は対数的に減少し、約600塩基でゼロに近づいた。ランダム配列におけるORF長の確率をプロットすると、ORF長が増加する確率は指数関数的に減少し、約600塩基で最大値に達することが明らかになった。このORF長の「負の指数関数的」分布から、ほとんどのORFは最大値よりもはるかに短いことがわかった。
ランダムな DNA 配列と真核生物の DNA 配列における ORF 長の負の指数分布。Senapathy は、ランダムな DNA 配列ではストップ コドンが高頻度で出現することを発見しました。64 個のコドンのうち 3 個がストップ コドンであるため、平均長が約 60 塩基の短いオープン リーディング フレーム (ORF) になります。また、ORF の長さが負の指数分布に従うことも発見しました。このグラフは、ORF 長がゼロ (連続するストップ コドンがタンデムに出現) の頻度がすべての ORF 長の中で最も頻繁に、次にコドンが 1 つ (3 塩基) の ORF 長の頻度が最も頻繁に、以下同様であることを示しています。より長い ORF の頻度は指数関数的に減少し、ORF 長が約 600 塩基のあたりで頻度がゼロになります。これは、600 塩基より長い ORF は出現しないことを意味します。[ 1 ] 驚くべきことに、真核生物のDNA配列から得られたプロットは、ランダムなDNA配列から得られたプロットとほぼ完全に同じだった。この発見は驚くべきものであった。なぜなら、平均的なタンパク質長400アミノ酸(約1,200塩基のコード配列)と、数千アミノ酸のより長いタンパク質(10,000塩基以上のコード配列が必要)のコード配列は、ランダム配列では連続して出現しないからである。もしこれが真実であれば、連続したコード配列を持つ典型的な遺伝子は、ランダム配列から生じることはない。したがって、ランダム配列から遺伝子が生じる唯一の方法は、コード配列をより短いセグメントに分割し、連続する終止コドンを削除してORFの長さを長くするのではなく、ランダム配列で利用可能な短いORFからこれらのセグメントを選択することである。利用可能なORFからコード配列の短いセグメントを選択して長いORFを作るこのプロセスは、分割構造につながる。
この仮説が正しければ、真核生物のDNA配列はそれを反映するはずである。セナパシーが真核生物のDNA配列におけるORF長の分布をプロットしたところ、そのプロットはランダムDNA配列のものと驚くほどよく似ていた。このプロットもまた、真核生物の遺伝子と同様に、約600塩基で最大値が減少する負の指数分布であり、[ 1 ] [ 23 ] [ 3 ] これはランダムDNAと真核生物DNA配列の両方で観察されたORFの最大長と完全に一致していた。
分裂遺伝子は、ランダムなDNA配列から、短いコード領域(エクソン)の中から最適なものを選んでスプライシングすることによって生じた。介在するイントロン配列は、ランダムな配列の残滓であり、スプライソソームによって除去される運命にあった。これらの発見は、分裂遺伝子が、今日の真核生物に見られるようなエクソンとイントロンを持つランダムなDNA配列から生じた可能性があることを示唆している。コドンを解読したノーベル賞受賞者のマーシャル・ニーレンバーグは 、これらの発見は、イントロンの起源と遺伝子の分裂構造に関する分裂遺伝子理論が妥当であることを強く示していると述べた。[ 1 ] [ 24 ]
ブレイクは1979年にイントロンの起源に関するギルバート=ブレイク仮説を提唱し、セナパシーのスプリット遺伝子理論がスプリット遺伝子構造 の起源を包括的に説明していると述べた。さらに、スプライシング機構の起源を含むいくつかの重要な疑問も説明していると述べた。[ 17 ]
セナパシーによる最近の研究は、RNAに適用すると、RNAがコード領域と非コード領域に分離した形態の起源を包括的に説明する。また、原始進化の初期にスプライシング機構が発達した理由も示唆している。彼は、ランダムなヌクレオチド配列における読み枠長の分布が、真核生物のエキソンサイズの分布と完全に一致することを発見した。これらの領域は、ポリペプチド鎖の構築を終了させるメッセージであるストップシグナルを含む領域によって区切られており、非コード領域、すなわちイントロンであった。したがって、ランダムな配列の存在は、原始祖先において真核生物の遺伝子構造に見られる分離したRNA形態を作り出すのに十分であった。さらに、ランダムな分布は600ヌクレオチドでカットオフを示しており、これは初期のポリペプチドの最大サイズが200残基であったことを示唆している。これもまた、真核生物のエキソンの最大サイズで観察されるものと同じである。このように、より大きく複雑な遺伝子を作り出すという進化的な圧力に応えて、RNA断片はイントロンを除去するスプライシング機構によって結合された。したがって、真核生物におけるイントロンとRNAスプライシングの両方の初期の存在は、単純な統計的根拠から見て非常に可能性が高いと考えられる。これらの結果は、特定のタンパク質をコードする遺伝子のエクソン数とポリペプチド鎖の長さとの間に見られる線形関係とも一致する。
ヒト遺伝子の実際のDNA配列によるスプリット遺伝子理論の裏付け。 スプリット遺伝子理論は、3つの終止コドンが3つのリーディングフレーム(RF)のそれぞれに高頻度で存在し、短いオープンリーディングフレーム(ORF)につながると予測しています。また、次のことも予測しています。a) エクソンは3つのRFすべてにおいてこれらの短いORF内に存在し、b) イントロンは長く、c) エクソンの長さはORFの長さに制限される。これらの予測は、ほとんどの真核生物遺伝子のDNA配列において正確に当てはまります。ヒトゲノムの2つの例となる遺伝子(FLJ35894 とADCY1 )を示します。各遺伝子のエクソンはすべて短く、イントロンのほとんどは長いです。各遺伝子において、エクソン(短い黄色のボックス)は、DNA配列中に存在する短いORF内に収まっています。さらに、終止コドンはエクソンの末端に存在し、実際にはスプライス接合配列の一部となっています。
スプライス接合部の起源 スプライス接合配列の起源は終止コドンからである。[ 1 ] [ 7 ] [ 3 ] (A) ランダムな原始DNA配列から分割遺伝子のエクソンを選択した分子機構は、終止コドン(目盛り)を検索して、終止コドンのない領域(図示されていない一次RNAコピー内)であるORFを特定できるはずである。その際、最初に見つかった終止コドンがイントロンの開始としてマークされる。このプロセスにより、イントロンの開始に終止コドンが存在することになる。場合によっては、オープンリーディングフレーム全体がエクソンとして選択されるため、前のイントロンの末尾に終止コドンが存在することになる。(B) イントロンの開始と終了は、「スプライス接合配列」の一部であり、スプライソソーム機構に正確なスプライシングポイントを知らせる。終止コドンは赤い背景で示されている。スプリット遺伝子説では、エクソンはORFによって定義される。ORFを認識するメカニズムが起源となる必要がある。ORFはストップコドンで区切られた連続したコード配列によって定義されるため、これらのストップコドン末端はエクソン・イントロン遺伝子認識システムによって認識されなければならなかった。このシステムは、ORFの末端にストップコドンが存在することでエクソンを定義したと考えられる。ストップコドンはイントロンの末端に含まれ、スプライシング過程によって除去されるはずである。したがって、イントロンの末端にはストップコドンが含まれているはずであり、これはスプライス接合配列の一部となる。
この仮説が正しければ、今日の生物の分裂遺伝子には、イントロンの末端に正確に終止コドンが含まれているはずである。セナパシーが真核生物の遺伝子のスプライス接合部でこの仮説を検証したところ、スプライス接合部の大部分には、エクソンの外側の各イントロンの末端に終止コドンが含まれていることがわかった。実際、これらの終止コドンは「標準的な」GT:AGスプライシング配列を形成し、3つの終止コドンは強力なコンセンサスシグナルの一部として出現することがわかった。このように、イントロンの起源と分裂遺伝子構造に関する基本的な分裂遺伝子理論は、スプライス接合部が終止コドンに由来するという理解につながった。[ 7 ]
セナパシーがこの問題について考え始めた当時、エクソン・イントロン接合部の配列データは約1,000個しか入手できませんでした。彼は、GenBankデータベースから1,030個のスプライス接合部配列(ドナーとアクセプター)のデータを取得し、ドナーシグナル配列[CAG:GTGAGT]の7塩基位置とアクセプターシグナル[CAG:G]の可能な2塩基位置それぞれで出現するコドンを数えました。彼は、終止コドンがドナーシグナルの5番目の塩基位置とアクセプターシグナルの1番目の塩基位置でのみ高頻度で出現することを発見しました。これらの位置は、セナパシーが予測したとおり、イントロンの開始位置(実際には開始位置の1塩基後)とイントロンの終了位置です。これらの位置でのコドン数のみを示します。これらの位置のコドンが終止コドンでなかった場合でも、70%は終止コドンTAとTGの最初の2つの塩基で始まっていた[TAT = 75; TAC = 59; TGT = 70]。
3つの終止コドン(TGA、TAA、TAG)はすべて、イントロンの開始位置の1塩基(G)の後に見つかりました。これらの終止コドンは、標準的なドナースプライス接合部ではAG:GT(A/G)GGTと示され、TAAとTGAが終止コドンであり、この位置にはTAGも存在します。コドンCAGの他に、終止コドンであるTAGのみがイントロンの末端で見つかりました。標準的なアクセプタースプライス接合部は(C/T)AG:GTと示され、TAGが終止コドンです。これらのコンセンサス配列は、すべての真核生物遺伝子において、エクソンに隣接するイントロンの末端に終止コドンが存在することを明確に示しており、スプリット遺伝子説を強く裏付けています。ニーレンバーグは、これらの観察結果が、スプライス接合部配列の起源が終止コドンにあるというスプリット遺伝子説を完全に支持していると改めて述べました。[ 7 ] [ 25 ]
フィリップ・シャープ とリチャード・ロバーツ によるイントロンの発見後まもなく、スプライス接合部内の突然変異が疾患につながる可能性があることが知られるようになった。セナパシーは、終止コドン塩基(標準塩基)の突然変異が非標準塩基の突然変異よりも多くの疾患を引き起こすことを示した。[ 1 ]
分岐点(ラリアット)シーケンス真核生物のRNAスプライシング 過程の中間段階は、ラリアット構造の形成である。これは、 3'スプライス部位の上流10~50ヌクレオチド間のイントロン内のアデノシン 残基に固定される。短い保存配列(分岐点配列)が、ラリアット形成部位の認識シグナルとして機能する。スプライシング過程において、イントロン末端付近のこの保存配列がイントロン開始部とラリアット構造を形成する。[ 26 ] スプライシング過程の最終段階は、2つのエクソンが結合し、イントロンがラリアットRNAとして放出されるときに起こる。[ 27 ]
複数の研究者が、酵母、ヒト、ショウジョウバエ、ラット、植物など、さまざまな生物 で分岐点配列を発見した[ 26 ] 。セナパシーは、これらの配列すべてにおいて、分岐点アデノシン で終わるコドンが常に終止コドンであることを発見した。興味深いのは、3つの終止コドンのうち2つ(TAAとTGA)が、この位置にほぼ常に現れることである。
これらの発見により、セナパシーは分岐点シグナルが終止コドンに由来するという仮説を提唱した。ラリアットシグナル内に2つの異なる終止コドン(TAAとTGA)が存在し、分岐点が終止コドンの3番目の塩基であるという発見は、この仮説を裏付けている。ラリアットの分岐点が終止コドンの最後のアデニンにあることから、一次RNA配列から終止コドンを除去するために作られたスプライソソーム機構が、スプライシング機能を助けるためにラリアット配列として補助的な終止コドン配列シグナルを作成した可能性がある。[ 7 ]
スプライシング複合体に見られる小さな核U2 RNAは、ラリアット配列と相互作用することでスプライシングを助けると考えられている。[ 28 ] ラリアット配列とアクセプターシグナルの両方の相補配列は、U2 RNAのわずか15ヌクレオチドのセグメントに存在する。さらに、U1 RNAは、相補的な塩基対形成によって正確なドナースプライス接合部を識別するためのスプライシングのガイドとして機能すると提案されている。したがって、U1 RNAの保存領域には、終止コドンに相補的な配列が含まれる。これらの観察により、セナパシーは、終止コドンがスプライス接合シグナルとラリアットシグナルだけでなく、いくつかの小さな核RNAの起源にも作用したと予測することができた。
遺伝子調節配列 セナパシーは、遺伝子発現調節配列(プロモーターとポリA付加部位配列)も終止コドンから生じた可能性があると提唱した。保存配列AATAAAは、タンパク質コードメッセージの末端から少し下流にあるほぼすべての遺伝子に存在し、遺伝子のmRNAコピーへのポリ(A)付加のシグナルとして機能する。[ 29 ] このポリ(A)配列シグナルには、終止コドンTAAが含まれている。このシグナルから少し下流にある、完全なポリ(A)シグナルの一部と考えられている配列にも、TAGおよびTGA終止コドンが含まれている。
真核生物のRNAポリメラーゼII依存性プロモーターは 、終止コドンTAAを含むTATAボックス(コンセンサス配列TATAAA)を持つことがある。細菌のプロモーターエレメントでは、約10塩基の位置でTATAAT(終止コドンTAAを含む)のコンセンサス配列を持つTATAボックスが、-35塩基の位置でTTGACA(終止コドンTGAを含む)のコンセンサス配列を持つTATAボックスが見られる。このように、RNAプロセシング機構全体の進化は、終止コドンの出現頻度が高すぎることに影響を受けており、終止コドンがRNAプロセシングの焦点となっていると考えられる。
終止コドンは真核生物の遺伝子におけるあらゆる遺伝要素の重要な部分である。 終止コドンは、真核生物遺伝子の重要な遺伝要素のすべてにおいて重要な部分を占めています。 真核生物遺伝子の主要な遺伝要素は、プロモーター、ドナースプライス接合シグナル、アクセプタースプライス接合シグナル、ラリアット(分岐点)シグナル、およびポリA付加部位です。これらの遺伝要素のそれぞれの中心となる構成要素は終止コドンです。セナパシーは、真核生物の遺伝子のあらゆる遺伝要素において、終止コドンが重要な部分として存在することを発見した。表と図は、コアプロモーター要素、ラリアットシグナル、ドナーおよびアクセプタースプライスシグナル、そしてポリA付加シグナルの重要な部分が、1つ以上の終止コドンから構成されていることを示している。この発見は、完全なスプリット遺伝子パラダイムの根本的な理由は、ランダムなDNA配列からスプリット遺伝子が起源であり、その際、自然界では極めて高い頻度で存在する終止コドンのランダムな分布がこれらの遺伝要素を定義するために用いられたという、スプリット遺伝子理論の主張を裏付けるものである。
短いエクソン/長いイントロンスプリット遺伝子理論に基づく研究は、エクソンとイントロンに関する他の基本的な疑問に光を当てています。真核生物のエクソンは一般 的に短く(ヒトのエクソンは平均約120塩基で、最短で10塩基)、イントロンは通常長い(平均約3,000塩基で、数十万塩基になることもある)です。例えば、RBFOX1、CNTNAP2、PTPRD、DLG2遺伝子などがそうです。セナパシーは、エクソンが短くイントロンが長い理由について答えを出しました。真核生物の遺伝子がランダムなDNA配列から発生した場合、ランダム配列のORFの長さに一致しなければならず、おそらく約100塩基(ランダム配列のORFの中央値に近い)であるはずです。生物のゲノム配列は、エクソンの平均長が120塩基、最長エクソンが600塩基(ごく少数の例外を除く)であり、これは最長ランダムORFの長さと同じである。[ 1 ] [ 7 ] [ 3 ] [ 23 ]
スプリット遺伝子がランダムなDNA配列から生じたとすれば、いくつかの理由からエクソンは短く、イントロンは長くなるはずである。ランダムなDNA配列では終止コドンが頻繁に存在するため、ORFが短くなり、エクソンの長さが制限される。さらに、機能的なタンパク質コードエクソンが長いランダム配列中に存在する確率は低い。加えて、エクソン境界を定めるドナースプライス接合部とアクセプタースプライス接合部が、短いコード配列セグメント内で組み合わさることは、ランダム配列中ではまれである。これらの理由が複合的に作用することで、イントロンはエクソンに比べて長くなる。
スプライソソーム機構と真核細胞核 セナパシーは、RNA転写産物からイントロンを除去するスプライソソーム機構の起源について論じた。もし分裂遺伝子がランダムなDNAから生じたのであれば、イントロンはスプライス接合部とともに真核生物遺伝子の不必要だが不可欠な部分になっていただろう。スプライソソーム機構はそれらを除去し、短いエクソンが連続的にコードされたmRNAとして直線的にスプライシングされ、完全なタンパク質に翻訳されるようにするために必要となる。したがって、分裂遺伝子理論は、スプライソソーム機構は不必要なイントロンを除去するために存在すると主張している。[ 1 ] [ 7 ]
ブレイクは、「セナパシーの研究をRNAに適用すると、RNAがコード領域と非コード領域に分離された形態の起源を包括的に説明できる。また、原始進化の初期にスプライシング機構が発達した理由も示唆している」と述べている。[ 17 ]
真核生物 セナパシーは、生物学における主要な疑問である真核細胞の核がなぜ生じたのかというもっともらしいメカニズム的および機能的な根拠を提案した。[ 1 ] [ 7 ] 分裂した遺伝子の転写産物とスプライシングされたmRNAが核のない細胞に存在する場合、リボソームはスプライシングされていない一次RNA転写産物とスプライシングされたmRNAの両方に結合しようとし、混乱が生じる。RNAスプライシングプロセスとmRNA翻訳を分離する境界がこの問題を回避する。核の境界は、一次RNAスプライシングとmRNA翻訳を明確に分離する。
これらの調査により、本質的にランダムな配列を持つ原始的なDNAが、エクソン、イントロン、スプライス接合部を持つ分裂遺伝子の複雑な構造を生み出した可能性が示唆された。分裂遺伝子を持つ細胞は、核と細胞質の境界を持つ複雑な構造でなければならず、スプライソソーム機構を持っていなければならない。したがって、最も初期の細胞は複雑で真核生物であった可能性がある。[ 1 ] [ 7 ] [ 3 ] [ 23 ] 驚くべきことに、2007年以降、複数の生物を対象とした広範な比較ゲノム 研究の結果は、最も初期の生物は高度に複雑で真核生物であり、複雑なタンパク質を含んでいた可能性があることを圧倒的に示している。 [ 30 ] [ 31 ] [ 32 ] [ 33 ] [ 34 ] [ 35 ] [ 36 ] これはセナパシーの理論で予測された通りである。
スプライソソームは、約200個のタンパク質と複数のSnRNP を含む非常に複雑な機構です。コリンズとペニーは、「我々は、スプライソソームは真核生物の進化を通じて複雑化してきたという仮説から始めます。しかし、スプライソソームの構成要素の分布を調べると、真核生物の祖先にスプライソソームが存在していただけでなく、今日の真核生物に見られる主要な構成要素のほとんども含まれていたことがわかります。現存する真核生物の最後の共通祖先は、今日見られる分子的な複雑さの多くを示しているようです。」と述べています。これは、最も初期の真核生物は複雑で、高度な遺伝子とタンパク質を含んでいたことを示唆しています。[ 37 ]
細菌遺伝子 多くの細菌生物に存在する、数千塩基長(最大90,000塩基)の途切れないコード配列を持つ遺伝子[ 22 ] は、実際には発生不可能であった。しかし、細菌遺伝子は、長いコード配列に到達する唯一の提案された方法である、イントロンの喪失による分割遺伝子から生じた可能性がある。これは、 突然変異によって終止コドンを特異的に除去することによって、短いランダムORFから長いORFにORFの長さを増やすよりも良い方法でもある。[ 1 ] [ 7 ] [ 3 ]
分裂遺伝子からの細菌遺伝子の起源。 短いエクソン(平均長さ120塩基、最大約600塩基)が長いイントロンによって分断された現代の真核生物の分裂遺伝子は、上記の「イントロンの起源と分裂遺伝子構造」の セクションで説明した理由により、ランダムなDNA配列中に極めて高い確率で存在します。対照的に、イントロンを持たない長い連続コード細菌遺伝子(最長10,000塩基、最長90,000塩基)は、ランダムな配列中に発生することは事実上不可能です。したがって、細菌遺伝子が発生する唯一の方法は、ランダムなDNA配列中に発生した分裂遺伝子からイントロンを削除し、連続コード遺伝子を生成することでした。3D構造で示されているタンパク質の例は、PDBデータベース(ID:1UNF)からのものです。分裂遺伝子説によれば、このイントロン消失の過程は、生命誕生以前のランダムDNAから生じた可能性がある。これらの連続したコード遺伝子は、イントロンを持たずに細菌ゲノム内で密に組織化され、より合理化される可能性がある。セナパシーによれば、分裂遺伝子を含む細胞に必要な核境界は、連続遺伝子のみを含む細胞には必要ない。したがって、細菌細胞は核を発達させなかった。分裂遺伝子説に基づくと、真核生物ゲノムと細菌ゲノムは、原始的なランダムDNA配列中の分裂遺伝子から独立して生じた可能性がある。
シャピロ・セナパシーアルゴリズム セナパシーは、ゲノム配列中のドナーおよびアクセプタースプライス部位、エクソン、および完全なスプリット遺伝子を検出するアルゴリズムを開発しました。彼は、異なる生物のドナーおよびアクセプターのコンセンサス配列における4つの塩基の頻度に基づいて位置重み行列(PWM)法を開発し、与えられた配列中のスプライス部位を識別しました。さらに、彼は、エクソンがドナー配列(5'末端)とアクセプター配列(3'末端)を含み、エクソンが存在するORFを持つという要件に基づいてエクソンを見つける最初のアルゴリズムと、完全なスプリット遺伝子を見つける別のアルゴリズムを定式化しました。これらのアルゴリズムはまとめてシャピロ・セナパシーアルゴリズム (S&S)として知られています。[ 38 ] [ 39 ]
このアルゴリズムは、疾患や薬物有害反応を引き起こすスプライシング変異の特定に役立ちます。[ 38 ] [ 39 ] 科学者たちは、このアルゴリズムを使用して、癌、遺伝性疾患、免疫不全疾患、神経疾患を引き起こす変異や遺伝子を特定しました。臨床現場や研究において、患者の既知の疾患原因遺伝子の変異を見つけたり、さまざまな疾患の原因となる新規遺伝子を発見したりするために、ますます使用されています。さらに、隠れたスプライス部位を定義し、変異が正常なスプライシングに影響を与え、さまざまな疾患につながるメカニズムを推測するためにも使用されています。基礎研究にも使用されています。
S&Sに基づく発見は、真核生物学およびヒト医学における主要な問題に影響を与えてきた。[ 40 ]
裏付けとなる証拠 スプリット遺伝子理論は、コンピュータシミュレーションによるランダム配列から予測されるスプリット遺伝子の構造的特徴が真核生物のスプリット遺伝子に存在することを示唆している。これは、既知のほとんどのスプリット遺伝子で裏付けられている。配列は、ORF長のほぼ完全な負の指数分布を示す。[ 1 ] [ 7 ] [ 23 ] [ 3 ] まれな例外を除いて、真核生物の遺伝子エクソンは予測される最大600塩基内に収まる。
この理論は、エクソンが終止コドンによって区切られ、特にエクソンの 3' 末端で区切られることを正しく予測しています。実際、予測どおり、ほとんどの既知の遺伝子では、エクソンの 3' 末端でより強く、5' 末端でより弱く正確に区切られています。[ 1 ] [ 7 ] [ 23 ] [ 3 ] これらの終止コドンは、両方のスプライス接合部の最も重要な機能部分です。したがって、この理論は、エクソンの末端にある「保存された」スプライス接合部と、イントロンがスプライシングされるときにこれらの終止コドンがイントロンとともに失われることの説明を提供します。この理論は、スプライス接合部が真核生物の DNA 配列にランダムに分布していることを正しく予測しています。[ 3 ] [ 26 ] [ 38 ] [ 39 ] この理論は、転移 RNA 遺伝子とリボソーム RNA 遺伝子に存在するスプライス接合部には終止コドンが含まれていないことを正しく予測しています。スプライシングプロセスに関与する別の配列であるラリアットシグナルにも終止コドンが含まれています。[ 1 ] [ 7 ] [ 3 ] [ 23 ] [ 26 ] [ 38 ] [ 39 ]
この理論は、イントロンが非コード領域であり、ほとんど機能を持たないことを正しく予測している。ドナーおよびアクセプタースプライスシグナル配列や分岐点配列、そしておそらくイントロン末端に存在するイントロンスプライスエンハンサーなど、イントロンの除去を助ける一部のイントロン配列を除けば、大部分のイントロンは機能を持たない。ただし、イントロンは非常に長いため、ゲノムや細胞が利用できる稀な配列がイントロン内に存在する可能性は、この理論では排除されていない。
このように、この理論の予測は、現代の真核生物ゲノムにおける主要な要素によって正確に裏付けられている。
複数の生物の現代ゲノムデータの比較分析により、分裂遺伝子の特徴は最も初期の生物にまで遡ることが判明した。これらの生物は、今日の生物に見られる分裂遺伝子と複雑なタンパク質を含んでいた可能性がある。[ 41 ] [ 42 ] [ 43 ] [ 44 ] [ 45 ] [ 46 ] [ 47 ] [ 48 ] [ 49 ]
最尤法解析を用いた研究では、最も初期の真核生物は現代の生物と同じ遺伝子を持ち、イントロン密度がさらに高かったことがわかった。[ 50 ] 基底真核生物 [ 51 ] (アメーボ鞭毛虫類、ディプロモナディダ類 、パラバサリア類 などの原始的な真核生物と考えられている)を含む多くの生物の比較ゲノム解析では、現代の生物に見られるイントロンに富むスプリット遺伝子とスプライソソームが最も初期の祖先に存在し、最も初期の生物はすべての真核細胞構成要素を備えていたことが示された。[ 52 ] [ 41 ] [ 53 ] [ 54 ] [ 55 ] [ 50 ]
主な出版物 Shapiro, Marvin B.; Senapathy, Periannan (1987). "異なるクラスの真核生物のRNAスプライス接合部:配列統計と遺伝子発現における機能的意義" . Nucleic Acids Research . 15 (17): 7155– 7174. doi : 10.1093/nar/15.17.7155 . PMC 306199 . PMID 3658675 . Senapathy, P. (1988). "真核生物遺伝子における終止コドンからのスプライス接合シグナルの進化の可能性" . Proc Natl Acad Sci USA . 85 (4): 1129–33 . Bibcode : 1988PNAS...85.1129S . doi : 10.1073/pnas.85.4.1129 . PMC 279719. PMID 3422483 . Senapathy, P; Shapiro, MB; Harris, NL (1990). [ 16 ] スプライス接合部、分岐点部位、およびエクソン:配列統計、同定、およびゲノムプロジェクトへの応用 。Methods in Enzymology. Vol. 183. pp. 252–78 . doi : 10.1016/0076-6879(90)83018-5 . ISBN 978-0-12-182084-8 PMID 2314278 . Harris, NL; Senapathy, P. (1990). "真核生物遺伝子における分岐点シグナルの分布とコンセンサス:コンピュータによる統計解析" . Nucleic Acids Res . 18 (10): 3015–9 . doi : 10.1093 / nar/18.10.3015 . PMC 330832. PMID 2349097 . Senapathy, P. (1986). "真核生物イントロンの起源:遺伝子におけるコドン分布統計に基づく仮説とその意義" . Proc Natl Acad Sci USA . 83 (7): 2133–7 . Bibcode : 1986PNAS...83.2133S . doi : 10.1073/pnas.83.7.2133 . PMC 323245. PMID 3457379 . Regulapati, R.; Bhasi, A.; Singh, CK; Senapathy, P. (2008). "ランダムな遺伝子配列からのスプライソソーム遺伝子の分裂構造の起源" . PLOS ONE . 3 (10): 10. Bibcode : 2008PLoSO...3.3456R . doi : 10.1371/journal.pone.0003456 . PMC 2565106 . PMID 18941625 . Senapathy, P. (1995). "イントロンとタンパク質コード遺伝子の起源" . Science . 268 (5215): 1366– 7. Bibcode : 1995Sci...268.1366S . doi : 10.1126/science.7761858 . PMID 7761858 .
参考文献 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 Senapathy, P. (1986 年 4 月). "真核生物のイントロン の 起源: 遺伝子のコドン分布統計に基づく仮説とその意味" . 米国科学アカデミー紀要 . 83 (7): 2133– 2137. Bibcode : 1986PNAS...83.2133S . doi : 10.1073/pnas.83.7.2133 . ISSN 0027-8424 . PMC 323245 . PMID 3457379 . ↑ Senapathy, P (1988年2月). 「真核生物遺伝子における終止コドンからのスプライス接合シグナルの進化の可能性」 . 米国科学アカデミー紀要 . 85 (4): 1129– 1133. Bibcode : 1988PNAS...85.1129S . doi : 10.1073/pnas.85.4.1129 . PMC 279719 . PMID 3422483 . 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 Senapathy, P. (1995-06-02). "イントロンとタンパク質コード遺伝子の起源" . Science . 268 (5215): 1366– 1367、著者の回答 1367–1369。 Bibcode : 1995Sci...268.1366S . doi : 10.1126/science.7761858 . ISSN 0036-8075 . PMID 7761858 . ↑ 「独立起源と生命の事実」 。wasdarwinwrong.com 。 2021年7月31日 取得 。 ↑ 「生物の独立誕生。ペリアンナン・セナパシー。書評」 。wasdarwinwrong.com 。 2021 年7月31日 取得 。 ↑ テオバルド、ダグラス L. (2012). "マクロ進化の29以上の証拠:共通祖先に関する科学的根拠" . 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 Senapathy, P. (1982 年 2 月). "真核生物遺伝子における終止コドンからのスプライス接合シグナルの進化の可能性" . 米国科学アカデミー紀要 . 85 (4): 1129– 1133. Bibcode : 1988PNAS...85.1129S . doi : 10.1073/pnas.85.4.1129 . ISSN 0027-8424 . PMC 279719 . PMID 3422483 . ↑ Gillies, SD; Morrison, SL; Oi, VT; Tonegawa, S. (1983年6月). 「組織特異的転写エンハンサーエレメントは、再構成された免疫グロブリン重鎖遺伝子の主要イントロンに位置する」 Cell . 33 ( 3): 717– 728. doi : 10.1016/0092-8674(83)90014-4 . ISSN 0092-8674 . PMID 6409417. S2CID 40313833 . ↑ Mercola, M.; Wang, XF; Olsen, J.; Calame, K. (1983-08-12). "マウス免疫グロブリン重鎖遺伝子座における転写エンハンサーエレメント". Science . 221 (4611): 663– 665. Bibcode : 1983Sci...221..663M . doi : 10.1126/science.6306772 . ISSN 0036-8075 . PMID 6306772 . ↑ Berk, AJ; Sharp, PA (1977年11月) 「S1エンドヌクレアーゼ消化ハイブリッドのゲル電気泳動による初期アデノウイルスmRNAのサイズ決定とマッピング」 Cell . 12 ( 3): 721– 732. doi : 10.1016/0092-8674(77)90272-0 . ISSN 0092-8674 . PMID 922889 . ↑ Berget, SM; Moore, C; Sharp, PA (1977年8月) 「アデノウイルス2型後期mRNA の 5'末端におけるスプライシングされたセグメント」 米国 科学アカデミー紀要 74 (8 ) : 3171–3175 . Bibcode : 1977PNAS...74.3171B . doi : 10.1073/pnas.74.8.3171 . ISSN 0027-8424 . PMC 431482. PMID 269380 . ↑ Chow, LT; Roberts, JM; Lewis, JB; Broker, TR (1977年8月)「RNA:DNAハイブリッドの電子顕微鏡観察により決定された、溶解性アデノウイルス2型の細胞質RNA転写産物のマップ」 Cell . 11 ( 4): 819– 836. doi : 10.1016/0092-8674(77)90294-X . ISSN 0092-8674 . PMID 890740. S2CID 37967144 . ↑ 「オンライン教育キット:1977年:イントロンの発見」 。 国立ヒトゲノム研究所(NHGRI) 。 2019年1月1日 取得 。 ↑ Doolittle, W. Ford (1978年4月13日). 「断片化した遺伝子:かつては一体だったのか?」 Nature . 272 ( 5654): 581–582 . Bibcode : 1978Natur.272..581D . doi : 10.1038/272581a0 . ISSN 1476-4687 . S2CID 4162765 . ↑ Darnell, JE (1978-12-22). "真核細胞の進化におけるRNA-RNAスプライシングの意義". Science . 202 (4374): 1257– 1260. doi : 10.1126/science.364651 . ISSN 0036-8075 . PMID 364651 . ↑ Doolittle, WF; Darnell, JE (1986-03-01). "進化の初期過程に関する考察" . Proceedings of the National Academy of Sciences . 83 (5): 1271– 1275. Bibcode : 1986PNAS...83.1271D . doi : 10.1073/pnas.83.5.1271 . ISSN 1091-6490 . PMC 323057 . PMID 2419905 . 1 2 3 Blake, CCF (1985-01-01). エクソンとタンパク質の進化 . International Review of Cytology. Vol. 93. pp. 149–185 . doi : 10.1016/S0074-7696(08)61374-1 . ISBN 978-0-12-364493-0 ISSN 0074-7696 . PMID 2409042 . ↑ ギルバート、ウォルター(1978年2月)。 「 なぜ 遺伝子 は 断片 化しているのか?」 。 ネイチャー 。271 ( 5645 ) : 501。Bibcode : 1978Natur.271..501G。doi : 10.1038 /271501a0。ISSN 1476-4687。PMID 622185。S2CID 4216649 。 ↑ Tonegawa, S; Maxam, AM; Tizard, R; Bernard, O; Gilbert, W (1978 年 3 月). "マウスの免疫グロブリン軽鎖可変領域の生殖細胞系遺伝子の配列" . Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America . 75 (3): 1485– 1489. Bibcode : 1978PNAS...75.1485T . doi : 10.1073/pnas.75.3.1485 . ISSN 0027-8424 . PMC 411497 . PMID 418414 . ↑ Feng, DF; Doolittle, RF (1987-01-01). "Reconstructing the Evolution of Vertebrate Blood Coagulation from a Consideration of the Amino Acid Sequences of Clotting Proteins". Cold Spring Harbor Symposia on Quantitative Biology . 52 : 869– 874. doi : 10.1101/SQB.1987.052.01.095 . ISSN 1943-4456 . PMID 3483343 . ↑ Gibbons, A. (1990-12-07). "エクソンの元のファミリーの計算". Science . 250 (4986): 1342. Bibcode : 1990Sci...250.1342G . doi : 10.1126/science.1701567 . ISSN 1095-9203 . PMID 1701567 . 1 2 3 Reva, Oleg; Tümmler, Burkhard (2008). "Think big – giant genes in bacteria" (PDF) . Environmental Microbiology . 10 (3): 768– 777. Bibcode : 2008EnvMi..10..768R . doi : 10.1111/j.1462-2920.2007.01500.x . hdl : 2263/9009 . ISSN 1462-2920 . PMID 18237309 . 1 2 3 4 5 6 Regulapati, Rahul; Singh, Chandan Kumar; Bhasi, Ashwini; Senapathy, Periannan (2008-10-20). "ランダムな遺伝子配列からのスプライソソーム遺伝子の分裂構造の起源" . PLOS ONE . 3 (10) e3456. Bibcode : 2008PLoSO...3.3456R . doi : 10.1371/journal.pone.0003456 . ISSN 1932-6203 . PMC 2565106 . PMID 18941625 . ↑ ニュー・サイエンティスト誌 、リード・ビジネス・インフォメーション、1986年6月26日。 ↑ ニュー・サイエンティスト誌 、リード・ビジネス・インフォメーション、1988年3月31日。 1 2 3 4 Senapathy, Periannan; Harris, Nomi L. (1990-05-25). "真核生物遺伝子における分岐点シグナルの分布とコンセンサス:コンピュータによる統計解析" . Nucleic Acids Research . 18 (10): 3015–9 . doi : 10.1093/nar/18.10.3015 . ISSN 0305-1048 . PMC 330832 . PMID 2349097 . ↑ Maier, U.-G.; Brown, JWS; Toloczyki, C.; Feix, G. (1987年1月). 「トウモロコシのゼイン遺伝子の5'側隣接領域のコンセンサス配列への核因子の結合」 . The EMBO Journal . 6 (1): 17– 22. doi : 10.1002/j.1460-2075.1987.tb04712.x . ISSN 0261-4189 . PMC 553350 . PMID 15981330 . ↑ Keller, EB; Noon, WA (1985-07-11). "イントロンスプライシング:ショウジョウバエpre-mRNAのイントロンにおける保存された内部シグナル" . Nucleic Acids Research . 13 (13): 4971– 4981. doi : 10.1093/nar/13.13.4971 . ISSN 0305-1048 . PMC 321838 . PMID 2410858 . ↑ BIRNSTIEL, M; BUSSLINGER, M; STRUB, K (1985年6月). "転写終結と3'末端処理:終点が見えてきた!". Cell . 41 (2): 349– 359. doi : 10.1016/s0092-8674(85)80007-6 . ISSN 0092-8674 . PMID 2580642 . S2CID 11999043 . ↑ Kurland, CG; Canbäck, B.; Berg, OG (2007年12月)「現代のプロテオームの起源」 Biochimie . 89 (12): 1454–1463 . doi : 10.1016/j.biochi.2007.09.004 . ISSN 0300-9084 . PMID 17949885 . ↑ カエターノ=アノレス、グスタボ。カエターノ=アノレス、デレク(2003 年 7 月)。 「進化的に構造化されたタンパク質構造の世界」 。 ゲノム研究 。 13 (7): 1563 ~ 1571 年。 土井 : 10.1101/gr.1161903 。 ISSN 1088-9051 。 PMC 403752 。 PMID 12840035 。 ↑ Glansdorff, Nicolas; Xu, Ying; Labedan, Bernard (2008-07-09). "最後の普遍的共通祖先:捉えどころのない先駆者の出現、構成、遺伝的遺産" . Biology Direct . 3 29. doi : 10.1186/1745-6150-3-29 . ISSN 1745-6150 . PMC 2478661 . PMID 18613974 . ↑ Kurland, CG; Collins, LJ; Penny, D. (2006-05-19). "ゲノミクスと真核細胞の還元不可能な性質". Science . 312 (5776): 1011– 1014. Bibcode : 2006Sci...312.1011K . doi : 10.1126/science.11 21674 . ISSN 1095-9203 . PMID 16709776 . S2CID 30768101 . ↑ Collins, Lesley; Penny, David (2005年4月) 「 現存 する真核生物 の 祖先となる複雑なスプライソソーム構造」 。Molecular Biology and Evolution。22 ( 4): 1053–1066。doi : 10.1093/molbev / msi091。ISSN 0737-4038。PMID 15659557 。 ↑ Penny, David; Collins, Lesley J.; Daly, Toni K.; Cox, Simon J. (2014 年 12 月). "真核生物と無核生物の相対的な年齢". Journal of Molecular Evolution . 79 ( 5–6 ): 228–239 . Bibcode : 2014JMolE..79..228P . doi : 10.1007/s00239-014-9643-y . ISSN 1432-1432 . PMID 25179144. S2CID 17512331 . ↑ Fuerst, John A.; Sagulenko, Evgeny (2012-05-04). "Keys to Eukaryality: Planctomycetes and Ancestral Evolution of Cellular Complexity" . Frontiers in Microbiology . 3 : 167. doi : 10.3389/fmicb.2012.00167 . ISSN 1664-302X . PMC 3343278. PMID 22586422 . ↑ Collins, Lesley; Penny, David (2005年4月) 「 現存 する真核生物 の 祖先となる複雑なスプライソソーム構造」 。Molecular Biology and Evolution。22 ( 4): 1053–1066。doi : 10.1093/molbev / msi091。ISSN 0737-4038。PMID 15659557 。 1 2 3 4 Shapiro, MB; Senapathy, P. (1987-09-11). "異なるクラスの真核生物のRNAスプライス接合部:配列統計と遺伝子発現における機能的意義" . Nucleic Acids Research . 15 (17): 7155– 7174. doi : 10.1093/nar/15.17.7155 . ISSN 0305-1048 . PMC 306199 . PMID 3658675 . 1 2 3 4 Senapathy, P.; Shapiro, MB; Harris, NL (1990). [ 16 ] スプライス接合部、分岐点部位、およびエクソン:配列統計、同定、およびゲノムプロジェクトへの応用 。Methods in Enzymology. Vol. 183. pp. 252– 278. doi : 10.1016/0076-6879(90)83018-5 . ISBN 978-0-12-182084-8 ISSN 0076-6879 PMID 2314278 ↑ 「国立衛生研究所(NIH)— 私たち全員」 . allofus.nih.gov . 2019年1月2日 取得 。 1 2 Penny, David; Collins, Lesley (2005-04-01). "現存する真核生物の祖先となる複雑なスプライソソーム構造" . Molecular Biology and Evolution . 22 (4): 1053– 1066. doi : 10.1093/molbev/msi091 . ISSN 0737-4038 . PMID 15659557 . ↑ カエターノ=アノレス、デレク。カエターノ=アノレス、グスタボ (2003-07-01)。 「進化的に構造化されたタンパク質アーキテクチャの宇宙」 。 ゲノム研究 。 13 (7): 1563 ~ 1571 年。 土井 : 10.1101/gr.1161903 。 ISSN 1549-5469 。 PMC 403752 。 PMID 12840035 。 ↑ Glansdorff, Nicolas; Xu, Ying; Labedan, Bernard (2008-07-09). "The Last Universal Common Ancestor: emergence, constitution and genetic legacy of an elusive forerunner" . Biology Direct . 3 (1): 29. doi : 10.1186/1745-6150-3-29 . ISSN 1745-6150 . PMC 2478661. PMID 18613974 . ↑ Kurland, CG; Canbäck, B.; Berg, OG (2007-12-01). "現代プロテオームの起源". Biochimie . 89 (12): 1454– 1463. doi : 10.1016/j.biochi.2007.09.004 . ISSN 0300-9084 . PMID 17949885 . ↑ Penny, D.; Collins, LJ; Kurland, CG (2006-05-19). "ゲノミクスと真核細胞の還元不可能な性質". Science . 312 (5776): 1011– 1014. Bibcode : 2006Sci...312.1011K . doi : 10.1126/science.11 21674 . ISSN 1095-9203 . PMID 16709776 . S2CID 30768101 . ↑ Poole, AM; Jeffares, DC; Penny, D. (1998年1月)「RNAワールドからの道」 Journal of Molecular Evolution . 46 (1): 1– 17. Bibcode : 1998JMolE..46....1P . doi : 10.1007/PL00006275 . ISSN 0022-2844 . PMID 9419221. S2CID 17968659 . ↑ Forterre, Patrick; Philippe, Hervé (1999). "生命の普遍的な樹の根はどこにあるのか?" BioEssays . 21 (10): 871– 879. doi : 10.1002/(SICI)1521-1878(199910)21:10 < 871::AID-BIES10 > 3.0.CO ; 2-Q . ISSN 1521-1878 . PMID 10497338 . ↑ Cox, Simon J.; Daly, Toni K.; Collins, Lesley J.; Penny, David (2014-12-01). "真核生物とアカリオテの相対的な年齢". Journal of Molecular Evolution . 79 ( 5–6 ): 228–239 . Bibcode : 2014JMolE..79..228P . doi : 10.1007/s00239-014-9643-y . ISSN 1432-1432 . PMID 25179144. S2CID 17512331 . ↑ Sagulenko, Evgeny; Fuerst, John Arlington (2012). "Keys to eukaryality: planctomycetes and ancestral evolution of cellular complexity" . Frontiers in Microbiology . 3 : 167. doi : 10.3389/fmicb.2012.00167 . ISSN 1664-302X . PMC 3343278. PMID 22586422 . 1 2 Gilbert, Walter; Roy, Scott W. (2005-02-08). "複雑な初期遺伝子" . Proceedings of the National Academy of Sciences . 102 (6): 1986– 1991. Bibcode : 2005PNAS..102.1986R . doi : 10.1073/pnas.0408355101 . ISSN 1091-6490 . PMC 548548 . PMID 15687506 . ↑ 「基底真核生物入門」 . ucmp.berkeley.edu . 2021年8月1日 取得 。 ↑ Gilbert, Walter; Roy, Scott William (2006 年 3 月) 「スプライソソーム イントロンの進化: パターン、謎、そして進歩」 Nature Reviews Genetics . 7 (3): 211– 221. doi : 10.1038/nrg1807 . ISSN 1471-0064 . PMID 16485020 . S2CID 33672491 . ↑ Rogozin, Igor B.; Sverdlov, Alexander V.; Babenko, Vladimir N.; Koonin, Eugene V. (2005 年 6 月). "真核生物遺伝子のエクソン・イントロン構造の進化の解析" . Briefings in Bioinformatics . 6 (2): 118– 134. doi : 10.1093/bib/6.2.118 . ISSN 1467-5463 . PMID 15975222 . ↑ Sullivan, James C.; Reitzel, Adam M.; Finnerty, John R. (2006). "ヒト遺伝子のイントロンの大部分は動物進化の初期に存在していた:基底後生動物 Nematostella vectensis からの証拠". Genome Informatics. International Conference on Genome Informatics . 17 (1): 219– 229. ISSN 0919-9454 . PMID 17503371 . ↑ Koonin, Eugene V.; Rogozin, Igor B.; Csuros, Miklos (2011-09-15). "100個の完全ゲノムのグローバル調査から推測されるイントロンが豊富な真核生物の祖先の詳細な歴史" . PLOS Computational Biology . 7 (9) e1002150. Bibcode : 2011PLSCB...7E2150C . doi : 10.1371/journal.pcbi.1002150 . ISSN 1553-7358 . PMC 3174169 . PMID 21935348 .