構造 ヌクレオソーム内でH1がどこにあるかを示す図 多細胞動物のH1タンパク質は、中央に球状の「翼状らせん」ドメインと、長いC 末端および短いN末端 テールを特徴としています。H1は、「ビーズ・オン・ア・ストリング」サブ構造を高次構造にパッキングすることに関与していますが、その詳細はまだ解明されていません。[ 1 ] 原生生物や細菌に見られるH1は、核タンパク質HC1およびHC2(Pfam PF07432、PF07382)としても知られており、中央ドメインとN末端テールを欠いています。[ 2 ]
H1はコアヒストンよりも保存性が低い。球状ドメインはH1の中で最も保存性の高い部分である。[ 3 ]
関数 他のヒストンとは異なり、H1はヌクレオソームの 「ビーズ」を構成しません。代わりに、構造の上に存在し、ヌクレオソームに巻き付いたDNAを所定の位置に保持します。H1は、他の4つのヒストンの半分の量で存在し、他の4つのヒストンは各ヌクレオソームビーズに2分子を提供します。ヌクレオソームに結合することに加えて、H1タンパク質はヌクレオソーム間のリンカーDNA (長さ約20~80ヌクレオチド)領域に結合し、ジグザグ状の30 nmクロマチン繊維の安定化を助けます。[ 4 ] 精製されたクロマチン 繊維の研究から、ヒストンH1について多くのことが分かっています。天然または再構成されたクロマチンからのリンカーヒストン のイオン抽出は、低張条件下で30 nm幅の繊維からビーズ状のヌクレオソームアレイへの展開を促進します。 [ 5 ] [ 6 ] [ 7 ]
H1が露出したリンカーDNAが短縮されるソレノイド 状のクロマチン繊維を促進するのか、それともリンカーの長さに影響を与えずに隣接するヌクレオソームの角度の変化を促進するだけなのかは不明である[ 8 ]。 しかし、リンカーヒストンは、強力な「601」ヌクレオソーム配置要素の合成DNAアレイを使用してin vitroで 再構成されたクロマチン繊維の凝縮を促進することが示されている[ 9 ] 。ヌクレアーゼ消化とDNAフットプリンティング実験は、ヒストンH1の球状ドメインがヌクレオソームダイアドの近くに局在し、そこで約15~30塩基対の追加DNAを保護することを示唆している[ 10 ] [ 11 ] [ 12 ] [ 13 ] 。さらに、再構成されたクロマチンに関する実験は、H1の存在下でダイアドに特徴的なステムモチーフがあることを明らかにしている。[ 14 ] 理解にはまだ不明な点があるものの、H1の球状ドメインが流入および流出DNAを架橋することでヌクレオソームを閉じ、尾部がリンカーDNAに結合してその負電荷を中和するという一般的なモデルが提唱されている。[ 8 ] [ 12 ]
H1の機能に関する多くの実験は、低塩濃度条件下で精製・処理されたクロマチンで行われてきたが、生体内でのH1の役割はあまり明確ではない。細胞研究では、H1の過剰発現が核の形態やクロマチン構造の異常を引き起こす可能性があり、H1は遺伝子に応じて転写の正と負の両方の調節因子として機能する可能性があることが示されている。[ 15 ] [ 16 ] [ 17 ] アフリカツメガエル 卵抽出液では、リンカーヒストンの枯渇により有糸分裂染色体が約2倍に伸長する一方、過剰発現により染色体が分離不可能な塊に過剰凝縮する。[ 18 ] [ 19 ] 複数の遺伝子クラスターに存在する可能性のある複数のアイソフォームの存在により、多細胞生物では生体内でのH1の完全なノックアウトは達成されていませんが、テトラヒメナ 、C.エレガンス、シロイヌナズナ、ショウジョウバエ、マウスではさまざまなリンカーヒストンアイソフォームがさまざまな程度に減少しており、核形態、クロマチン構造、DNAメチル化、および/または特定の遺伝子発現におけるさまざまな生物特異的な欠陥が生じています。[ 20 ] [ 21 ] [ 22 ]
ダイナミクス 核内のヒストンH1のほとんどはクロマチンに結合しているが、H1分子はかなり高い速度でクロマチン領域間を移動する。[ 23 ] [ 24 ]
このような動的なタンパク質がクロマチンの構造成分であることを理解するのは困難ですが、核内の定常状態の平衡は依然としてH1とクロマチンの結合を強く支持しており、その動的な性質にもかかわらず、任意の時点でH1の大部分がクロマチンに結合していることが示唆されています。[ 25 ] H1は、力のかかる状況やクロマチン構築中にDNAを凝縮して安定化させます。これは、ヌクレオソームを除去する必要がある状況で、H1の動的な結合がDNAを保護する可能性があることを示唆しています。[ 26 ]
細胞質因子はクロマチン上のヒストンH1の動的な交換に必要であると思われるが、これらはまだ具体的に特定されていない。[ 27 ] H1の動態は、ある程度O-グリコシル化とリン酸化によって媒介される可能性がある。H1のO-グリコシル化は、クロマチンの凝縮と圧縮を促進する可能性がある。間期中のリン酸化は、クロマチンに対するH1の親和性を低下させ、クロマチンの脱凝縮と活性転写を促進する可能性があることが示されている。しかし、有糸分裂中は、リン酸化は染色体に対するH1の親和性を高め、有糸分裂染色体の凝縮を促進することが示されている。[ 19 ]
動物の H1 ファミリーには、複数のリンカー ヒストン H1 バリアント が含まれます。バリアントまたはアイソフォームは 、単一の生物内の異なるまたは重複する組織および発生段階で発現する可能性があります。これらの複数のアイソフォームの理由は不明ですが、ウニからヒトまでの進化的な保存とアミノ酸配列の大きな違いの両方から、機能的に同等ではないことが示唆されています。[ 28 ] [ 29 ] [ 3 ] 1 つのアイソフォームヒストン H5 は、哺乳類の赤血球とは異なり核を持つ鳥類の 赤血球 にのみ存在します。もう 1 つのアイソフォームは、ウニ、カエル、マウス、ヒトに見られる卵母細胞/接合子 H1M アイソフォーム (B4 または H1foo としても知られています) で、胚では体細胞アイソフォーム H1A-E および H5 に似た H10 に置き換えられます。[ 3 ] [ 30 ] [ 31 ] [ 32 ] 体細胞型アイソフォームよりも負電荷が多いにもかかわらず、H1Mはアフリカツメガエル 卵抽出液中の分裂染色体により高い親和性で結合する。[ 19 ]
翻訳後修飾 他のヒストンと同様に、ヒストンH1ファミリーは広範囲にわたって翻訳後修飾 (PTM)を受けます。これには、セリンおよびトレオニンのリン酸化、リジンのアセチル化、リジンのメチル化、ユビキチン化が含まれます。[ 33 ] これらのPTMはさまざまな機能を果たしますが、他のヒストンのPTMほどよく研究されていません。
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