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| ナラタケ | |
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科学的分類 
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| ドメイン： | 真核生物 |
| 王国： | 菌類 |
| 分割： | 担子菌類 |
| クラス： | ハラタケ類 |
| 注文： | ハラタケ目 |
| 家族： | フウロソウ科 |
| 属: | ナラタケ |
| 種： | A. タベセンス
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| 二名法名 | |
| ナラタケ （スコップ）エメル（1921）
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| 同義語 | |
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アガリクス ギムノポディウス 雄牛。 (1798) | |
ナラタケ（別名：リングレスハニーマッシュルーム）は、ナラタケ科の菌類の一種で、植物病原体です。菌糸は生物発光します。 [1]
宿主と症状
ナラタケ属の種は、多種多様な木本植物に感染する。[2]アルバニアの250の常設樹木区画の調査では、ナラタケはモミ類を含む複数の樹木種に影響を及ぼし、植物がストレスを受けたときに侵入した。[3]ギリシャの研究では、水分不足により木がストレスを受けた地域でナラタケがより蔓延していると報告されている。 [4]オークの木では、ナラタケはやや被害が大きく、若い木を枯らすこともある。ナラタケはポプラやユーカリのプランテーションでも記録されており、アーモンドの木は感染に対して非常に感受性が高いことがわかった。[4] Lushajらによる研究結果[3]によると、ナラタケは他の種と比較して果樹や観賞用樹木で最も頻繁に記録されている。 [3]
Armillaria tabescens は幹に菌糸の扇状体を形成して樹皮と木材の分離を引き起こしますが、これはArmillaria 根腐れ病の一般的な兆候です。[2]また、植物の表面に粘着質の物質が斑点状に付着する樹脂病も引き起こします。これは、植物から樹液が滲み出る原因となる外部刺激に反応して発生します。[4]その他の一般的な症状は、樹皮の軟腐病、矮小化、立ち枯れ、萎凋、葉の異常な色づきです。[5]小型の木はArmillaria tabescensによって急速に枯れ、葉が萎凋するまで症状は目立ちません。しかし、大型の木では症状はより早期に現れ、葉が小さい細い樹冠から始まります。樹冠とは、幹から生えている枝や葉を指します。したがって、樹冠が薄くなるということは、枝や葉が減ることを意味します。木は最終的に黄色くなり、落葉し始め、続いて枝が急速に萎凋して枯れます。この菌は白色腐朽菌なので、木材内のリグニンを分解します。リグニンが分解されると、木は空洞になります。[6]
環境
ナラタケは温暖で乾燥した地域に生息するため、ヨーロッパでは南部に多い傾向がある。また、海抜0メートルから1,300メートル（4,300フィート）までの高度でも発見されている。[3]ヨーロッパでの研究では、南東イングランド、フランス、ハンガリー、イタリア、ポルトガル、ギリシャ、まれにドイツとスイスにも生息することがわかっている。日本では非常に珍しく、調査した59地点のうちナラタケの分離株は1つしか見つからなかった。[7]
Armillaria tabescens は28～30 °C (82～86 °F) では急速に成長し、5 °C (41 °F) ではよりゆっくりと成長します。[8]土壌が湿っている場合、子実体が豊富になります。Armillaria melleaやArmillaria gallicaと比較して、9月に最初に結実します。例外的に雨の多い季節であれば、子実体はそれより早く見られます。[9] Armillaria tabescens は砂地ではあまり成長せず、より短い根状体を生成します。[10]根状体は菌類にある糸状の構造で、菌糸で構成されています。菌糸は分岐構造で、酵素を放出して宿主から栄養分を吸収します。
病因
ナラタケ はナラタケ属の異核種である。異核種は、半数体の一核細胞が互いに接触すると吻合を行う。吻合とは、2つの物体（この場合は菌糸体）間の接続または開口部である。菌糸体は菌糸からなる菌類の栄養部分である。2つの一核細胞が性的に適合する場合、それらはクランプ接続を形成する。その結果、二核細胞からなる菌糸体が形成される。二核細胞は栄養段階で優勢である。担子器では、減数分裂の前に核融合が起こり、その後担子胞子が形成される。[6] その後、担子胞子は宿主植物に感染する。
Armillaria tabescens は、すでにストレスを受けている木や傷のある木を攻撃することがわかっています。病原菌は菌糸を広げ、木の幹や根に入り込むことができます。[9]この菌は、根や幹のシステム全体に菌糸を広げ、菌糸マットを形成する能力を持っています。菌糸は、植物の材料を分解する酵素を分泌して栄養素を吸収するため、木に害を及ぼします。これは白色腐朽菌であるため、特にリグニンを分解します。
自然界では、 Armillaria tabescensの根状体は発見されていない。しかし、Rishbeth と Kile [6]は、接種物に埋もれた根状体を発見した。この種は自然界では通常根状体を生成しないため、感染した根が他の潜在的な宿主と接触しなければ感染は起こらない。そのため、根の接ぎ木は、この病原菌の拡散に効果的な経路となる。Tsopelas [3]は、 Armillaria tabescensと他の 2 つのArmillaria種をアーモンドの木に接種する実験を行った。実験の結果、接種後 6～8 週間で担子果が発達した。担子果は、担子器の茎の周りに輪がないことで識別される。担子胞子が木に感染する。2 年後、16 本の木のうち 3 本が枯死し、他の 2 本の木は枯死の症状が見られた。[3]
食用性
この種は調理して食べることができ、高級品としても扱われているが[11]、胃の不調を引き起こすことが報告されている。[12] Armillaria tabescensにはさらに少量の抗酸化物質が含まれており、脂質過酸化やフリーラジカルによる損傷を防ぐのに使用できるのではないかと研究されている。[13]
参照
- デサルミラリア属の種のリスト
- 発光菌類の一覧
参考文献
- ^ Mihail JD. (2015). 「北米のArmillaria種の生物発光パターン」.菌類生物学. 119 (6): 528–537. doi :10.1016/j.funbio.2015.02.004. PMID 25986550.
- ^ ab Schnabel, Guido; Ash, Joshua; Bryson, Patricia (2005 年 7 月)。「米国南東部の Armillaria tabescens の識別と特徴付け」。英国菌学会誌。109 (Pt 11): 1208–1222。doi : 10.1017 /S0953756205003916。PMID 16279414 。
- ^ abcdef Lushaj, BM; Woodward, S; Keca, N; Intini, M (2009). 「アルバニアにおけるArmillaria属植物の分布、生態および宿主範囲」.森林病理学. 40 (6): 485–499. doi :10.1111/j.1439-0329.2009.00624.x.
- ^ abc Tsopelas, P; Tjamos, E (1997). 「ギリシャのアーモンドにおけるArmillaria tabescensの発生と病原性」OEPP/EPPO 紀要. 27 (4): 455–461. doi :10.1111/j.1365-2338.1997.tb00665.x.
- ^ “ナラタケ（ナラタケの根腐れ）”. www.cabi.org 。2017年10月23日に取得。
- ^ abc Shaw, Charles; Kile, Glen (1991年3月)。Armillaria Root Disease。米国農務省森林局。
- ^ 長谷川英;太田裕子服部哲也佐橋直也菊池 哲 (2011) 「日本の針葉樹におけるナラタケ属の生態」森林病理学。41 (6): 429–437。土井：10.1111/j.1439-0329.2010.00696.x。
- ^ Rishbeth , J (1986). 「培養されたイギリス産Armillaria種のいくつかの特徴」菌学協会86 : 213–218.
- ^ ab Rishbeth, J (1991). 「古代の広葉樹林のArmillaria」.森林病理学. 21 (4): 239–249. doi :10.1111/j.1439-0329.1991.tb00975.x.
- ^ ミハイル、ジャンヌ、ブルーン、ヨハン、レイニンガー、テオドール（2002年6月）。「Armillaria tabescensの根粒菌生成に対する水分と酸素供給の影響とA. gallicaおよびA. melleaとの比較」菌学研究。106 （6）：697–704。doi ：10.1017/S0953756202005920 。
- ^ ミラー・ジュニア、オーソン・K. ; ミラー、ホープ・H. (2006)。北米のキノコ：食用および非食用菌類のフィールドガイド。ギルフォード、CN：ファルコンガイド。p. 151。ISBN 978-0-7627-3109-1。
- ^ フィリップス、ロジャー（2010年）。北米のキノコとその他の菌類。バッファロー、ニューヨーク州：ファイアフライブックス。p.42。ISBN 978-1-55407-651-2。
- ^ Tel, Gülsen, et al. 「Armillaria tabescens、Leucopaxillus gentianeus、Suillus granulatus の抗酸化活性の評価：アナトリア産キノコ種」Eurasian Journal of Analytical Chemistry 8.3 (2014): 136-147。